Choi, Eun Wha;Lee, Hee Woo;Lee, Jun Sik;Kim, Il Yong;Shin, Jae Hoon;Seong, Je Kyung
BMB Reports
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제52권4호
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pp.289-294
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2019
The present study evaluated the role of AHNAK in Bartonella henselae infection. Mice were intraperitoneally inoculated with $2{\times}10^8$ colony-forming units of B. henselae Houston-1 on day 0 and subsequently on day 10. Blood and tissue samples of the mice were collected 8 days after the final B. henselae injection. B. henselae infection in the liver of Ahnak-knockout and wild-type mice was confirmed by performing polymerase chain reaction, with Bartonella adhesion A as a marker. The proportion of B. henselae-infected cells increased in the liver of the Ahnak-knockout mice. Granulomatous lesions, inflammatory cytokine levels, and liver enzyme levels were also higher in the liver of the Ahnak-knockout mice than in the liver of the wild-type mice, indicating that Ahnak deletion accelerated B. henselae infection. The proportion of CD4+interferon-${\gamma}$ ($IFN-{\gamma}^+$) and $CD4^+$ interleukin $(IL)-4^+$ cells was significantly lower in the B. henselae-infected Ahnak-knockout mice than in the B. henselae-infected wild-type mice. In vitro stimulation with B. henselae significantly increased $IFN-{\gamma}$ and IL-4 secretion in the splenocytes obtained from the B. henselae-infected wild-type mice, but did not increase $IFN-{\gamma}$ and IL-4 secretion in the splenocytes obtained from the B. henselae-infected Ahnak-KO mice. In contrast, $IL-1{\alpha}$, $IL-1{\beta}$, IL-6, IL-10, RANTES, and tumor necrosis $factor-{\alpha}$ secretion was significantly elevated in the splenocytes obtained from both B. henselae-infected wild-type and Ahnak-knockout mice. These results indicate that Ahnak deletion promotes B. henselae infection. Impaired $IFN-{\gamma}$ and IL-4 secretion in the Ahnak-knockout mice suggests the impairment of Th1 and Th2 immunity in these mice.
Placenta specific 8 (PLAC8, also known as ONZIN) is a multi-functional protein that is highly expressed in the intestine, lung, spleen, and innate immune cells, and is involved in various diseases, including cancers, obesity, and innate immune deficiency. Here, we generated a Plac8 knockout mouse using the CRISPR/Cas9 system. The Cas9 mRNA and two single guide RNAs targeting a region near the translation start codon at Plac8 exon 2 were microinjected into mouse zygotes. This successfully eliminated the conventional translation start site, as confirmed by Sanger sequencing and PCR genotyping analysis. Unlike the previous Plac8 deficient models displaying increased adipose tissue and body weights, our male Plac8 knockout mice showed rather lower body weight than sex-matched littermate controls, though the only difference between these two mouse models is genetic context. Differently from the previously constructed embryonic stem cell-derived Plac8 knockout mouse that contains a neomycin resistance cassette, this knockout mouse model is free from a negative selection marker or other external insertions, which will be useful in future studies aimed at elucidating the multi-functional and physiological roles of PLAC8 in various diseases, without interference from exogenous foreign DNA.
Park, Bo Min;Roh, Jae-il;Lee, Jaehoon;Lee, Han-Woong
Laboraroty Animal Research
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제34권4호
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pp.264-269
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2018
Cell cycle dysfunction can cause severe diseases, including neurodegenerative disease and cancer. Mutations in cyclin-dependent kinase inhibitors controlling the G1 phase of the cell cycle are prevalent in various cancers. Mice lacking the tumor suppressors $p16^{Ink4a}$ (Cdkn2a, cyclin-dependent kinase inhibitor 2a), $p19^{Arf}$ (an alternative reading frame product of Cdkn2a,), and $p27^{Kip1}$ (Cdkn1b, cyclin-dependent kinase inhibitor 1b) result in malignant progression of epithelial cancers, sarcomas, and melanomas, respectively. Here, we generated knockout mouse models for each of these three cyclin-dependent kinase inhibitors using engineered nucleases. The $p16^{Ink4a}$ and $p19^{Arf}$ knockout mice were generated via transcription activator-like effector nucleases (TALENs), and $p27^{Kip1}$ knockout mice via clustered regularly interspaced short palindromic repeats/CRISPR-associated nuclease 9 (CRISPR/Cas9). These gene editing technologies were targeted to the first exon of each gene, to induce frameshifts producing premature termination codons. Unlike preexisting embryonic stem cell-based knockout mice, our mouse models are free from selectable markers or other external gene insertions, permitting more precise study of cell cycle-related diseases without confounding influences of foreign DNA.
본 연구진은 일차로 BALB/C 마우스를 이용하여 항원으로 ovalbumin을 사용하여 천식을 유발하여 폐 내 세포구성에 미치는 영향을 다른 실험방법에 의해 만들어진 천식모델과 비교하여 살펴보았고 이차로 천식 발생에 중요한 역할을 하는 것으로 알려진 IL-4와 IL-10 knock out (KO) 마우스를 이용하여 천식모델을 구축하여 천식인자를 가진 개체에서의 반응과 천식관련인자가 결핍된 개체에서의 반응성의 차이를 살펴보았다. 천식의 유발은 실험 1일째 $20\;{\mu}g$ ovalbumin으로 감작시킨 후 실험 14일에 재감작을 시켰다. 그 후 nebulizer를 이용하여 nasal inhalation을 28일, 29일, 30일에 실시하여 천식을 유발시켰다. 천식 유발의 확인은 기관지폐포 세척술로 채취한 폐 내 세포액을 이용하여 총 세포수 및 염증세포의 증가와 폐 내 세포와 폐조직의 염색을 통해 분포율을 확인하였다. 천식의 발병 과정에서 IgE 관련 과민반응을 주도하는 IL-4와 Th2 세포의 기능을 억제한다고 알려진 IL-10의 면역화학염색을 통해 그 발현정도를 관찰하였다. BALB/c 마우스의 천식유발군의 경우 천식의 특징인 염증세포의 증가와 호산구의 증가와 세기관지 주위 염증세포의 침윤 및 기도 상피의 비후를 관찰할 수 있었다. 따라서 본 실험에 응용된 천식유발 방법은 적합하였으며 천식유발 절차가 성공적으로 수행되었음을 확인하였다. IL-4 및 IL-10 KO 마우스를 이용한 천식유발군의 경우 BALB/c 마우스를 이용한 천식유발군보다 호산구의 증가 정도가 미약하게 관찰되었고, 폐조직 내 염증세포의 침윤 정도도 감소하였다. 천식매개인자인 IL-4와 IL-10의 면역조직화학염색 결과에서도 양성반응이 거의 나타나지 않았다. 본 연구 결과, IL-10이 IL-4와 같이 천식과 관련하여 세기관지 염증 반응을 증가시키는 역할을 하는 것으로 생각된다.
Signal transducer and activator of transcription 4 (STAT4) is one of the important mediators in generating inflammation and immune responses. To address the role of Stat4 in carrageenan induced acute inflammation, we performed paw edema measurement and 7.4 k mouse cDNA microarray analysis in carrageenan induced acute inflammation in Stat4 knockout (-/-) mice. Male BALB/c (n=8) and Stat4 -/- (n=5) were used and paw edema was induced with injection of $30\;{\mu}L$ of 1% carrageenan into plantar surface of right hind paw. Next, we isolated the mRNA in mouse whole brain and analyzed cDNA microarray profiles for the changes of the brain expression in Stat4 -/- mice. Interestingly, the increase in paw volume of Stat4 -/- mice was reduced by about 30% as compared to that of wild type. The cDNA microarray analysis revealed the altered expressions of several cytokines (Tnf, Il6, and Il4) and pain-associated proteins (Ptgs2, Gabra6, and Gabbr1) in Stat4 -/- mice. Our results suggest that Stat4 may be related to the inhibitory responses on carrageenan induced acute inflammation.
Recombination activating gene-2 (RAG-2) plays a crucial role in the development of lymphocytes by mediating recombination of T cell receptors and immunoglobulins, and loss of RAG-2 causes severe combined immunodeficiency (SCID) in humans. Rag-2 knockout mice created using homologous recombination in ES cells have served as a valuable immunodeficient platform, but concerns have persisted on the specificity of Rag-2-related phenotypes in these animals due to the limitations associated with the genome engineering method used. To precisely investigate the function of Rag-2, we recently established a new Rag-2 knockout FVB mouse line ($Rag-2^{-/-}$) manifesting lymphopenia by employing a CRISPR/Cas9 system at Center for Mouse Models of Human Disease. In this study, we further characterized their phenotypes focusing on histopathological analysis of lymphoid organs. $Rag-2^{-/-}$ mice showed no abnormality in development compared to their WT littermates for 26 weeks. At necropsy, gross examination revealed significantly smaller spleens and thymuses in $Rag-2^{-/-}$ mice, while histopathological investigation revealed hypoplastic white pulps with intact red pulps in the spleen, severe atrophy of the thymic cortex and disappearance of follicles in lymph nodes. However, no perceivable change was observed in the bone marrow. Moreover, our analyses showed a specific reduction of lymphocytes with a complete loss of mature T cells and B cells in the lymphoid organs, while natural killer cells and splenic megakaryocytes were increased in $Rag-2^{-/-}$ mice. These findings indicate that our $Rag-2^{-/-}$ mice show systemic lymphopenia with the relevant histopathological changes in the lymphoid organs, suggesting them as an improved Rag-2-related immunodeficient model.
Park, Mi-Kyung;Cho, Min-Kyoung;Kang, Shin-Ae;Park, Hye-Kyung;Kim, Yun-Seong;Kim, Ki-Uk;Ahn, Soon-Cheol;Kim, Dong-Hee;Yu, Hak-Sun
Parasites, Hosts and Diseases
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제49권3호
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pp.235-243
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2011
In order to get a better understanding of the role of protease-activated receptor 2 (PAR2) in type 2 helper T (Th2) cell responses against Trichinella spiralis infection, we analyzed Th2 responses in T. spiralis-infected PAR2 knockout (KO) mice. The levels of the Th2 cell-secreted cytokines, IL-4, IL-5, and IL-13 were markedly reduced in the PAR2 KO mice as compared to the wild type mice following infection with T. spiralis. The serum levels of parasite-specific IgE increased significantly in the wild type mice as the result of T. spiralis infection, but this level was not significantly increased in PAR2 KO mice. The expression level of thymic stromal lymphopoietin, IL-25, and eotaxin gene (the genes were recently known as Th2 response initiators) of mouse intestinal epithelial cells were increased as the result of treatment with T. spiralis excretory-secretory proteins. However, the expression of these chemokine genes was inhibited by protease inhibitor treatments. In conclusion, PAR2 might involve in Th2 responses against T. spiralis infection.
CD47 (integrin-associated protein), a multi-spanning transmembrane protein expressed in all cells including red blood cells (RBCs) and leukocytes, interacts with signal regulatory protein ${\alpha}$ ($SIRP{\alpha}$) on macrophages and thereby inhibits phagocytosis of RBCs. Recently, we generated a novel C57BL/6J CD47 knockout ($CD47^{-/-}$ hereafter) mouse line by employing a CRISPR/Cas9 system at Center for Mouse Models of Human Disease, and here report their hematological phenotypes. On monitoring their birth and development, $CD47^{-/-}$ mice were born viable with a natural male-to-female sex ratio and normally developed from birth through puberty to adulthood without noticeable changes in growth, food/water intake compared to their age and sex-matched wild-type littermates up to 26 weeks. Hematological analysis revealed a mild but significant reduction of RBC counts and hemoglobin in 16 week-old male $CD47^{-/-}$ mice which were aggravated at the age of 26 weeks with increased reticulocyte counts and mean corpuscular volume (MCV), suggesting hemolytic anemia. Interestingly, anemia in female $CD47^{-/-}$ mice became evident at 26 weeks, but splenomegaly was identified in both genders of $CD47^{-/-}$ mice from the age of 16 weeks, consistent with development of hemolytic anemia. Additionally, helper and cytotoxic T cell populations were considerably reduced in the spleen, but not in thymus, of $CD47^{-/-}$ mice, suggesting a crucial role of CD47 in proliferation of T cells. Collectively, these findings indicate that our $CD47^{-/-}$ mice have progressive hemolytic anemia and splenic depletion of mature T cell populations and therefore may be useful as an in vivo model to study the function of CD47.
Purpose: Macrophages play crucial roles as early responders to bacterial pathogens and promote/ or impede chronic inflammation in various tissues. Periodontal macrophage-induced pyroptosis results in physiological and pathological inflammatory responses. The transcription factor Dec2 is involved in regulating immune function and inflammatory processes. To characterize the potential unknown role of Dec2 in the innate immune system, we sought to elucidate the mechanism that may alleviate macrophage pyroptosis in periodontal inflammation. Methods: Porphyromonas gingivalis lipopolysaccharide (LPS) was used to induce pyroptosis in RAW 264.7 macrophages. Subsequently, we established an LPS-stimulated Dec2 overexpression cellular model in macrophages. Human chronic periodontitis tissues were employed to evaluate potential changes in inflammatory marker expression and pyroptosis. Finally, the effects of Dec2 deficiency on inflammation and pyroptosis were characterized in a P. gingivalis-treated experimental periodontitis Dec2-knockout mouse model. Results: Macrophages treated with LPS revealed significantly increased messenger RNA expression levels of Dec2 and interleukin (IL)-1β. Dec2 overexpression reduced IL-1β expression in macrophages treated with LPS. Overexpression of Dec2 also repressed the cleavage of gasdermin D (GSDMD), and the expression of caspase-11 was concurrently reduced in macrophages treated with LPS. Human chronic periodontitis tissues showed significantly higher gingival inflammation and pyroptosis-related protein expression than non-periodontitis tissues. In vivo, P. gingivalis-challenged mice exhibited a significant augmentation of F4/80, tumor necrosis factor-α, and IL-1β. Dec2 deficiency markedly induced GSDMD expression in the periodontal ligament of P. gingivalis-challenged mice. Conclusions: Our findings indicate that Dec2 deficiency exacerbated P. gingivalis LPS-induced periodontal inflammation and GSDMD-mediated pyroptosis. Collectively, our results present novel insights into the molecular functions of macrophage pyroptosis and document an unforeseen role of Dec2 in pyroptosis.
The purpose of this study is to determine the effects of selective inducible nitric oxide synthase (iNOS) inhibitor N-[3-aminomethyl]benzyl]acetamidine (l400W) on the reperfused cremaster muscle. The extracellular superoxide dismutase knockout ($EC-SOD^{-/-}$) mice was used to make the experimental window for ischemia-reperfusion injury. The muscle was exposed to 4.5 h of ischemia followed by 90 min of reperfusion and the mice received either 3 mg/kg of 1400W or the same amount of phosphate buffered saline (PBS) subcutaneously at 10 min before the start of reperfusion. The results showed that 1400W treatment markedly improved the recovery of the vessel diameter and blood flow in the reperfused cremaster muscle compared to that of PBS group. Histological examination showed reduced edema in the interstitium and muscle fiber, and reduced nitrotyrosine formation (a marker of total peroxinitrite ($ONOO^-$) in 1400W-treated muscle compared to PBS. Our results suggest that iNOS and $ONOO^-$ products are involved in skeletal muscle I/R injury. Reduced I/R injury by using selective inhibition of iNOS is perhaps via limiting cytotoxic $ONOO^-$ generation, a reaction product of nitric oxide (NO) and superoxide anion ($O_2^-$). Thus, inhibition of iNOS appears to be a good treatment strategy in reducing clinical I/R injury.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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