The use of human mesenchymal stem cells (hMSCs) in cell-based therapy has attracted extensive interest in the field of regenerative medicine, and it shows applications to numerous incurable diseases. hMSCs show several superior properties for therapeutic use compared to other types of stem cells. Different cell types are discussed in terms of their advantages and disadvantages, with focus on the characteristics of hMSCs. hMSCs can proliferate readily and produce differentiated cells that can substitute for the targeted affected tissue. To maximize the therapeutic effects of hMSCs, a substantial number of these cells are essential, requiring extensive ex vivo cell expansion. However, hMSCs have a limited lifespan in an in vitro culture condition. The senescence of hMSCs is a double-edged sword from the viewpoint of clinical applications. Although their limited cell proliferation potency protects them from malignant transformation after transplantation, senescence can alter various cell functions including proliferation, differentiation, and migration, that are essential for their therapeutic efficacy. Numerous trials to overcome the limited lifespan of mesenchymal stem cells are discussed.
Journal of the Korean Association of Oral and Maxillofacial Surgeons
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제34권1호
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pp.11-18
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2008
Human bone marrow mesenchymal stem cells are thought to be multipotent cells, which are present in adult marrow, that can replicate as undifferentiated cells and that have the potential to differentiate to lineages of mesenchymal tissues, including bone, cartilage, fat, tenden, muscle, and marrow stroma. Cells that have the characteristics of human mesenchymal stem cells could be isolated from marrow aspirates of human and animals. This study was designed to identify and characterize genes specifically expressed by osteogenic supplements -treated cells by suppression subtractive hybridization(SSH) method. The results were as follows: 1. 2 genes were upregulated genes in osteogenic diffeentiation of hMSCs, which is further proved by Northern blot analysis. 2. IGFBP-2 has been identified playing an important role in bone formation. 3. HF1 was also upregulated during osteogenic differentiation, but its role in bone formation is not clear yet.
Human eyelid adipose-derived stem cells (hEAs) and amniotic mesenchymal stem cells (hAMs) are very valuable sources for the cell therapeutics. Both types of cells have a great proliferating ability in vitro and a multipotency to differentiate into adipocytes, osteoblasts and chondrocytes. In the present study, we evaluated their stem cell characteristics after long-time cryopreservation for 6, 12 and 24 months. When frozen-thawed cells were cultivated in vitro, their cumulative cell number and doubling time were similar to freshly prepared cells. Also they expressed stem cell-related genes of SCF, NANOG, OCT4, and TERT, ectoderm-related genes of NCAM and FGF5, mesoderm/endoderm-related genes of CK18 and VIM, and immune-related genes of HLA-ABC and ${\beta}$2M. Following differentiation culture in appropriate culture media for 2-3 weeks, both types of cells exhibited well differentiation into adipocyte, osteoblast, and chondrocyte, as revealed by adipogenic, osteogenic or chondrogenic-specific staining and related genes, respectively. In conclusion, even after long-term storage hEAs and hAMs could maintain their stem cell characteristics, suggesting that they might be suitable for clinical application based on stem cell therapy.
Ko, Minho;Lee, Kwon Young;Kim, Sae Hoon;Kim, Manho;Choi, Jung Hoon;Im, Wooseok;Chung, Jin Young
대한수의학회지
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제58권1호
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pp.33-37
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2018
Various trials have been conducted to develop therapies for serious untreatable diseases. Among these, those using stem cells have shown great promise, and adipose-derived mesenchymal stem cells (ADMSCs) are easier to obtain than other types of stem cells. Prior to clinical trials, characterization of ADMSCs with monoclonal antibodies should be performed. However, it is difficult to use species-specific antibodies for veterinarians. This study was conducted to confirm the panel of human antibodies applicable for use in immunophenotypic characterization of canine adipose-derived stem cells and feline ADMSCs extracted from subcutaneous adipose tissue collected during ovariohysterectomy. For flow cytometric immunophenotyping, the third passages of canine ADMSC and feline ADMSC and human CD31, CD34, CD42, CD44, CD62 and CD133 antibodies were used. Of these, CD133 reacted with canine cells (3.74%) and feline cells (1.34%). CD133 is known as a marker related with more primitive stem cell phenotype than other CD series. Because this human CD133 was not a species-specific antibody, accurate percentages of immunoreactivity were not confirmed. Nevertheless, the results of this study confirmed human CD133 as a meaningful marker in canine and feline ADMSCs.
Jayaramayya, Kaavya;Mahalaxmi, Iyer;Subramaniam, Mohana Devi;Raj, Neethu;Dayem, Ahmed Abdal;Lim, Kyung Min;Kim, Se Jong;An, Jong Yub;Lee, Yoonjoo;Choi, Yujin;Kirubhakaran, Arthi;Cho, Ssang-Goo;Vellingiri, Balachandar
BMB Reports
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제53권8호
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pp.400-412
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2020
The world has witnessed unimaginable damage from the coronavirus disease-19 (COVID-19) pandemic. Because the pandemic is growing rapidly, it is important to consider diverse treatment options to effectively treat people worldwide. Since the immune system is at the hub of the infection, it is essential to regulate the dynamic balance in order to prevent the overexaggerated immune responses that subsequently result in multiorgan damage. The use of stem cells as treatment options has gained tremendous momentum in the past decade. The revolutionary measures in science have brought to the world mesenchymal stem cells (MSCs) and MSC-derived exosomes (MSC-Exo) as therapeutic opportunities for various diseases. The MSCs and MSC-Exos have immunomodulatory functions; they can be used as therapy to strike a balance in the immune cells of patients with COVID-19. In this review, we discuss the basics of the cytokine storm in COVID-19, MSCs, and MSC-derived exosomes and the potential and stem-cell-based ongoing clinical trials for COVID-19.
Human bone marrow-derived mesenchymal stem cells (MSCs) are a rare population of undifferentiated cells that have the capacity of self renewal and the ability to differentiate into mesodermal phenotypes, including osteocytes, chondrocytes, and adipocytes in vitro. Recently, MSCs have been shown to reside within the connective tissue of most organs, and their surface phenotype has been well analyzed. Many reports showed that transplanted MSCs enhanced regeneration as well as functional improvement of damaged organs and tissues. The wide differentiation plasticity of MSCs was expected to contribute to their demonstrated efficacy in a wide variety of experimental animal models and in human clinical trials. However, new findings suggest that the ability of MSCs to alter the tissue microenvironment via secretion of soluble factors may contribute more significantly than their capacity for differentiation in tissue repair. This review describes what is known about the cellular characteristics and differentiation potential of MSCs, which represent a promising stem cell population for further applications in regenerative medicine.
Kang, In Sook;Suh, Joowon;Lee, Mi-Ni;Lee, Chaeyoung;Jin, Jing;Lee, Changjin;Yang, Young Il;Jang, Yangsoo;Oh, Goo Taeg
BMB Reports
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제53권2호
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pp.118-123
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2020
Cardiac regeneration with adult stem-cell (ASC) therapy is a promising field to address advanced cardiovascular diseases. In addition, extracellular vesicles (EVs) from ASCs have been implicated in acting as paracrine factors to improve cardiac functions in ASC therapy. In our work, we isolated human cardiac mesenchymal stromal cells (h-CMSCs) by means of three-dimensional organ culture (3D culture) during ex vivo expansion of cardiac tissue, to compare the functional efficacy with human bone-marrow derived mesenchymal stem cells (h-BM-MSCs), one of the actively studied ASCs. We characterized the h-CMSCs as CD90low, c-kitnegative, CD105positive phenotype and these cells express NANOG, SOX2, and GATA4. To identify the more effective type of EVs for angiogenesis among the different sources of ASCs, we isolated EVs which were derived from CMSCs with either normoxic or hypoxic condition and BM-MSCs. Our in vitro tube-formation results demonstrated that the angiogenic effects of EVs from hypoxia-treated CMSCs (CMSC-Hpx EVs) were greater than the well-known effects of EVs from BM-MSCs (BM-MSC EVs), and these were even comparable to human vascular endothelial growth factor (hVEGF), a potent angiogenic factor. Therefore, we present here that CD90lowc-kitnegativeCD105positive CMSCs under hypoxic conditions secrete functionally superior EVs for in vitro angiogenesis. Our findings will allow more insights on understanding myocardial repair.
In most clinical applications, human mesenchymal stem cells (hMSCs) are expanded in large scale before their administration. Prolonged culture in vitro results in cellular senescence-associated phenotypes, including accumulation of reactive oxygen species (ROS) and decreased cell viabilities. Profiling of stem cell-related genes during in vitro expansion revealed that numerous canonical pathways were significantly changed. To determine the effect of selenocysteine (Sec), a rare amino acid found in several antioxidant enzymes, on the replicative senescence in hMSCs, we treated senescent hMSCs with Sec. Supplementation of Sec in the culture medium in late-passage hMSCs reduced ROS levels and improved the survival of hMSCs. In addition, a subset of key antioxidant genes and Sec-containing selenoproteins showed increased mRNA levels after Sec treatment. Furthermore, ROS metabolism and inflammation pathways were predicted to be downregulated. Taken together, our results suggest that Sec has antioxidant effects on the replicative senescence of hMSCs.
Objective: Recapitulation of the spermatogenesis process in vitro is a tool for studying the biology of germ cells, and may lead to promising therapeutic strategies in the future. In this study, we attempted to transdifferentiate Wharton's jelly-derived mesenchymal stem cells (WJ-MSCs) into male germ cells using all-trans retinoic acid and Sertoli cell-conditioned medium. Methods: Human WJ-MSCs were propagated by the explant culture method, and cells at the second passage were induced with differentiation medium containing all-trans retinoic acid for 2 weeks. Putative germ cells were cultured with Sertoli cell-conditioned medium at $36^{\circ}C$ for 3 more weeks. Results: The gene expression profile was consistent with the stage-specific development of germ cells. The expression of Oct4 and Plzf (early germ cell markers) was diminished, while Stra8 (a premeiotic marker), Scp3 (a meiotic marker), and Acr and Prm1 (postmeiotic markers) were upregulated during the induction period. In morphological studies, approximately 5% of the cells were secondary spermatocytes that had completed two stages of acrosome formation (the Golgi phase and the cap phase). A few spermatid-like cells that had undergone the initial stage of tail formation were also noted. Conclusion: Human WJ-MSCs can be transdifferentiated into more advanced stages of germ cells by a simple two-step induction protocol using retinoic acid and Sertoli cell-conditioned medium.
Hypoxic culture is widely recognized as a method to efficiently expand human mesenchymal stem cells (MSCs) without loss of stem cell properties. However, the molecular basis of how hypoxia priming benefits MSC expansion remains unclear. In this report, our systemic quantitative proteomic and RT-PCR analyses revealed the involvement of hypoxic conditioning activated genes in the signaling process of the mitotic cell cycle. Introduction of screened two mitotic cyclins, CCNA2 and CCNB1, significantly extended the proliferation lifespan of MSCs in normoxic condition. Our results provide important molecular evidence that multipotency of human MSCs by hypoxic conditioning is determined by the mitotic cell cycle duration. Thus, the activation of mitotic cyclins could be a potential strategy to the application of stem cell therapy.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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