Kim, Jong-Wan;Park, Soon-Ik;Yoe, Jee-Hyun;Yoe, Sung-Moon
Animal cells and systems
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v.15
no.1
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pp.29-36
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2011
Insect lysozymes are basic, cationic proteins synthesized in fat body and hemocytes in response to bacterial infections and depolymerize the bacterial cell wall. The c-type lysozyme of the insect Spodoptera litura (SLLyz) is a single polypeptide chain of 121 residues with four disulfide bridges and 17 rare codons and is approximately 15 kDa. The full-length SLLyz cDNA is 1039 bp long with a poly(A) tail, and contains an open reading frame of 426 bp long (including the termination codon), flanked by a 54 bp long 5' UTR and a 559 bp long 3' UTR. As a host for the production of high-level recombinant proteins, E. coli is used most commonly because of its low cost and short generation time. However, the soluble expression of heterologous proteins in E. coli is not trivial, especially for disulfide-bonded proteins. In order to prevent inclusion body formation, GST was selected as a fusion partner to enhance the solubility of recombinant protein, and fused to the amplified products encoding mature SLLyz. The expression vector pGEX-4T-1/rSLLyz was then transformed into E. coli BL21(DE3)pLysS for soluble expression of rSLLyz, and the soluble fusion protein was purified successfully. Inhibition zone assay demonstrated that rSLLyz showed antibacterial activity against B. megaterium. These results demonstrate that the GST fusion expression system in E. coli described in this study is efficient and inexpensive in producing a disulfide-bonded rSLLyz in soluble, active form, and suggest that the insect lysozyme is an interesting system for future structural and functional studies.
Urokinase (UK), a thrombolytic enzyme used to clear catheters obstructed by blood clots, can be also used industrially in the recombinant protein purification system to cleave a fusion protein linked with a certain fragment of GST. We have immobilized UK by covalent attachment to activated Sepharose 6B-Cl gels and evaluated its performance to cleave a fusion protein of hGH and GST. The Sepharose gels were activated by etherification with glycidol (2,3-epoxypropanol) and further oxidized with periodate resulting in glyceryl-Sepharose gels. After the activation treatment, surface density of the aldehyde groups was 7-30 $\mu$mol-aldehde/mL-gel. Immobilization yield was higher than 99% at high pH (10.5), and the immobilized UK maintained ca. 80% specific activity of the soluble UK. In a column reaction the cleavage yield heavily depended on the feed rate, and it was nearly 86% of that from soluble UK. And the immobilized UK was successfully regenerated by unfolding and refolding with 6M GuHCl. After cleavaging reaction, the monomeric hGH was purified by using expanded bed adsorption chromatography.
We scaled up a covalent immobilization system of urokinase to the activated Sepharose and used it repeatedly to cleava a fusion protein consisting of human growth hormone and GST fragment. After scale up from 6 ml to 250 ml. the column system still demonstrated basically the same performance in terms of urokinase immobilization and fusion protein cleavage. When the column was washed with 6 M guanidine HCI after the cleavage reaction, the immobilized urokinase showed no activity probably becasue it was fully unfoled. However, as the denaturant was gradually removed from the column the immobilized urokinase fully regained its bioactivity, which indicated it was properly refolded into is natie conformation as covalently attached to the solid matrix. After 20 cycles of this solid-phase unfolding/refolding. the immobilized urokinase maintained approx. 80% of the initial bioactivity. This method provides and efficient protocol to apply the solid-phase refolding technique to improve the longevity of immobilized enzyme columns.
Presence of antibody to the capsid protein p24 is the main diagnostic criterion, since this reflects reliable antibody response to HIV infection. However, it takes about 6-8 weeks for antibody production after infection and people who are infected but antibodies are not produced yet are classified as seronegative. Therefore, there is a strong need for an improved diagnostic method for better health security. As a first step for developing such an improved diagnostic system, gag protein of human immunodificiency virus type 1 was expressed in E. coli DH5$\alpha$. The gag fragment of HIV-1 (including a portion of p17 and whole p24) was amplified by polymerase chain reaction (PCR) and BamH I/EcoR I sites were created during PCR. The amplified DNA fragment was cleaved with BamH I/EcoR I and was subcloned into the GEX-2T vector which had been digested with BamHI/EcoRI, resulting gene fusion with gst gene of pGEX-2T. The recombinant DNA was transferred into E. coli DH5$\alpha$. The transformed bacteria were grown at 37$^{\circ}C$ for 3h and protein expression was induced with 0.1mM IPTG at $25^{\circ}C$ for 3h. Recombinant gag protein or GST-gag fusion protein was purified with glutathione-sepharose 4B bead and migrated as a single band when analyzed by 10% polyacrylamide gel. These proteins were confirmed by immunoblotting with anti-GST goat sera or Korean AIDS patients sera. The results of this study establish the expression and single step pulification of HIV-1 gag protein which can specifically bind with Korean AIDS patients sera.
Kringle 5 (K5), located outside of angiostain (K1-4) in human plasminogen, displays more potent antiangiogenic activity on endothelial cell proliferation than angiostatin itself. Using a yeast two-hybrid system in vivo, we have recently identified Rgl2 (guanine nucleotide dissociation stimulator (RalGDS)-like factor 2) as a binding protein of human K5. In order to confirm in vitro protein interaction between K5 and Rgl2, we developed bacterial recombinant expression systems for them. K5 and Rgl2 proteins were expressed in high yields and purified into pure forms with His tags and GST fusion, respectively. GST-pull down experiments clearly demonstrated that K5 interacts specifically with Rgl2 in vitro. These results indicate that Rgl2 functions as a receptor protein for K5 in vitro as well as in vivo, leading to anti-angiogenesis through regulating Ras signaling pathways.
The retroviral Gag polyprotein directs the assembly of virion particles and plays an important role in some events after entry into a host cell. The Gag polyprotein of a virus mixture is responsible for inducing murine acquired immunodeficiency syndrome (MAIDS) when injected into susceptible strains of mice. In order to identify the host cellular proteins which interact with the MAIDS virus Gag proteins and possibly mediate the function of the Gag proteins, mouse T-cell leukemic cDNA expression library was screened using the yeast GAL4 two hybrid system. Of 11 individual positive clones, the clone Y1 was selected for the study of protein-protein interaction. Its DNA sequence revealed that it was an exact match to the murine SH3 domain-containing protein SH3P8. It is expressed as 2.4 kbp transcripts in testis at higher levels and in various tissues tested at lower levels. Glutathione S-transferase-Y1 fusion protein binds tightly to $Pr60^{def-gag}$ as well as $Pr65^{eco-gag}$.
We scaled up a covalent immobilization system of urokinase to the activated Sepharose and used it repeatedly to cleave a fusion protein consisting of human growth hormone and GST fragment. After scale up from 6 ml to 250 ml, the column system still demonstrated basically the same performance in terms of urokinase immobilization and fusion protein cleavage. When the column was washed with 6M guanidine HCl after the cleavage reaction. the immobilized urokinase showed no activity probably because it was fully unfolded. However. as the denaturant was gradually removed from the column the immobilized urokinase fully regained its bioactivity. which indicated it was properly refolded into its native conformation as covalently attached to the solid matrix. After 20 cycles of this 'solid-phase unfolding/refolding', the immobilized urokinase maintained approx. 80% of the initial bioactivity. This method provides an efficient protocol to apply the solid-phase refolding technique to improve the longevity of immobilized enzyme columns.
Ribosomal protein S3 (rpS3) is a multifunctional protein involved in translation, DNA repair, and apoptosis. The relationship between rpS3 and cyclin-dependent kinases (Cdks) involved in cell cycle regulation is not yet known. Here, we show that rpS3 is phosphorylated by Cdk1 in G2/M phase. Co-immunoprecipitation and GST pull-down assays revealed that Cdk1 interacted with rpS3. An in vitro kinase assay showed that Cdk1 phosphorylated rpS3 protein. Phosphorylation of rpS3 increased in nocodazole-arrested mitotic cells; however, treatment with Cdk1 inhibitor or Cdk1 siRNA significantly attenuated this phosphorylation event. The phosphorylation of a mutant form of rpS3, T221A, was significantly reduced compared with wild-type rpS3. Decreased phosphorylation and nuclear accumulation of T221A was much more pronounced in G2/M phase. These results suggest that the phosphorylation of rpS3 by Cdk1 occurs at Thr221 during G2/M phase and, moreover, that this event is important for nuclear accumulation of rpS3.
Journal of Fisheries and Marine Sciences Education
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v.28
no.4
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pp.903-912
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2016
Hagfish which belongs to the chordate contact cyclostomata, is important phylogenetic relationship between vertebrate and invertebrate. Cathepsins of the cysteine protease family have traditionally been thought to play a major role in intracellular protein degradation and turnover in lysosomes. In this study, Catepsin L was cloned from Inshore hagfish (Eptatretus burgeri), the cDNA encoding ORF of the Eptatretus burgeri Cathepsin L (EbCtL) is 978 bp. The cDNA encoding proEbCtL was expressed in Escherichia coli strain BL21(DE3) using the pGEX-4T-1 expression vector system. The recombinant proEbCtL protein was overexpressed as a approximately 55 kDa fusion protein. The overproduced soluble GST-fusion protein was then applied to glutathione-Sepharose 4B column chromatography; the sample harboring the fusion protein evidenced a high degree of purity when analyzed via SDS-PAGE and Western blot analysis. Its activity was quantied by cleaving the synthetic peptide Z-FR-AMC, Z-LLE-AMC, and Suc-AAF-AMC, and the optimal pH for the protease activity was 8, 9.5, and 9, respectively.
Kim Sang-Soo;Kim Kyung-Hee;Park Hyo-Jin;Hur Eun-hye;Rhim Hyangshuk
Journal of Life Science
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v.15
no.6
s.73
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pp.961-967
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2005
Macrophage migration inhibitory fartor (MIF), known as a cytokine, is a multifunctional protein that is ubiquitously expressed in a variety of cells and tissues; however, enzymatic function of MIF still remains elusive in cells. In this study, we assessed details of the tautomerase activity of MIF. We established rapid purification condition for MIF by using pGEX system and compared the L-dopachrome tautomerase activity of GST-MIF, tMIF, and MIF. The results show that GST (glutathione S-transferase)-epitope tag or N-terminal amino acids flanking the essential $P^{2}$ almost completely abrogated L-dopachrome tautomerase activity of MIF. Subsequently, to determine whether the N-terminal tags have effects on oligomerization of MIF, protein cross-linking products were analyzed on $15\%$ SDS-PACE. The result demonstrates that N-terminal tags are dispensable for the formation of MIF's homooligomers. Thus, the results imply that exposure of If containing hydrophobic pocket in the active site is critical for L-dopachrome tautomerase activity of MIF. In addition, our study suggest that the MIF's tautomerase activity might be influenced by interacting with cellular partners.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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