Growing evidence indicates a crucial role of the gut microbiota in physiological functions. Gut-brain axis imbalance has also been associated with neuropsychiatric and neurodegenerative disorders. Studies have suggested that probiotics regulate the stress response and alleviate mood-related symptoms. In this study, we investigated the effects of the probiotic Lacticaseibacillus rhamnosus IDCC3201 (L3201) on the behavioral response and fecal metabolite content in an unpredictable chronic mild stress (UCMS) mouse model. Our study shows that chronic stress in mice for three weeks resulted in significant changes in behavior, including lower locomotor activity, higher levels of anxiety, and depressive-like symptoms, compared to the control group. Metabolomic analysis demonstrated that disrupted fecal metabolites associated with aminoacyl-tRNA biosynthesis and valine, leucine, and isoleucine biosynthesis by UCMS were restored with the administration of L3201. Oral administration of the L3201 ameliorated the observed changes and improved the behavioral alterations along with fecal metabolites, suggesting that probiotics play a neuroprotective role.
The incidence of inflammatory bowel disease(IBD) has increased continuously in worldwide, but no cure have been discovered. The etiology of IBD may include various factors such as genetics, epigenetic, environment as well as host immune system. Among the environmental factors of IBD, diet heavily influences gut health, especially non-digestible dietary fiber can have a great impact on selective growth of beneficial gut microbiota called probiotics. Seaweeds have been consumed in Asia countries and are a rich source for dietary fiber. Accumulated data have suggested the possibility of utilizing seaweed derived oligosaccharides as prebiotics to prevent IBD and its recurrence. In this review, seaweed derived oligosaccharides such as fucoidan and laminarin regarding gut health and potential therapeutic tools for IBD will be discussed based on studies conducted in vitro and in vivo models.
Jung, Jaejoon;Heo, Aram;Park, Yong Woo;Kim, Ye Ji;Koh, Hyelim;Park, Woojun
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.24
no.7
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pp.888-897
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2014
A bacterial community analysis of the gut of Tenebrio molitor larvae was performed using pyrosequencing of the 16S rRNA gene. A predominance of genus Spiroplasma species in phylum Tenericutes was observed in the gut samples, but there was variation found in the community composition between T. molitor individuals. The gut bacteria community structure was not significantly affected by the presence of antibiotics or by the exposure of T. molitor larvae to a highly diverse soil bacteria community. A negative relationship was identified between bacterial diversity and ampicillin concentration; however, no negative relationship was identified with the addition of kanamycin. Ampicillin treatment resulted in a reduction in the bacterial community size, estimated using the 16S rRNA gene copy number. A detailed phylogenetic analysis indicated that the Spiroplasma-associated sequences originating from the T. molitor larvae were distinct from previously identified Spiroplasma type species, implying the presence of novel Spiroplasma species. Some Spiroplasma species are known to be insect pathogens; however, the T. molitor larvae did not experience any harmful effects arising from the presence of Spiroplasma species, indicating that Spiroplasma in the gut of T. molitor larvae do not act as a pathogen to the host. A comparison with the bacterial communities found in other insects (Apis and Solenopsis) showed that the Spiroplasma species found in this study were specific to T. molitor.
Background: Gut microflora contributes to the nutritional metabolism of the host and to strengthen its immune system. However, if the intestinal barrier function of the living body is destroyed by radiation exposure, the intestinal bacteria harm the health of the host and cause sepsis. Therefore, this study aims to trace short-term radiation-induced changes in the mouse gut microflora-dominant bacterial genus, and analyze the degree of intestinal epithelial damage. Materials and Methods: Mice were irradiated with 0, 2, 4, 8 Gy X-rays, and the gut microflora and intestinal epithelial changes were analyzed 72 hours later. Five representative genera of Actinobacteria, Firmicutes, and Bacteroidetes were analyzed in fecal samples, and the intestine was pathologically analyzed by Hematoxylin-Eosin and Alcian blue staining. In addition, DNA fragmentation was evaluated by the TdT-mediated dUTP nick-end labeling (TUNEL) assay. Results and Discussion: The small intestine showed shortened villi and reduced number of goblet cells upon 8 Gy irradiation. The large intestine epithelium showed no significant morphological changes, but the number of goblet cells were reduced in a radiation dose-dependent manner. Moreover, the small intestinal epithelium of 8 Gy-irradiated mice showed significant DNA damaged, whereas the large intestine epithelium was damaged in a dose-dependent manner. Overall, the large intestine epithelium showed less recovery potential upon radiation exposure than the small intestinal epithelium. Analysis of the intestinal flora revealed fluctuations in lactic acid bacteria excretion after irradiation regardless of the morphological changes of intestinal epithelium. Altogether, it became clear that radiation exposure could cause an immediate change of their excretion. Conclusion: This study revealed changes in the intestinal epithelium and intestinal microbiota that may pave the way for the identification of novel biomarkers of radiation-induced gastrointestinal disorders and develop new therapeutic strategies to treat patients with acute radiation syndrome.
Objective: To investigate the effect of host genetics on gut microbial diversity, we performed a structural survey of the fecal microbiota of four purebred boar pig lines: Duroc, Landrace, Hampshire, and Yorkshire. Methods: The V3-V4 regions of the 16S rRNA genes were amplified and sequenced. Results: A total of 783 operational taxonomic units were shared by all breeds, whereas others were breed-specific. Firmicutes and Bacteroidetes dominated the majority of the fecal microbiota; Clostridia, Bacilli, and Bacteroidia were the major classes. Nine predominant genera were observed in all breeds and eight of them can produce short-chain fatty acids. Some bacteria can secrete cellulase to aid fiber digestion by the host. Butyric, isobutyric, valeric, and isovaleric acid levels were highest in Landrace pigs, whereas acetic and propionic acid were highest in the Hampshire breed. Heatmap was used to revealed breed-specific bacteria. Principal coordinate analysis of fecal bacteria revealed that the Landrace and Yorkshire breeds had high similarity and were clearly separated from the Duroc and Hampshire breeds. Conclusion: Overall, this study is the first time to compare the fecal microbiomes of four breeds of boar pig by high-throughput sequencing and to use Spearman's rank correlation to analyze competition and cooperation among the core bacteria.
To elucidate the role and mechanism of microbes, we combined culture-dependent and culture-independent approaches to investigate differences in gut bacterial composition between sows and weaned pigs. Under anaerobic conditions, several nonselective and selective media were used for isolation from fecal samples. All isolated bacteria were identified and classified through 16S rRNA sequencing, and the microbiota composition of the fecal samples was analyzed by metagenomics using next generation sequencing (NGS) technology. A total of 278 and 149 colonies were acquired from the sow and weaned pig fecal samples, respectively. Culturomics analysis revealed that diverse bacterial genus and species belonged to Firmicutes, Actinobacteria, Proteobacteria, and Bacteroidetes were isolated from sow and weaned pigs. When comparing culture-dependent and culture-independent analyses, 191 bacterial species and 2 archaeal bacterial species were detected through culture-independent analysis, and a total of 23 bacteria were isolated through a culture-dependent approach, of which 65% were not detected by metagenomics. In conclusion, culturomics and metagenomics should be properly combined to fully understand the intestinal microbiota, and livestock-derived microbial resources should be informed by culturomic approaches to understand and utilize the mechanism of host-microbe interactions.
Cyanidin-$3{\beta}$-D-glycoside (C3G), which is widely distributed in herbal medicines and functional foods, exhibits anti-inflammatory, anti-oxidant, and anti-scratching behavioral effects. Orally administered C3G is metabolized to protocatechuic acid (PA) by gut microbiota. Therefore, we compared the anti-colitic effect of C3G to that of PA in mice with 2,4,6-trinitrobenzenesulfonic acid (TNBS)-induced colitis. Orally administered C3G and PA preventively and curatively ameliorated TNBS-induced colitis parameters, including macroscopic colitis score, colon shortening, and increase of myeloperoxidase activity. Treatment with C3G or PA also inhibited the expression of cyclooxygenase-2, inducible NO synthatase, $IL-1{\beta}$, IL-6, and $TNF-{\alpha}$ and the activation of $NF-{\kappa}B$ in the colon of mice with TNBS-induced colitis. Furthermore, these also inhibited lipopolysaccharide-induced $NF-{\kappa}B$ activation and $TNF-{\alpha}$ expression in peritoneal macrophages. The anti-colitic effect of PA was more effective than C3G. Orally administered PA more potently attenuate colitis than C3G by inhibiting $NF-{\kappa}B$ activation and the anti-colitic efficacy of C3G may be dependent on the biotransformation of C3G to PA by gut microbiota.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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