The primary culture of human nasal epithelial cell monolayer was performed on a Transwell. The effect of various factors on the tight junction formation was observed in order to develop an in vitro experimental system for nasal transport studies. Human nasal epithelial cells, collected from human normal inferior turbinates, were plated onto diverse inserts. After 4 days, media of the apical surface was removed for air-liquid interface (ALI) culture. Morphological characteristics was observed by transmission electron microscopy (TEM). A polyester membrane of $0.4\;{\mu}m$ pore size was determined as the most effective insert based on the change in the transepithelial electric resistance (TEER) value as well as the $^{14}C-mannitol$ transport study. The ALI method was effective in developing the tight junction as observed in the further increase in the TEER value and reduction in the permeability coefficient $(P_{app})$ of $^{14}C-mannitol$ transport. Results of the transport study of a model drug, budesonide, showed that the primary culture system developed in this study could be further developed and applied for in vitro nasal transport studies.
Kim, Ju-Hwan;Kim, Hwan-Tae;Park, Kee-Sang;Song, Hai-Bum;Chun, Sang-Sik
한국동물번식학회:학술대회논문집
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한국동물번식학회 2001년도 춘계학술발표대회
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pp.8-8
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2001
Mouse follicles require the addition of gonadotropins (Gns) to complete maturation and ovulation of oocyte and antrum formation of follicles in vitro. However, we tried examination of in vitro growth of mouse pre-antral follicles in medium without Gns and physiological factors. And also, pre-antral follicles were isolated from ovaries by mechanical method. Our present studies were conducted to evaluate on the growth of follicles and intra-follicular oocytes and antrum formation in vitro of mouse pre-antral follicles in two different media. Pre-antral follicles (91-120${\mu}{\textrm}{m}$) were isolated mechanically by fine 30G needles not using enzymes from ovary of 3-6 weeks old female ICR mice. Isolated pre-antral follicles were cultured in 20 ${mu}ell$ droplets of TCM (n=17; follicles: 107.8 $\pm$ 1.58 ${\mu}{\textrm}{m}$; oocytes: 59.9$\pm$1.2 ${\mu}{\textrm}{m}$) or MEM (n=12; follicles: 109.3$\pm$2.53 ${\mu}{\textrm}{m}$; oocytes: 55.4 $\pm$1.6${\mu}{\textrm}{m}$) under mineral oil on the 60mm culture dish. All experimental media was supplemented with 10% FBS but without Gns and/or physiological factors. Pre-antral follicles were individually cultured in drops for 8 days. Antrum formation and growth of pre-antral follicles and intra-follicular oocytes were evaluated using a precalibrated ocular micrometer at $\times$200 magnifications during in vitro culture. Results between different groups were analyzed using combination of Student's t-test and Chi-square, and considered statistically significant when P<0.05. Antrum formation of pre-antral follicles had started in two culture media on day-2. On day-8, antrum formation had occurred in 58.3%(7/12) of pre-antral follicles cultured in MEM, but only in 23.5% (4/17) of those cultured in TCM (P=0.0364). Growth of pre-antral follicles and intra-follicular oocytes were observed on day-4 and -8. On day-4, follicular diameters was similar (P=0.1338) in TCM (119.4$\pm$2.58 ${\mu}{\textrm}{m}$) and MEM (125.4$\pm$4.52 ${\mu}{\textrm}{m}$). However, on day-8, diameters of pre-antral follicles cultured in MEM (168.9$\pm$17.29 ${\mu}{\textrm}{m}$) was significantly (P=0.0248) bigger than that in TCM (126.7$\pm$4.28 ${\mu}{\textrm}{m}$). On day-4 and -8, diameters of intra-follicular oocytes were similar TCM (67.1$\pm$1.3 and 72.4$\pm$0.9${\mu}{\textrm}{m}$) and MEM (65.2$\pm$1.7 and 73.3$\pm$1.5 ${\mu}{\textrm}{m}$), respectively. We can conform that medium not supplemented with Gns and/or physiological factors can be used for in vitro antrum formation and growth of mouse pre-antral follicles and intra-follicular oocytes. In conclusion, MEM supplemented with FBS can be used for growth in vitro of mouse pre-antral follicles isolated mechanically.
The factors influencing somatic embryo maturation, high frequency somatic embryo germination, and plantlet formation were studied in Terminalia chebula Retz. Maturation of somatic embryo were influenced by a number of factors such as in vitro culture passage, concentrations of sucrose, levels of abscisic acid (ABA), basal media and media additive combinations. Maximum frequency of somatic embryo maturation ($57.22{\pm}2.02$), was obtained on MS medium supplemented with 50 g/l sucrose. Different factors such as strengths of MS nutrients, plant growth regulators, media additives and their combinations controlling somatic embryo germination and plantlet formation were studied. High frequency of germination and plantlet formation ($58.80{\pm}1.47$) were achieved by subsequent subculture of mature somatic embryos on MS medium containing 30 g/l sucrose and 0.5 mg/l benzyl-adenine (BA). However, although duration of in vitro passage of the callus tissue was critical, contribution of the combinations of plant growth regulators and media additives showed nugatory effect on somatic embryo maturation and germination as evident from variable responses.
This study was carried out to investigate the effects of liquid boar sperm stored at 4$^{\circ}C$ on sperm motility, normal acrosome, and in-vitro fertilization and culture of pig oocytes matured in-vitro. The sperm-rich fraction (30~60 ml) of ejaculate was collected into an insulated vacuum bottle. Semen was slowly cooled to room temperature (20~23$^{\circ}C$) by 2 h after collection. Semen was transferred into 15 ml tubes, centrifuged at room temperature for 10 min at 800$\times$g, and the supernatant solution was poured off. The concentrated sperm was resuspended with 5 ml of lactose, egg yolk and N-acetyl-D-glucosamine (LEN) diluent to provide 1.0$\times$10$^{9}$ sperm/ml at room temperature. The resuspended semen was cooled in a refrigerator to 4$^{\circ}C$ and preserved for 5 days to examine sperm motility and normal acrosome. The medium used for oocyte maturation was modified tissue culture medium (TCM) 199. After about 22 h of culture, oocytes were cultured without cysteamine and hormones for 22 h at 38.5$^{\circ}C$, 5% $CO_2$ in air. Oocytes were inseminated with liquid boar sperm stored at 4$^{\circ}C$ for 2 days after collection. Oocytes were coincubated for 6 h in 500 ${mu}ell$ mTBM fertilization media with 0.2, 1, 5 and 10$\times$10$^{6}$ /ml sperm concentration, respectively. At 6 h after IVF, oocytes were transferred into 500 ${mu}ell$ Hepes-buffered NCSU-23 culture medium for further culture of 6, 48 and 144 h. There were significant differences in sperm motility and normal acrosome among preservation days and incubation times, respectively. The rates of sperm penetration and polyspermy were higher in 5 and 10$\times$10$^{6}$ sperm/ml than in 0.2 and 1$\times$10$^{6}$ sperm/ml. Male pronuclear formation was lower in 0.2$\times$10$^{6}$ sperm/ml than in 1, 5 and 10$\times$10$^{6}$ sperm/ml. Mean numbers of sperm in penetrated oocyte were highest in 10$\times$10$^{6}$ sperm/ml compared with other sperm concentrations. The rate of blastocysts from the cleaved oocytes (2~4 cell stage) was highest in 1$\times$10$^{6}$ sperm/ml compared with other sperm concentrations. In conclusion, we found out that liquid boar sperm stored at 4$^{\circ}C$ could be used for in-vitro fertilization of pig oocytes matured in-vitro. Also, we recommend 1$\times$10$^{6}$ ml sperm concentration for in-vitro fertilization of pig oocytes.
The main objective of this study was to identify the most appropriate condition for root formation of in vitro micropropagated pear (Pyrus spp.) plants. In vitro propagation was induced on Murashige and Skoog (MS) medium with 2.0 mg/L of N6-benzyladenine (BA) and 0.2 mg/L of Indole-3-butyric acid (IBA) medium. The short pre-treatment of explants with a high concentration (1 mg/L) of NAA and IBA (R0 medium) in dark for three days, followed by transfer to five different media (R1 to R5) resulted in good rooting responses in the pear 'Oharabani (P. pyrifolia × P. communis)' genotype. For the rooting experiments, the highest rooting percentage (83.3 ± 8.3%), average root length (3.6 ± 1.9 mm), total root number (31 ± 4.0), and average root number per plant (2.6 ± 2.1) were obtained on half strength (1/2) of MS medium supplemented with 30 g/L sucrose without hormones and activated charcoal (AC) (R1 medium). The highest rooting percentage was obtained at 83.3% from explants on R1 and R3 media. The rooting procedure described in this study resulted in good root formation and significantly shorting the root induction time to within 14 days of culture. Further studies are underway to test the suitability of the protocol developed in this study for other pear genotypes.
Pea (Pisum sativum) is one of important legume crops in the world. It is commonly used as a protein source for animal and human diet, and also used as a natural nitrogen source which is produced by a symbiotic bacterium in their root nodule and helpful for terrestrial ecosystem. The successful in vitro manipulation is depended on three main factors including physiology of plant donor, in vitro manipulation approach, and stress physiology during plant cultivation. Moreover, genotype is an important for plant manipulation; different genotype gives the different response to regeneration efficiency. An efficient condition of shoot induction for pea (Pisum sativum cv. 'Sparkle') was developed by using optimum explant, plant growth regulator concentrations, and pretreatment of BA onto explant. The average shoot number per explant showed the highest on two kinds of shoot induction media (MSB5 media containing 2 mg/L BA and a combination of 2 mg/L BA and 1 mg/L TDZ) with cotyledonary node explants culture. Moreover, the pretreatment of explant in 200 mg/L BA solution was found to be more effective in shoot induction than that of non-pretreatment. The analysis of genetic stability of regenerants by using 13 ISSR markers presented that in vitro regenerated plants showed polymorphism with 8.3% compared with their mother plants.
Fahrudin, Mokhamad;Otoi, Takeshige;Karja, Ni Wayan Kurniani;Murakami, Masako;Suzuki, Tatsuyuki
Asian-Australasian Journal of Animal Sciences
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제14권8호
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pp.1057-1061
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2001
In this study we explored the possibility of performing nuclear transfer in the domestic cat and assessed the ability of different culture media to support in vitro development of reconstructed cat embryos. Donor somatic cells were derived from cultured cumulus cells or explants of oviduct tissue, and recipient cytoplasts from in vitro matured oocytes. A higher percentage of cleavage (84.6% and 86.5%) and development to the morula stage (35.9% and 44.2%) was found when reconstructed embryos receiving cumulus or oviduct cells were cultured in MK1 medium, compared with those cultured in CR1aa (58.7% and 72.5%, 13.8% and 13.6%, respectively). There was no significant difference between MK1 and CR1aa media with respect to the proportion developing to the blastocyst stage (15.4% and 17.3% vs 6.8% and 8.6%, respectively, p>0.05). There was no significant effect (p>0.05) of donor cell type (cumulus and oviduct cells) on the rates of fusion (65.0% and 52.5%), cleavage (84.6% and 86.5%), development to the morula (35.9% and 44.2%), and blastocyst (15.4% and 17.3%) stages when reconstructed embryos were cultured in MK1 medium. Similar results were found for the reconstructed embryos cultured in CR1aa medium. These results show that culture medium has a significant impact on the early development of reconstructed cat embryos, whereas donor cell type does not have a significant effect.
This study was conducted to improve the in vitro maturation(JVM), in vitro fertilization (IVF) and in vitro developmental capacity of oocytes derived from slaughtered Korean native cattle. The recoverd oocytes, obtained from a local slaughter house, were used completely surrounded by at least 3 layers of cumulus cells in combination with a homogeneous cytoplasmic pigmentation. In vitro maturation was induced in TCM-199 or Ham's F-10 supplemented with LH(1O $\mu$g/rnl), FSH(35 $\mu$g/ml), estradiol-17$\beta$(1 $\mu$g/ml) at 39$^{\circ}C$ under 5% $CO_2$ in air for 24 hours. Sperm from caudal epididyrnis and previously matured cumulus-oocytes complexes were cultured for 24 hours in 100 $\mu$l droplets of fertilization media under paraffin oil. The zygotes were cultured with media(TCM-199 with bovine oviductal epithelial cells or CRlaa) for 7 to 10 days. The cleavage rate of IVM-IVF oocytes was significantly (P<0.05) higher following maturation using Ham's F-10 (59.9%) than TCM-199 (51.6%). Development to the blastocysts among cleaved embryos was not signficantly different between maturation media: Ham's F-10 (16.0%) and TCM-199(11.9%). However, the hatching rate was affected significantly (P<0.05) on rnaturation media as 62.9% in Ham's F-10, compared with 41.2% in TCM-199. The cleavage rate of IVM-IVF oocytes was significantly (P<0.05) higher following IVF using m-TALP medium (80.1%) than BO medium (51.6%). The percentage of in vitro developed blastocysts among cleaved embryos was not signficantly different between fertimization media: BO (11.7%) and m-TALP (17.6%). The cleavage and the developmental rate to the blastocysts after IVF in m-TALP or condition medium(CM) with or without oviduct epithelial cell monolayer(OECM) was similar(80.1% and 17.6% in m-TALP, 83.8% and 19.4% in M-TALP with OECM. 82.9% and 18.9% in CM, 87.6% and 16.0% in CM with OECM, respectively). The percentage of in vitro developed blastocysts among cleaved embryos was significantly (P<0.05) higher in TCM-199 medium co-cul tured with bovine oviduatal epithelial cell monolayers(35.2%) than CRlaa medium(1.9%). These results stggest that the most transferable IVF embryos could be produced from Ham's F-10, m-TALP and TCM-199 medium with bovine oviductal epithelial cell monolayers for IVM, IVF and IVC, respectively.
This study was conducted according to the single-factor design principle to investigate in vitro the effects of different glucagon-like peptide-2 (GLP-2) concentrations (0, $1{\times}10^{-11}$, $1{\times}10^{-10}$, $1{\times}10^{-9}$, $1{\times}10^{-8}$ and $1{\times}10^{-7}$ mol/L) on the morphology, proliferation and enzyme activity of intestinal enterocyte cells of 28-d-old weaned piglets. These cells were primary cultured in 4 pieces of 24-well cell culture plate. After having been grown for 48 h in culture media with hGLP-2, the ileal enterocyte cells of 28-d-old weaned piglets exhibited the typical characteristics of simple columnar epithelium. Compared with the control groups, the quantities of treated cells significantly increased (p<0.05) and their corresponding absorption values in 540 nm (MTT OD) also significantly increased (p<0.01). Likewise, lactic acid concentration, total protein content and protein retention significantly increased (p<0.05). $Na^{+}$, $K^{+}$-ATP enzyme activity was more active (p<0.05), although the activity of alkaline phosphatase, lactic acid dehydrogenase and creatine phosphokinase in culture media significantly decreased (p<0.01). To summarize, the results indicated that GLP-2 in vitro is capable of promoting the proliferation of intestinal enterocyte cells of 28-d weaned piglets, restraining their apoptosis and maintaining the integrity of their morphology.
밀토니아의 기내 대량생산을 위해 PLB의 유도와 증식을 위한 적정 배지 및 배양방법을 찾고자 본 실험을 수행하였다. 적정 배지는 MS 기본배지가 Hyponex 또는 VW배지보다 밀토니아의 PLB 유도가 우수하였다. PLB 증식 및 신초분화는 Hyponex 고체배지(Hyponex +바나나 20 g/L + sucrose $20g{\cdot}L^{-1}$, pH 5.2)가 MS 배지에 비해 더욱 효과적이었다. PLB로부터 신초분화에는 sucrose를 $10{\sim}20g{\cdot}L^{-1}$ 첨가하는 것이 효과적이었으나 30 g 이상의 농도에서는 유도된 신초수가 크게 감소하였다.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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