The development of 2-cell mouse embryos to the blastocyst stage in vitro has been used as a quality control for the media empolyed for human in vitro fertilization. There was a comparison between the quality control data of the culture medium as ascertained by 2-cell mouse embryos development and sperm motility and the data from fertilization and cleavage of human oocytes. However, there was no obvious association between fertilization and cleavage of human oocytes and the quality of the medium ascertained by mouse embryo development and sperm motility.
The human homolog of position specific element of mouse Hoxa-7 was studied using transgene. It contains a 1.1 kb human DNA (HCR)- a homolog to the intergenic region between Hoxa-7 and -9, which directs the position specific expression of Hoxa-7-, tk promoter, LacZ (${\beta}$-galactosidase) gene as a reporter, and polyadenylation signal of SV40 large T antigen. It was injected into the mice embryos, and the resulting transgenic embryos were analysed through PCR as well as genomic Southern blotting with placenta DNA. Out of 20 embryos analysed, two were transgenic. Among them, one transgenic embryo expressed transgene when stained with X-gal. The expression pattern was in analogy to that of the mouse Hoxa-7, showing spatially restricted expression pattern, Since the expression of ${\beta}$-galactosidase is regulated by the upstream human HCR sequence, it implies that the HCR is the plausible position specific regulatory element of human.
The development of 2-cell mouse embryos to the blastocyst stage in vitro has been used as quality control for the culture media and supplements employed for human in vitro fertilization and embryo transfer(IVF-ET). 2-cell mouse embryos were cultured to the blastocyst stage in SECM, Medium 199-Earle's, Ham's F-10 I , Ham's F-10 II , Hoppe & Pitts, MEM and $HT_6$. The protein supplements contained in media were bovine serum albumine, fetal bovine serum and human fetal cord serum. The results were as follows; 1. The successful development was 81.3% in Medium 199-Earle’s, 91.9% in Ham’s F-10 I and 97.1% in $HT_6$. 2. 2-cell mouse embryos developed properly in all supplements but the best development was particularly noted in $HT_6$ media when HFCS was supplied as protein supplement.
Objective: Granulocyte-macrophage colony stimulating factors known to be secreted in murine and human reproductive tract. The development of human, bovine and murine embryos could be promoted by addition of GM-CSF in culture medium. However, the pregnancy and implantation rate of embryos cultured in GM-CSF have not been evaluated. The aim of this study was to assess the effect of GM-CSF in embryo development, pregnancy and implantation rate. Methods: A total of 191 IVF cycles were divided into control and GM-CSF supplement group (control=96, GM-CSF=95). The embryos were cultured for three day with or without 2 ng/ml of recombinant human GM-CSF. The quality of embryo, developmental velocity, pregnancy and implantation rates were compared. Results: There was no difference in age, number of gonadotropin ampules used, number of oocytes and fertilization. The number of ICSI cycle was higher in GM-CSF group. In GM-CSF group, G-1 grade embryos were the highest in proportion (56.4%), while G-2 grade embryos were highest (44.3%) in control group. The developmental velocity of embryos were not different between GM-CSF and control group. The pregnancy and implantation rates were significantly higher in GM-CSF group than control (47.4% vs. 33.3%, 17.0% vs. 11.1% respectively). Conclusion: By adding GM-CSF in culture medium, the quality of embryo, pregnancy and implantation rate could be improved.
In vitro developmental ability of early preimplantation monse embryos was shown to be depend on the embryonic stages, media and snpplements and their interaction(Experiment 1). The development of I-cell embryos were more promoted in the complex medinm(Ham's Fl0) than in the simple one(m-KRB), but that of 2-cell embryos showed the reverse effect. The bovine serum albumin(BSA) as a medium snpplement more promoted the development of I- and 2-cell embryos, compared with human fetal cord serum(HCS). On the other hand, the harmful effect of HCS was especially shown on the early cleavage in the embryonic development of the two stages. The effect of serum, in the respect of interaction between media and snpplements. was also more significantly appeared in m-KRB than Ham's Fl0. In the experiment 2, when the harmful effect of HCS was compared with that of fetal bovine serum(FBS), the former more promoted the development of l - and 2-cell embryos than the latter. The effect of HCS was more significantly shown in the development of I-cell than that of 2-cell embryos. Conclusively, as I- and 2-cell embryos were different in the requirements for the in vitro development. the optimal medium and supplement have to be selected for each embryonic stage. It is also respected to the better result if it take into consideration into the kinds of sera when serum is used for culture of early preimplantation embryos.
The use of hormonal stimulation in human in vitro fertilization and embryo transfer (IVF-ET) leads to increased production of embryos for ET. So to avoid high pregnancies and to allow conception in future, unstimulated cycles, cryopreservation of spare embryos is desirable. One of the improvement of cryopreservation methods is vitrification. We cryopreserved mouse day 3 embryos by vitrification using the three different vitrification solution (EFS40, VS11 and VS3a). EFS40 solution is consisted of 40% (v/v) ethylene glycol, Ficol170 30% (w/v) and 0.5M sucrose and VS11 is 6.0M ethylene glycol and 1.8M glycerol. And VS3a is 6.5M glycerol and 6% (w/v) BSA (bovine serum albumin). First we tested the toxicity of three vitrification solution by exposure to these solution during 3 min. After washing by thawing solution, the survival rates of each groups are 95.5%, 90.9% and 84.4% (EFS40, VS11 and VS3a). High percentages of them developed to expanded blastocyst and hatching embryos in culture 48hrs 94.2%, 97.7%, 100% and 97.4% (no treatment group, EFS40, VS11 and VS3a). So there is no significant differences among the each group. Second, after thawing of vitirfied embryos, the survival rates of each groups are 96.8% (slow freeze), 94.1% (EFS40), 85.5% (VS11) and 80.0% (VS3a, P vs. no freeze or EFS40 is 0.01). Vitrified embryos exhibited a high rate of development in vitro after 48hrs culture. The percentages of each group to blastocyst and hatching embryos are 88.7% (no freeze), 91.8% (slow freeze), 93.4% (EFS40), 87.7% (VS11) and 73.0% (VS3a, P vs. other group is 0.01). The results suggest that there is no significant differences in exposure of various vitrification solution and day 3 mouse embryos can be vitrified in solution EFS40 and VS11 by simple procedure.
To investigate the changes during the differentiation of the cerebral neurons of chick embryo of tne embryogenic day (ED) 7 and 8, the ultrastructural changes in the cerebral neurons, the activity of dehydronases (LDH, MDH and SDH), protein expression profile and adenosine triphosphate concentration were analyzed. In ED 7 chick embryos, relatively large nucleus, centrally located nucleolus, evenly spread chromatin over nucleoplasm, and prominent nuclear envelope were observed. Oval-shaped mitochondria with well-developed cristae were present over entire cytoplasm. In ED 8 chick embryos, evenly spread chromatin over nucleoplasm, and prominent nuclear envelope were observed. In the cytoplasm, well-developed rough endoplasmic reticulum and Golgi complex were observed. In ED 7 chick embryos and ED 8 chick embryos, 31 polypeptide bands and 34 polypeptide bands were observed, respectively. The activities of dehydrogenases were lower in ED 7 chick embryos than in ED 8 chick embryos. LDH activity was 8.16 (ED 7) and 9.28 (ED 8), MDH activity was 7.98 (ED 7) and 10.10 (ED 8), and SDH activity was 5.49 (ED 7) and 7.14 (ED 8) respectively. The ATP concentration remained unchanged over ED 7 and 8.
In vitro produced (IVP) embryos produced by in vitro fertilization (IVF) often exhibit wide variations in developmental competence and viability, considerably more than are exhibited by embryos that develop in vivo. These anomalies in IVP embryos may be due to heterogeneity of oocyte quality, suboptimal culture conditions, disturbances in gene expression, or most likely a combination of these factors (Ho et al., 1994; Roth et al., 1994; McKiernan and Bavister, 1998; Hasler, 1998; Schramm and Bavister, 1999; Doherty et al., 2000; Hyttel et al., 2000; Niemann and Wrenzycki, 2000; Wrenzycki et al., 2001). In research studies or in clinical applications with domesticated animals, cats, non-human primates and humans, oocytes used for IVF are usually collected from a heterogeneous cohort of ovarian follicles that include oocytes which normally might not be ovulated and/or are deficient in developmental competence. (omitted)
For the cryopreservation of human embryos this study was accomplished as a preliminary experiment. The purpose of this study is to obtain optimal cryoprotectant, addition and dilution method of cryoprotectant and cooling rate for raising survival of frozon and thawed 2-cell mouse embryos. Seeding was done at $-7^{\circ}C$ and the straw contained embryos was plunged at $-30^{\circ}C$ when the slow cooling was ended. Embryos those developed normally to blastocyst after in vitro culture for over 96 hours were regarded as survival ones. The survival was the rate of number of survival embryos against the recovered embryos. The results are followed : 1. The survivals were 6.3, 71.2 and 67.4% respectively, when Glycerol, DMSO and 1,2-Propanediol were used as cryoprotectant. 2. When sucrose was added in freezing solution, the survival was 69.0%. That was higher than the survival of embryos frozen without sucrose in freezing solution. The difference was not significant. 3. Addition and dilution of cryoprotectant by 4 stepwise raised the survival than by direct, but that was not significant. 4. When embryos were frozen by -0.3, -0.5 and $-1^{\circ}C/min$ before plunged into $LN_2$, the survivals were 67.9, 78.0 and 37.0% respectively. The differnce was significant.
Sills, E. Scott;Obregon-Tito, Alexandra J.;Gao, Harry;McWilliams, Thomas K.;Gordon, Anthony T.;Adams, Catharine A.;Slim, Rima
Clinical and Experimental Reproductive Medicine
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제44권1호
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pp.40-46
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2017
Objective: To describe in vitro development of human embryos derived from an individual with a homozygous pathogenic variant in NLRP7 (19q13.42) and recurrent hydatidiform mole (HM), an autosomal recessive condition thought to occur secondary to an oocyte defect. Methods: A patient with five consecutive HM pregnancies was genomically evaluated via next generation sequencing followed by controlled ovarian hyperstimulation, in vitro fertilization (IVF) with intracytoplasmic sperm injection, embryo culture, and preimplantation genetic screening. Findings in NLRP7 were recorded and embryo culture and biopsy data were tabulated as a function of parental origin for any identified ploidy error. Results: The patient was found to have a pathogenic variant in NLRP7 (c.2810+2T>G) in a homozygous state. Fifteen oocytes were retrieved and 10 embryos were available after fertilization via intracytoplasmic sperm injection. Developmental arrest was noted for all 10 embryos after 144 hours in culture, thus no transfer was possible. These non-viable embryos were evaluated by karyomapping and all were diploid biparental; two were euploid and eight had various aneuploidies all of maternal origin. Conclusion: This is the first report of early human embryo development from a patient with any NLRP7 mutation. The pathogenic variant identified here resulted in global developmental arrest at or before blastocyst stage. Standard IVF should therefore be discouraged for such patients, who instead need to consider oocyte (or embryo) donation with IVF as preferred clinical methods to treat infertility.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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