This study was carried out to investigate the survival rate of in vitro culture after frozenthawed, to used DMSO(dimethyl sulfoxide), glycerol and ethylene glycol of cryorpotective agents at the zona pellucida removed and intact on the morulae and blastocysts. The results obtained from this study were as follows : 1. The survival rate of in vitro culture after frozen-thawed to used cryoprotective agents of three kinds at the morulae was 86.0%, 87.1% and 83.3%, total or mean were 85.5%, respectively. 2. The survival rate of in vitro culture after frozen-thawed to used cryoprotective agents of three kinds at the zona pellucida removed morulae was 53.2%, 42.3% and 37.5%, total or mean were 44.3%, respectively. 3. The survival rate of in vitro cultrue after frozen-thawed to used cryoprotective agents of three kinds at the blastocysts was 89.4%, 86.2%, total or mean were 86.7%, respectively. 4. The survival rate of in vitro culture after frozen-thawed to used cryoprotective agents of three kinds at the zona pellucida removed blastocysts was 55.8%, 51.6% and 40.6%, total or mean were 49.3%, respectively.
Several plant growth regulators were examined for on their effect on the in vitro propagation of Kalopanax pictus$(T_{HUNB}.)$$(N_{AKAI}.)$ on WPM medium. Among the cytokinins tested, BA at $13.32\;{\mu}M$ appeared to be the most effective for multiple axillary shoot formation. Although the addition of $2.89\;{\mu}M\;GA_3$ promoted stem elongation, it produced morphologically abnormal leaves and stems. For rooting of the shoots, $4.9\;{\mu}M$ IBA seemed to be more effective than $2.69\;{\mu}M$ NAA. When the regenerated plants were transferred on artificial mixture containing vermiculite and peat-moss (1 : 1, v/v), 81% of them survived and grew normally.
This study was carried out to investigate the effect of co-culture system(bovine oviduct epithelial cells; BOEC) and defined culture system(modified TALP ; mTALP) on the development of IVM-IVF embryos, and survival of in vitro produced blastocysts after freezing and thawing. Occytes from the slaugheterhous ovaries were matured and fertilized using general protocol. The results obtained were as the following: 1. Survival rates of frozen-thawed blastocysts using 10% glycerol as cryoprotectant was higher in day 7 blastocysts than in Day 8 and 9 blastocysts from co-cultrue system, but survival rate of frozen-thawed blastocysts was higher in Day 10 blastocysts than in day 8 and 9 blastocysts from defined culture system. Regardless of their age, survival rate of frozen-thawed blastocysts was significantly higher (p<0.05) in co-culture system than in defined culture system. 2. The cell number of blastocysts was significanlty higher (p<0.05) in Day 7 blasotcysts than in Day 8 and 9 blastocysts from co-cultures, but the cell number of blsstocysts was significantly higher (p<0.05) in Day 10 blastocysts than in Day 8 and 9 blastocysts from defined culture system. Regardless of the culture system, blastocysts with higher cell number showed higher survival rates after freezing and thawing.
Adaptive development of early stage embryo is well established and recently it is explored that the mammalian embryos also have adaptive ability to the stressful environment. However, the mechanisms are largely unknown. In this study, to evaluate the possible role of aquaporin in early embryo developmental adaptation, the expression of aquaporin (AQP) 5 gene which is detected during early development were examined by the environmental condition. To compare expression patterns between in vivo and in vitro, we conducted quantitative RT-PCR and analyzed localization of the AQP5 by whole mount immunofluorescence. At in vivo condition, Aqp5 expressed in oocyte and in all the stages of preimplantation embryo. It showed peak at 2-cell stage and decreased continuously until morula stage. At in vitro condition, Aqp5 expression pattern was similar with in vivo embryos. It expressed both at embryonic genome activation phase and second mid-preimplantation gene activation phase, but the fold changes were modified between in vivo embryos and in vitro embryos. During in vivo development, AQP5 was mainly localized in apical membrane of blastomeres of 4-cell and 8-cell stage embryos, and then it was localized in cytoplasm. However, the main localization area of AQP5 was dramatically shifted after 8-cell stage from cytoplasm to nucleus by in vitro development. Those results explore the modification of Aqp5 expression levels and location of its final products by in vitro culture. It suggests that expression of Aqp5 and the roles of AQP5 in homeostasis can be modulated by in vitro culture, and that early stage embryos can develop successfully by themselves adapting to their condition through modulation of the specific gene expression and localization.
In vitro cultrue systems for the growth of sma-II oocytes and for meiotic maturation are expected to provide a new source of a large population of oocytes as well as assistance in basic physiological studies of oogenesis. Mouse oocytes mid-growth phase can complete grovvth and acquire full developmental capacity in vitro. On the other hand, growing pig oocytes need some other factors. FSH at a low concentration maintains the viability of both oocytes and granulosa cells, and hypoxanthine promotes the meiotic competence of the oocytes during culture period. Considerable improvement in the culture systems for growth of pig oocytes, suggested from mouse studies, and for oocyte maturation could help to develop this technology in larger species.
The experiments were conducted to obtain culture conditions on optimal cultural conditions for propagation of a topical orchid, Haemaria discolor, through shoot tip cultrue in vitro. Survival percentage of shoot tip explant, in initial culture media was higher in H$_3$P$_4$ medium than in Murashige and Skoog's medium. Explants, cultured in H$_3$P$_4$ medium containing 1.0 mg/L kinetin, showed more shoot elongation when compared with those on other media. When the distal part of stem (pseudobulb) was longitudinally sectioned into half and cultured in H3P4 medium containing 0.1 mg/L 2ip, 0.1, or 1.0 mg/L kinetin, shoots from axillary bud were much more elongated under light condition.
Culture medium (ASF-301) of tHUE-2 cell, human endothelial cell line, and culture medium of these cells (conditioned medium : CM) which affect embryonic development of in vivo fertilized 1-cell embryos of mouse were examined. Two-cell stage block of mouse embryos was overicomed in ASF-301 and CM without EDTA, which usually added in basic medium (modified Whitten Medium: MWM, control) to overcome the 2-cell stage block. The developmental rates of embryos to the blastocyst stage were significantly increased in MWM containing 12.5% of growth factors added to ASF-301 (10mg/ $\ell$ transferrin, 1mg/$\ell$ insulin, 0.01mg/$\ell$ EGF) than those of 100% addition and control, 78.0% vs 20.8 and 52.3%, respectively (P<0.05), but the growth factors was not affected the hatching rate of blastocyst. Using ASF-301 or CM which was not treated, embryonic development into the blastocyst and hatched blastocyst stages were not affected. However, proportions of embryonic development into the blastocyst and hatched blastocyst stages were significantly higher in dilution (ASF-301 1:10; CM 1:3~1:6) than those in control (P,0.05). In ASF-301 dialyzed M.W.<10000 dialysis membrane, the developmental rate upto the hatched blastocyst stage was significantly increased, compared to ASF-301 which was not dialyzed (P<0.05), and hatching rate of blastocyst of these group was singnificantly increased than those in MWM (P<0.05). Compared to CM which was not dialyzed, however, in dialyzed CM was significantly decreased, compared to untreated CM (P<0.05), especially any hatched blastocyst was not appeared. As a result of these experiments indicated that a kind or porper treatment such as a dilution of complex synthetic cell culture medium and conditioned medium, and that a optimal concentration of growth factors are usuful for embryo cultrue in vitro.
To provide the optimal culture conditions for the developm,ent of in vit개 produced embryos, we have been investigated various culture media as well as co-cultrue systems using porcine cumulus cells or mouse fetal fibroblast cells. Porcine ovaries were brought to the laboratory from local slaughter house within 1 hour after slaughtering and cumulus oocytes complexes were recovered from antral follicles(3~5mm) with 23 gauge needle. To maturate follicular oocytes, cumulus oocytes complexes were washed three times with TCM-199 containing 25mM HEPES and incubated(39$^{\circ}C$, 5% CO2 in air) in various maturation media for 42 hrs. Ejaculated and liquid storaged boar spermatozoa capacitated with different sperm capacitation methods and media were rpepared for fertilizing of matured follicular oocytes in vitro. Fertilization was performed by adding 5~10${\mu}\ell$ fo capacitated spermatozoa containing 1~5$\times$105 sperm/ml to droplets. Eighteen to twenty-eight hours after sperm insemination, fertilized eggs were washed three times with culture media and transferred to the various culture media, to the culture media with a monolayer of somatic cells. The in vitro development rates of 1-cell embryos cultured with three times with culture media and transferred to the various culture media, to the culture media with a monolayer of somatic cells. The in vitro development rates of 1-cell embryos cultured with three different media, m-KRB, BECM and TCM-HEPES were 0~1.0%, showing extremely lower rates. Especially, most of embryos were observed to arrest the development beyond 4-cell stages. The rates of embryos developed to 2-, 4-, 8-, 16-, 32-cell and morula or blastocyst stage in co-culture with porcine cumulus cells and mouse fetal fibroblast cells were 61.1~67.0%, 59.0~58.0%, 42.5~43.1%, 28.4~30.2% and 20.4~21.0%, respectively. These development rates upto morula or blastocyst stages were significantly higher than those of the embryos cultured in the basic culture medium(P<0.01). These findings suggest that co-culture of in vitro fertilized eggs with porcine cumulus cells or mouse fetal fibroblast cells enhance the development of fertilized eggs to morula or blastocyst stage in vitro.
This study was designed to develop the in vitro culture systemof mammalian preimplantation embryos. We proposed mouse fetal fibroblast cells (MFFC) from 14∼15 day mouse fetus. Zygotes from superovulated female ICR mice were cultured 96 hrs in simple defined media (T6) or on the monolayer of MFFC. In addition, to evaluate the action of the co-culture of MFFC, various diluted superoxide dismutase antibody (SOD-Ab) was supplemented into the monolayer of MFFC and zygotes were cultrued in presence or absence of SOD-Ab. The developmental rates of zygotes were significantly increased in co-culture with MFFC compared to the control. The rates of zygotes to the 4-cell stage in media treated with EDTA were higher than those cultured in MFFC but the proportions of morula and blastocyst were not differ between EDTA and MFFC. Interestingly blastocysts in co-culture with MFFC possessed as many as blastomere as those developing in vivo, but blastocysts cultured with EDTA had significantly fewer blastomeres. In addition, the treatment of SOD-Ab suppressed the beneficial effect of MFFC. Therefore, our findings suggest that co-cultrue system using MFFC may have an advantage in the development of mouse zygotes as well as embryonic differentiation.
In an attempt to evaluate the function of MAP kinase of porcine oocytes and to develop a method of assessment for kinase activity, we used MBP as a substrate to detect the MAP kinase activity of porcine oocytes matured in in vitro. The MAP kinase which had lower activity during the first 20 hours of culture started to show an increased amount of activity at 25 hours at which a collapse in nuclear membrane was induced. Significant (P<0.05) a, pp.ared at 30 hours of being cultured. The gel phosphorylation method, MBP which has been known to be a substrate for kinase such as cdc2 kinase, was phosphorylated at two positions corresponding to ERK 1 (44kDa) and ERK2 (42 kDa) which are known as mammalian MAP kinase. The existence of MARKK and MAP kinase were identified with western blotting at 0 hour culture of immature GV oocytes. The amount of those proteins did not increase during 40 hours of culture, which suggest that the increase of MAP kinase activity was caused by phosphorylaton rather than due to change in protein amount. MAPKK and MAP kinase were shown to be dephosporylated with deactivated at M 1 stage by inhibition of protein synthesis with cycloheximide added at the strat following the cultrue. We have reulsts that indicate the existedence of MAP kinase cascade which was activated simultaneously with start of porcine oocyte maturation (GVBD).
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[게시일 2004년 10월 1일]
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