In order to study the simultaneous determination of (+)- and (-)-cetirizine in human urine we have developed a chiral separation method by HPLC. A chiral stationary phase of $\alpha$$_1$-acidglycoprotein, the AGP-CSP was used to separate the enantiomers. The pH of the phosphate buffer, as well as the content of the organic modifier in the mobile phase, markedly affected the chromatographic separation of (+)- and (-)-cetirizine. A mobile phase of 10 m㏖/1 phosphate buffer (pH 7.0)-acetonitrile (95 : 5, v/v) was used for the urine assays. Ultraviolet absorption was monitored at 230nm and roxatidine was employed as the internal standard for quantification. (+)-Cetirizine, (-)-cetirizine and the internal standard were eluted at retention times of 12, 16, and 32 mins, respectively. The detection limit for cetirizine enantiomers was 400 ng/$m\ell$ of urine. A pharmacokinetic study was conducted with the help of 5 healthy female volunteers who were administered with a single oral dose of racemic cetirizine (20 mg). The peak area ratios provided by the cetirizine enantiomers were linear(r>0.997) over a concentration range of 2.5-200 ${\mu}g/ml$. The peak of the excreted cetirizine enantiomers appeared in the urine sample during the period of 1-2 hrs following the administration of the oral dose. The excreted level of (+)-cetirizine was slightly higher than (-)-cetirizine but the difference was not statistically significant. However, this method appears to have applications for enantioselective pharmacokinetic studies of racemic drugs.
Dietary intake and bioavailability of phorotannins in abalone was investigated after feeding with the phlorotannin-rich brown seaweed Ecklonia stolonifera after 4 days starvation. Reverse-phase high-performance liquid chromatography (RP-HPLC) affords isolation and quantification of the major phlorotannins of 7-phloroeckol and eckol, which were identified by mass spectrometry and nuclear magnetic resonance. Abalone growth and feed consumption rates were similar when fed either with the E. stolonifera or the common feed seaweed Saccharina japonica for 20 days. Throughout the feeding period, 7-phloroeckolol was accumulated in the abalone flesh tissue up to an average of 0.58±0.13 mg/g dry weight after 6 days. Eckol was reached to 0.25±0.05 mg/g dry tissue after 6 days, and maintained the level until end of feeding period. By feeding S. japonica as a control, no phlorotannins were detected in the abalone tissues. Both of the abalone, fed with E. stolonifera or S. japonica, had enzymes that decomposed 7-phloroeckol and eckol in muscle tissues, with similar degradation rates of −0.05 or less and −0.05 mg/ml/hr, respectively. Phlorotannins were reduced by constitutive enzymes in abalone tissues. Therefore, value-added abalone containing bioactive phlorotannins can be produced by simply changing the feed to the phlorotannin-rich brown seaweed E. stolonifera 6 days before harvest.
Objectives SJ004 is a natural herbal medicine that contains Acyranthes japonica Nakai and Eucommia ulmoides Oliver traditionally used for joint and spinal diseases. This study aimed to establish an efficient method of extracting SJ004 to standardize using the yield, high-performance liquid chromatography (HPLC), and antioxidant assay. Methods SJ004 was extracted with distilled water, 70% and 100% of ethyl alcohol (EtOH). The method validation of 20-hydroxyecdysone and pinoresinol diglucoside was determined by HPLC-photo diode array and the content of SJ004 was calculated. The antioxidant activity of each extract was compared and measured using total flavonoids, total phenolic compounds, 2,2-azino-bis(3-ethylbenzothiazoline-6-sulfonic acid), and ferric reducing antioxidant power according to the standard protocol. Results The yield was highest in pure water extract and lowest in 100% EtOH. But, the content of marker compounds indicating 20-hydroxyecdysone and pinoresinol diglucoside was highest in 100% EtOH extract. In the physiological activity measurement using antioxidant activity, 100% ethanol extract was highest. The limit of detection indicating 20-hydroxyecdysone and pinoresinol diglucoside were analyzed 0.33 ㎍/mL, 0.1616 ㎍/mL, and the limit of quantification were analyzed 1.01 ㎍/mL and 0.49 ㎍/mL respectively. Conclusions The experimental results showed that the extraction conditions have a significant effect on content of marker compounds and antioxidant activity. As a result of method validation, SJ004 was standardized by 20-hydroxyecdysone and pinoresinol diglucoside.
In this study, we developed a method to quantify esculetin (6,7-dihydroxycoumarin) in plasma and tissues using HPLC coupled with ultraviolet detection and measured the level of esculetin in rat plasma after oral administration. The calibration curve for esculetin was linear in the range of 4.8 ng/mL to 476.2 ng/mL, with a correlation coefficient ($r^2$) of 0.996, a limit of detection value of 33.2 ng/mL, and a limit of quantification value of 100.6 ng/mL. Recovery rates for the 95.2 ng/mL and 190.5 ng/mL samples were 95.2% and 100.3%, within-runs and 104.8% and 101.0% between-runs, respectively. The relative standard deviation was less than 7% for both runs. In the pharmacokinetic analysis, the peak plasma esculetin level was reached 5 min after administration ($C_{max}=173.3ng/mL$; $T_{1/2}=45min$; $AUC_{0{\sim}180min}=5,167.5ng{\cdot}min/mL$). At 180 min post-administration (i.e., after euthanasia), esculetin was only detectable in the liver ($30.87{\pm}11.33ng/g$) and the kidney ($20.29{\pm}7.02ng/g$).
The lignan compound of Schisandra chinensis Baill. (Schizandraceae) has been reported to have a variety of biological activities such as liver protection, neuroprotection, anti-oxidant and anti-diabetes. In this study, we investigated a quantitative analytical method for schisandrin, gomisin A and gomisin $M_2$ isolated from S. chinensis by high-performance liquid chromatography-ultraviolet spectroscopy (HPLC-UV). The isolated compounds were identified by the analysis of 1H- and 13C-NMR spectroscopic data. The results showed that calibration curves of three compounds indicated great linearity with a correlation coefficient ($R^2$) of schisandrin 0.9983, gomisin A 0.9982 and gomisin $M_2$ 0.9986. The limits of detection (LOD) of schisandrin, gomisin A and gomisin $M_2$ were 0.14, 0.07 and $0.05{\mu}g/ml$ and the limits of quantification (LOQ) were 0.42, 0.22 and $0.14{\mu}g/ml$. Intra-day and inter-day precisions of schisandrin were 0.40~1.44%, 0.07~1.02% gomsin A were 0.22~0.52%, 0.10~0.63%, gomisin $M_2$ were 0.40~0.99%, 0.81~2.88%. In result, contents of schisandrin, gomisin A and gomisin $M_2$ in ethanol extract of S. chinensis were $25.95{\pm}0.15$, $2.51{\pm}0.02$ and $2.17{\pm}0.07mg/g$.
Salvia miltiorrhiza Radix is cultivated in Korea and China and is traditionally used to treat cardiovascular diseases. In this study, we developed and validated a quantitative analysis method for S. miltiorrhiza Radix using high-performance liquid chromatography (HPLC). Identification was performed using ultra performance liquid chromatography-tandem mass spectrometry. For quantitative analysis, we used seven marker compounds. Separation conditions for HPLC were optimized using an ODS column with gradient conditions of 1% formic acid in distilled water and 1% formic acid in acetonitrile, with a flow rate of 0.8 mL/min and a detection wavelength of 280 nm. This method showed good linearity ($R^2=0.9998$), precision (relative standard deviation ${\leq}3.3%$), accuracy (recovery of 94.16-102.89%), limit of detection ($7.53{\mu}g/mL$), and limit of quantification ($23.71{\mu}g/mL$). This approach successfully quantified marker compounds in S. miltiorrhiza Radix. The individual marker compounds were identified by comparing the molecular masses and retention times with does standard compounds. Marker compound contents of S. miltiorrhiza Radix were investigated with different cultivation regions. Seven marker compounds were detected and quantified in all samples. Among them, salvianolic acid B showed the highest contents and it ranged from 4.13 to 7.15%. The salvianolic acid B content (7.15%) of marker compound was the highest in Bonghwa, and the tanshinone IIA content (1.90%) was the highest in Pohang. The results of marker compounds and developed method were intended to provide a favorable reference for the study of S. miltiorrhiza Radix from different regions of Korea.
Objective : In this study, we performed quantitative comparison on the content of 10 marker compounds in cinnamon barks from different species and found chemical discrimination between genuine Cinnamomum cassia and other Cinnamomum species (Non C. cassia). Methods : Cinnamon bark samples were extracted using the ultrasonication in 100% methanol for 30 minutes. The samples were analysed using high-performance liquid chromatography with statistical analysis. Results : The analytical method developed in this study met all validation criteria and was applied to the quantification of the 10 marker compounds in cinnamon bark samples. The major chemical discrimination of C. cassia were identified as low content of epicatechin and eugenol, and high contents of benzaldehyde, cinnamaldehyde and cinnamic acid compared to other Non C. cassia samples. Especially, among other compounds, the content of cinnamaldehyde was the highest in the C. cassia and Non C. cassia samples. The result of principal component analysis showed that the samples of C. cassia and Non C. cassia were clearly differentiated via benzaldehyde, cinnamaldehyde, cinnamic acid, eugenol, and epicatechin, which influenced on clustering C. cassia and Non C. cassia samples. Conclusion : C. cassia and Non C. cassia samples were chemically discriminated using the quantitative HPLC analysis. Based on this, it is possible to control the quality of herbal medicines containing Cinnamomi Cortex. It is necessary to further improve the accuracy of discrimination between C. cassia and Non C. cassia species to evaluate cinnamon bark quality.
The study aimed to investigate a novel approach by utilizing liquid chromatography (LC) and liquid chromatography-mass spectrometry (LC-MS) to separate, identify and characterize very nominal quantities of degradation products (DPs) of balsalazide along with its process related impurities without isolation from their reaction mixtures. The impurities along with balsalazide were resolved on spherisorb ODS2 (250×4.6 mm, 5.0 ㎛) column at room temperature using 0.2 M sodium acetate solution at pH 4.5 and methanol in the ratio of 55:45 (v/v) as mobile phase pumped isocratically at 1.0 mL/min as mobile phase and UV detection at 255 nm. The method shows sensitive detection limit of 0.003 ㎍/mL, 0.015 ㎍/mL and 0.009 ㎍/mL respectively for impurity 1, 2 and 3 with calibration curve liner in the range of 50-300 ㎍/mL for balsalazide and 0.05-0.30 for its impurities. The balsalazide pure compound was subjected to stress studies and a total of four degradation products (DPs) were formed during the stress study and all the DPs were characterized with the help of their fragmentation pattern and the masses obtained upon LC-MS/MS. The DPs were identified as 3-({4-[(E)-(4-hydroxyphenyl) diazenyl]benzoyl}amino)propanoic acid (DP 1), 4-[(E)-(4-hydroxyphenyl)diazenyl] benzamide (DP 2), 5-[(E)-(4-carbamoylphenyl)diazenyl]-2-hydroxybenzoic acid (DP 3) and 3-({4-[(E)-phenyldiazenyl]benzoyl}amino)propanoic acid (DP 4). Based on findings, it was concluded that, the proposed method was successfully applicable for routine analysis of balsalazide and its process related impurities in pure drug and formulations and also applicable for identification of known and unknown impurities of balsalazide.
Park, Seungbae;Kang, Dong Hyeon;Jin, Changbae;Kim, Hyoung Ja
Journal of the Korean Society of Food Science and Nutrition
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v.46
no.2
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pp.210-219
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2017
This study aimed to establish an optimal extraction process and high-performance liquid chromatography (HPLC)-photodiode array (PDA) analytical method for determination of marker compounds, dihydrokaempferol (DHK) and 3-O-methylquercetin (3-MeQ), as a part of materials standardization for the development of health functional foods from stems of Opuntia ficus-indica var. saboten (OFS). The quantitative determination method of marker compounds was optimized by HPLC analysis, and the correlation coefficient for the calibration curve showed very good linearity. The HPLC-PDA method was applied successfully to quantification of marker compounds in OFS after validation of the method in terms of linearity, accuracy, and precision. Ethanolic extracts from stems of O. ficus-indica var. saboten (OFSEs) were evaluated by reflux extraction at 70 and $80^{\circ}C$ with 50, 70, and 80% ethanol for 3, 4, 5, and 6 h. Among OFSEs, OFS70E at $80^{\circ}C$ showed the highest contents of DHK and 3-MeQ of $26.42{\pm}0.65$ and $3.88{\pm}0.29mg/OFS100g$, respectively. Furthermore, OFSEs were determined for their antioxidant activities by measuring 1,1-diphenyl-2-picrylhydrazyl (DPPH) radical scavenging and lipid peroxidation (LPO) inhibitory activities in rat liver homogenate. OFS70E at $70^{\circ}C$ showed the most potent antioxidant activities with $IC_{50}$ values of $1.19{\pm}0.11$ and $0.89{\pm}0.09mg/mL$ in the DPPH radical scavenging and LPO inhibitory assays, respectively. To identify active components of OFS, various chromatographic separation of OFS70E led to isolation of 11 flavonoids: dihydrokaempferol, dihydroquercetin, 3-O-methylquercetin, quercetin, isorhamnetin 3-O-glucoside, isorhamnetin 3-O-galactoside, narcissin, kaempferol 7-O-glucoside, quercetin 3-O-galactoside, isorhamnetin, and kaempferol 3-O-rutinoside. The results suggest that standardization of DHK in OFSEs using HPLC-PDA analysis would be an acceptable method for the development of health functional foods.
Malachite green was measured in 200 freshwater fish collected from local markets in Seoul using HPLC-DAD and LC-MS/MS. LC-MS/MS method was validated by linearity, accuracy, precision and limits of detection and quantification according to the CODEX's recommendation and HPLC-DAD method was applied according to the Food Code. Malachite green levels above the quantification limit of the LC-MS/MS were determined 18.5% (37) but just 1 fish was shown to contain malachite green by HPLC-DAD. Of 83 domestic fish, 21 fish were detected malachite green (25.3%). Of 117 fish from China, just 16 fish were detected malachite green (13.4%). In detection rate by species carp (35.0%), Crucian carp (30.4%), cat fish (28.0%), Korean bull head (23.8%), snake head (20.0%), eel (10.5%) and loach (7.8%) were in order. Especially, fish collected at summer were shown to contain malachite green frequently; the detection rate was 54.8%.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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