The present study evaluated the antibacterial effect of Flos syzygii Aromatici methanolic extracts (FSAE). In addition, the effectiveness of FSAE against Escherichia coli O157:H7 infection was studied using ICR female mice. At 24 h after incubation of E. coli O157:H7, FSAE at the concentration of 0.269 (p < 0.05), 0.538 (p < 0.001) and 1.075 mg/mL (p < 0.001) significantly inhibited the growth of E. coli O157:H7 compared to the control group. After single challenge with E. coli O157:H7, forty female ICR mice were divided into four experimental groups which were orally administered with saline (control), 0.538 (group 1), 1.075 (group 2) and 2.15 mg/mL (group 3) of FSAE, respectively. On the 3rd day, the number of fecal E. coli O157:H7 in group 2 (p < 0.05) and group 3 (p < 0.01) was significantly decreased compared to that in the control group. On the 7th day post-treatment, the number of fecal E. coli O157:H7 in all FSAE-treated groups was significantly decreased compared to that in the control group (group 1, p < 0.05; group 2 and 3, p < 0.001). According to the results of the present study, administration of FSAE to mice can reduce the severity of E. coli O157:H7 infection. Therefore, the current study suggests that FSAE could be a good candidate for the treatment of enteric infections in domestic animals.
Enterohemorrhagic Escherichia coli O157:H7 is a major foodborne pathogen causing severe disease in humans worldwide. Healthy cattle are a reservoir of E. coli O157:H7, and bovine food products and fresh produce contaminated with bovine waste are the most common sources for disease outbreaks in the United States. E. coli O157:H7 also survives well in the environment. The abilities to cause human disease, colonize the bovine gastrointestinal tract, and survive in the environment require that E. coli O157:H7 adapt to a wide variety of conditions. Three major virulence factors of E. coli O157:H7 have been identified including Shiga toxins, products of the pathogenicity island called the locus of enterocyte effacement, and products of the F-like plasmid pO157. Among these virulence factors, the role of pO157 is least understood. This review provides a board overview of E. coli O157:H7 with an emphasis on pO157.
This study was conducted to investigate the effects of bifidobacteria on the growth and Caco-2 cell-adherence of Escherichia coli O157:H7 .Dur-ing momo-culture of E. coli O157:H7 and mixed culture with Bifidobacterium infantis K9, pH viable cell count, and ammonia concentration were measured Co-cultivation of E. coli O157:H7 with bifidobacteria. producing acidic metabolites rapidly decreased the viable cell count of E. coli O157:H7 In addition rapid decrease of ammo- nia concentration was observed during mixed culture after 8 hrs incubation compared to single culture of E. coli O157:H7 Therefore it is likely that bifidobacteria assimilate ammonia produced by E. coli O157:H7 P4 B, infantis K9 showed quite similar adherence on the Caco-2 cells in either case. On the other hand adherence of E. coli O157:H7 decreased from 2.6% to 1.86% when B infantis K9 was adhered to Caco-2 cell 2 hrs prior to the application of E. coli O157:H7 In conclusion in adherence of E coli O157:H7 to Caco -2 cell was inhibited by competition of its binding to the adherence site with bifidobacteria. In addition inhibitory effects of bifidobacteria on E coli O157:H7 appeared to be much higher with increae of the number of bifidobacteria and its ability of adherence to Caco-2 cells.
Feasibility tests on using liposomes for detecting food-borne pathogenic bacteria were studied with E. coli 0157:H7 as a model analyte. lmmunoliposomes, whose surface was conjugated with anti-E. coli 0157:H7 IgG and which encapsulated the marker dye, sulforhodamine B, were used for the detection label. Among the feasibility tests, the first test was to use a test-strip on which antibodies to anti-E. coli O157:H7 IgG were immobilized. In this format, immunoliposomes that did not bind to E. coli O157:H7 in sample were captured and then exhibited a visible signal which was inversely related with the number of E. coli O157:H7 in sample. The second test was a direct liposome assay followed by immunomagnetic separation. In this format, immunoliposomes which were bound to E. coli O157:H7 were lysed with detergent and produced a signal which was proportionally related with the number of E. coli O157:H7 in sample. The results from both formats indicate that liposomes can be utilized as a detection label.
Manuka honey (MH) has been shown anti-bacterial activity against several pathogenic bacteria. However, the inhibitory effect of MH on biofilm formation by Escherichia coli O157:H7 has not yet been examined. In this study, MH significantly reduced E. coli O157:H7 biofilm. Moreover, pre- and post-treatment with MH also significantly reduced E. coli O157:H7 biofilm. Cellular metabolic activities exhibited that the viability of E. coli O157:H7 biofilm cells was reduced in the presence of MH. Further, colony forming unit of MH-treated E. coli O157:H7 biofilm was significantly reduced by over 70%. Collectively, this study suggests the potential of anti-biofilm properties of MH which could be applied to control E. coli O157:H7.
Kim, Se-Ri;Choi, Song-Yi;Seo, Min-Kyoung;Kim, Won-Il;Chung, Duck-Hwa;Ryu, Kyoung Yul;Yun, Jong-Chul;Kim, Byung-Seok
Journal of Food Hygiene and Safety
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v.28
no.3
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pp.272-278
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2013
To evaluate the effect of surface contaminated with Escherichia coli O157:H7 (E. coli O157:H7) on the microbiological safety of lettuce, this study was conducted to investigate the attachment, biofilm producing, survival, and cross-contamination of E. coli O157:H7 on stainless steel and polyvinyl chloride (PVC). The attachment rate of E. coli O157:H7 on PVC was 10 times higher than that on stainless steel after exposure 1 h in cell suspension. However, there was not a difference between two types of surface after exposure for 6 h and 24h. The biofilm producing of E. coli O157:H7 was TSB > 10% lettuce extracts > 1% lettuce extracts > phosphate buffer. When two kinds of materials were stored at various conditions ($20^{\circ}C$ and $30^{\circ}C$, relative humidity (RH) 43%, 69%, and 100%), the numbers of E. coli O157:H7 at $30^{\circ}C$, RH 43% or RH 69% were reduced by 5.0 log CFU/coupon within 12 h regardless of material type. Conversely, the survival of E. coli O157:H7 at RH 100% was lasted more than 5 days. In addition, the reduction rate of E. coli O157:H7 was decreased in the presence of organic matter. The transfer efficiency of E. coli O157:H7 from the contaminated surface to lettuce was dependent upon the water amount of the surface of lettuce. Especially, the transfer rate of E. coli O157:H7 was increased by 10 times in the presence of water on the lettuce surface. From this study, the retention of E. coli O157:H7 on produce contact surfaces increase the risk cross-contamination of this pathogen to produce. Thus, it is important that the surface in post harvest facility is properly washed and sanitized after working for prevention of cross-contamination from surface.
Effects of benzoate (0~0.6 g/$\ell$ ) and sorbate (0~2.0 g/$\ell$) on the growth of Escherichia coli O157:H7 in tryptic soy broth at various pH levels (4~8) and temperatures (4$^{\circ}C$, 37$^{\circ}C$) were investigated. Benzoate and sorbate were inhibited the growth of E. coli O157:H7 up to 12 hours cultivation at 4$^{\circ}C$, and 2.0 g/$\ell$ sorbate was only inhibited during 48 hours cultivation at 37$^{\circ}C$. Among the pH levels tested, pH 4 showed significant inhibitory effect against the E. coli O157:H7 on 4$^{\circ}C$ and at 37$^{\circ}C$, respectively. When used in combination 0.2 g/$\ell$ benzoate and sorbate were completely inhibited the growth of E. coli O157:H7 on pH 4 and at 37$^{\circ}C$. While on pH 5 at 4$^{\circ}C$, all of the concentration tested did not exert any inhibitory effect. The combined effects were retarded more than single treatment of E. coli O157:H7.
Seo, Jina;Seo, Dong Joo;Oh, Hyejin;Jeon, Su Been;Oh, Mi-Hwa;Choi, Changsun
Food Science of Animal Resources
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v.36
no.2
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pp.186-193
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2016
This study aimed to inhibit Escherichia coli (E. coli) O157:H7 artificially contaminated in fresh meat using bacteriophage. Among 14 bacteriophages, the highly lytic bacteriophage BPECO19 strain was selected to inhibit E. coli O157:H7 in artificially contaminated meat samples. Bacteriophage BPECO19 significantly reduced E. coli O157:H7 bacterial load in vitro in a multiplicity of infection (MOI)-dependent manner. E. coli O157:H7 was completely inhibited only in 10 min in vitro by the treatment of 10,000 MOI BPECO19. The treatment of BPECO19 at 100,000 MOI completely reduced 5 Log CFU/cm2 E. coli O157:H7 bacterial load in beef and pork at 4 and 8h, respectively. In chicken meat, a 4.65 log reduction of E. coli O157:H7 was observed at 4 h by 100,000 MOI. The treatment of single bacteriophage BPECO19 was an effective method to control E. coli O157:H7 in meat samples.
Journal of the Korean Society of Food Science and Nutrition
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v.33
no.3
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pp.571-575
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2004
Escherichia coli O157:H7 cause hemorrhagic colitis and the extraintestinal complication of hemolytic-uremic syndrome, with their higher incidence occurring in children. Lipopolysaccharide (LPS) of E. coli O157:H7 is very important to make IgG anti-LPS with bactericidal activity. To identify the characteristic of E. coli OI57:H7, we isolated 60 MDa plasmid and amplified stx genes of shiga-like toxin (Stx) 1, 2 of E. coli O157:H7 by polymerase chain reaction (PCR) method. Using the simple purification method which contained phenol extract, ethanol precipitation and gel filtration steps, the LPS of E. coli O157:H7 was isolated and purified. Finally, we confirmed the purity of LPS through SDS-PAGE and silver nitrate staining.
Three and 2 strains of E coli O157 were isolated from fecal materials of cattle (390) and pigs (420) in Korea, respectively. One strain of O157:H7 isolated from cattle and 2 strains of O157:H7 isolated from pigs were identified as verotoxin-1 (VT-1) produing strains and 2 strains (O157:H7 and O157:H-) isolated from cattle were identified as verotoxin-2 (VT-2) producing strains by neutralization test on HeLa and Vero cells. Culture supernatants of the isolates were cytotoxic to HeLa and Vero cells. The levels of cytotoxin produced by isolates were $10^2{\sim}10^4$ cytotoxic dose($CD_{50}$)/ml. Also, VT-2-converting bacteriophage was isolated from KSC109 strain which had been isolated from cattle. Molecular weight of the phage DNA was determined as approximately 45 Kb in 0.8% agarose gel electrophoresis, and morphology of the phage stained with phosphotungstic acid was observed by transmissible electron microscopy.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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