쌀대신에 보리를 이용한 Monascus 고상배양의 기본적인 발효 특성을 연구함을 통하여, 대규모 고상배양 시스템을 통한 천연 적색색소의 생산 가능성을 검토하고자 하였다. 색소의 생산은 고상배양 3일후부터 6일까지 꾸준한 증가추세를 나타내었다. 종균의 접종량이 6∼8%사이일 경우에는 배양후 60시간만에 색소생산이 시작되었으며, 접종량이 5%이하일 경우에는 색소생산이 70시간 이후로 늦어지는 것으로 나타났다. 보리 배지를 30∼40분 동안 증자할 경우에는 색소 발현 시점이 45시간 내외로 단축되었으며, 증자시간이 20분 이하일 경우에는 배지의 불충분한 호화로 인하여 색소생산 시점이 길어졌다. 공기공급량이 0.6∼0.8 vvm사이에서 홍국균의 생장 및 색소의 생산이 활발히 일어났고, 고상배지의 초기 pH를 6으로 조절했을 때 균사성장과 색소발현 능력이 가장 우수하였다 한편 고상배양으로 7일동안 발효한 홍국보리를 사용하여 식중독미생물에 대한 항균여부를 확인한 결과, Escherichia coli, Salmonella 수Phimurium의 생장을 저해함을 확인하였다. 이상과 같이, 보리를 원료로 한 대규모 고상발효 시스템을 활용함으로써 Monascus sp. 유래의 천연색소 및 대사산물의 대량생산 가능성을 확인하였다.
Khampa, S.;Wanapat, Metha;Wachirapakorn, C.;Nontaso, N.;Wattiaux, M.
Asian-Australasian Journal of Animal Sciences
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제19권6호
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pp.837-844
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2006
Four, lactating dairy cows were randomly assigned according to a $2{\times}2$ Factorial arrangement in a $4{\times}4$ Latin square design to study supplementation of urea level (U) at 2 and 4% and sodium dl-malate (M) at 10 and 20 g/hd/d in concentrate. The treatments were as follows U2M10, U2M20, U4M10 and U4M20, respectively. The cows were offered the treatment concentrate at a ratio to milk yield at 1:2.5 and urea-treated rice straw was fed ad libitum. The results have revealed that rumen fermentation and blood metabolites were similar for all treatments. The populations of protozoa and fungal zoospores were significantly different as affected by urea level and sodium dl-malate. In addition, the viable bacteria were similar for amylolytic and proteolytic bacteria. Cellulolytic bacteria were significantly affected by level of sodium dl-malate especially Selenomonas ruminantium and Megasphaera elsdenii while Butyrivibrio fibrisolvens was significantly affected by level of urea supplementation. In conclusion, the combined use of concentrate containing high level of cassava chip at 75% DM with urea at 4% in concentrate and sodium dl-malate at 20 g/hd/d with UTS as a roughage could improv rumen ecology and microbial protein synthesis efficiency in lactating dairy cows.
Kim, Jin-Cheol;Son, Mi-Jung;Kim, Heung-Tae;Park, Gyung-Ja;Hahn, Hoh-Gyu;Nam, Kee-Dal;Cho, Kwang-Yun
The Plant Pathology Journal
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제16권3호
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pp.125-129
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2000
A rapid and efficient assay to determine melanin biosynthesis inhibition of Magnaporthe grisea, a causal agent of the rice blast, by chemicals was developed. Wells in 24-well plates were loaded with spore suspension of the fungus and three known melanin biosynthesis inhibitors of KC10017, tricyclazole, and carpropamid. Subsequent color changes of mycelia and culture media in the wells were observed 7 days after incubation. The wells treated with KC10017 (an inhibitor of polyketide synthesis step and/or pentaketide cyclization step) became colorless, whereas tricyclazole (an inhibitor of 1, 3, 8-trihydroxynaphthalene reductase) or carpropamid (an inhibitor of scytalone dehydratase)-treated wells exhibited red color. They did not show any inhibitory effect on fungal growth. The inhibition of reaction steps prior to 1, 3, 6, 8-tetrahydroxynaphthalene formation was easily determined by colorless medium and mycelia. However, it was impossible to distinguish between inhibition of reduction steps and inhibition of dehydration steps by colors of the cultures. It was accomplished through HPLC analysis of the melanin biosynthesis-involving pentaketide metabolites accumulated by the inhibitors. Through screening of a number of synthetic chemicals using the in vitro assay, we could find a novel chemical group of melanin biosynthesis inhibitor.
한국응용약물학회 1998년도 Proceedings of UNESCO-internetwork Cooperative Regional Seminar and Workshop on Bioassay Guided Isolation of Bioactive Substances from Natural Products and Microbial Products
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pp.128-128
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1998
Matrix metalloproteinases (MMPs) are a family of zinc-dependent proteases that degrade extracellular matrix and basement membrane. These enzymes are play important roles in tumor cell invasion and metastasis, as well as angiogenesis and other connective tissue diseases. In our screening program for inhibitors of MMP-2 from fungal metabolites, we have isolated novel non-peptidic inhibitors of MMPs, designated gelastatin A and B from the culture broth of Westerdykella multispora F50733. The structures of gelastatin A and B were determined to be 3-(5E-hexa-2E,4E-dienylidene-2-oxo-5,6-dihydro-2H-pyran-3yl)-propanoic acid and 3-(5Z-hexa-2E,4E-dienylidene-2-oxo-5,6-dihydro-2H-pyran-3yl)-propanoic acid, respectively. Gelastatin A and B exist as a mixture of two stereoisomers in a ratio of 2: 1. The 2: 1 mixture of gelastatin A and B inhibited activated MMP-2 and MMP-9 with an IC$\sub$50/ value of 0.63, 5.29 ${\mu}$M, respectively. They inhibited the invasion of B16F10 melanoma cells through basement membrane Matrigel with dose dependent.
Lim, Seon-Hwa;Kwak, A Min;Min, Kyong-Jin;Kim, Sang Su;Kang, Hee Wan
한국균학회소식:학술대회논문집
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한국균학회 2014년도 추계학술대회 및 정기총회
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pp.19-19
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2014
Pleurotus ostreatus, P. eryngii, and Flammulina velutipes are major edible mushrooms that account for over 89% of total mushroom production in Korea. Recently, Agrocybe cylindracea, Hypsizygus marmoreus, and Hericium erinaceu are increasingly being cultivated in mushroom farms. In Korea, the production of edible mushrooms was estimated to be 614,224 ton in 2013. Generally, about 5 kg of mushroom substrate is needed to produce 1 kg of mushroom, and consequently about 25 million tons of spent mushroom substrate (SMS) is produced each year in Korea. Because this massive amount of SMC is unsuitable for reuse in mushroom production, it is either used as garden fertilizer or deposited in landfills, which pollutes the environment. It is reasonably assumed that SMS includes different secondary metabolites and extracellular enzymes produced from mycelia on substrate. Three major groups of enzymes such as cellulases, xylanases, and lignin degrading enzymes are involved in breaking down mushroom substrates. Cellulase and xylanase have been used as the industrial enzymes involving the saccharification of biomass to produce biofuel. In addition, lignin degrading enzymes such as laccases have been used to decolorize the industrial synthetic dyes and remove environmental pollutions such as phenolic compounds. Basidiomycetes produce a large number of biologically active compounds that show antibacterial, antifungal, antiviral, cytotoxic or hallucinogenic activities. However, most previous researches have focused on therapeutics and less on the control of plant diseases. SMS can be considered as an easily available source of active compounds to protect plants from fungal and bacterial infections, helping alleviate the waste disposal problem in the mushroom industry and creating an environmentally friendly method to reduce plant pathogens. We describe extraction of lignocellulytic enzymes and antimicrobial substance from SMSs of different edible mushrooms and their potential applications.
The fungal products dibenzodioxocinones promise a novel class of inhibitors against cholesterol ester transfer protein (CEPT). Knowledge as to their biosynthesis is scarce. In this report, we characterized four more dibenzodioxocinones, which along with a previously described member pestalotiollide B, delimit the dominant spectrum of secondary metabolites in P. microspora. Through mRNA-seq profiling in $g{\alpha}1{\Delta}$, a process that halts the production of the dibenzodioxocinones, a gene cluster harboring 21 genes including a polyketide synthase, designated as pks8, was defined. Disruption of genes in the cluster led to loss of the compounds, concluding the anticipated role in the biosynthesis of the chemicals. The biosynthetic route to dibenzodioxocinones was temporarily speculated. This study reveals the genetic basis underlying the biosynthesis of dibenzodioxocinone in fungi, and may facilitate the practice for yield improvement in the drug development arena.
Park, Mi-Jeong;Lee, Hyorim;Ryoo, Rhim;Jang, Yeongseon;Ka, Kang-Hyeon
한국균학회지
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제49권4호
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pp.455-467
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2021
Macrofungi are valuable resources as novel drug candidates, new biomaterials, and edible materials. Recently, genetic approaches pertaining to macrofungi have been continuously growing for their identification, molecular breeding, and genetic engineering. However, purification and amplification of fungal DNA is challenging because of the rigid cell wall and presence of PCR inhibitory metabolites. Here, we established a direct PCR method to provide a rapid and efficient method for PCR-grade macrofungal DNA preparation applicable to both conventional PCR and real-time PCR. We first optimized the procedure of lysis and PCR using the mycelia of Lentinula edodes, one of the most widely consumed macrofungal species. Lysates prepared by neutralizing with (NH4)2SO4 after heating the mycelia in a mixture of TE buffer and KOH at 65℃ for 10 min showed successful amplification in both conventional and real-time PCR. Moreover, the addition of bovine serum albumin to the PCR mixture enhanced the amplification in conventional PCR. Using this method, we successfully amplified not only internal transcribed spacer fragments but also low-copy genes ranging in length from 500 to 3,000 bp. Next, we applied this method to 62 different species (54 genera) of macrofungi, including edible mushrooms, such as Pleurotus ostreatus, and medicinal mushrooms such as Cordyceps militaris. It was found that our method is widely applicable to both ascomycetes and basidiomycetes. We expect that our method will contribute to accelerating PCR-based approaches, such as molecular identification, DNA marker typing, gene cloning, and transformant screening, in macrofungal studies.
Song, Ja-Gyeong;Ha, Lee Su;Ki, Dae-Won;Choi, Dae-Cheol;Lee, In-Kyoung;Yun, Bong-Sik
Mycobiology
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제49권6호
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pp.604-606
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2021
In our ongoing search for new secondary metabolites from fungal strains, one novel compound (1) and nine known compounds (2-10) were isolated from the EtOAc-soluble layer of the culture broth of Panus rudis. The culture broth of P. rudis was extracted in acetone and fractionated by solvent partition; column chromatography using silica gel, Sephadex LH-20, and Sephadex G-10; MPLC; and HPLC. The structures of isolated compounds were elucidated by one- and two-dimensional NMR and LC-ESI-mass measurements. One new compound, panepoxydiol (1), and nine known compounds, (E)-3-(3-hydroxy-3-methylbut-1-en-1-yl)-7-oxabicyclo[4.1.0]hept-3-ene-2,5-diol (2), isopanepoxydone (3), neopanepoxydone (4), panepoxydone (5), panepophenanthrin (6), 4-hydroxy-2,2-dimethyl-6-methoxychromane (7), 6-hydroxy-2,2-dimethyl-3-chromen (8), 2,2-dimethyl-6-methoxychroman-4-one (9), 3,4-dihydroxy-2,2-dimethyl-6-methoxychromane (10), were isolated from the culture broth of P. rudis. This is the first report of isolation of a new compound panepoxydiol (1) and nine other chemical constituents (2-5, 7-10) from the culture broth of P. rudis.
Zea mays, known as maize or corn, is a major staple crop and an important source of energy for humans and animals, thus ensuring global food security. Approximately 9.4% of the loss of total annual corn production is caused by pathogens including fungi, bacteria, and viruses, resulting in economic losses. Although the use of fungicides is one of the most common strategies to control corn diseases, the frequent use of fungicides causes various health problems in humans and animals. In order to overcome this problem, an eco-friendly control strategy has recently emerged as an alternative way. One such eco-friendly control strategy is the use of beneficial microorganisms in the control of plant pathogens. The beneficial microorganisms can control the plant pathogens in various ways, such as spatial competition with plant pathogens, inhibition of fungal or bacterial growth via the production of secondary metabolites or antibiotics, and direct attack to plant pathogens via enzyme activity. Here, we reviewed microorganisms as biocontrol agents against corn diseases.
Beauveria bassiana (Cordycipitaceae, Hypocreales, Ascomycota) is an anamorphic fungus having a potential to be used as a biological control agent because it parasitizes a wide range of arthropod hosts including termites, aphids, beetles and many other insects. A number of bioactive secondary metabolites (SMs) have been isolated from B. bassiana and functionally verified. Among them, beauvericin and bassianolide are cyclic depsipeptides with antibiotic and insecticidal effects belonging to the enniatin family. Non-ribosomal peptide synthetases (NRPSs) play a crucial role in the synthesis of these secondary metabolites. NRPSs are modularly organized multienzyme complexes in which each module is responsible for the elongation of proteinogenic and non-protein amino acids, as well as carboxyl and hydroxyacids. A minimum of three domains are necessary for one NRPS elongation module: an adenylation (A) domain for substrate recognition and activation; a tholation (T) domain that tethers the growing peptide chain and the incoming aminoacyl unit; and a condensation (C) domain to catalyze peptide bond formation. Some of the optional domains include epimerization (E), heterocyclization (Cy) and oxidation (Ox) domains, which may modify the enzyme-bound precursors or intermediates. In the present study, we analyzed genomes of B. bassiana and its allied species in Hypocreales to verify the distribution of NRPS-encoding genes involving biosynthesis of beauvericin and bassianolide, and to unveil the evolutionary processes of the gene clusters. Initially, we retrieved completely or partially assembled genomic sequences of fungal species belonging to Hypocreales from public databases. SM biosynthesizing genes were predicted from the selected genomes using antiSMASH program. Adenylation (A) domains were extracted from the predicted NRPS, NRPS-like and NRPS-PKS hybrid genes, and used them to construct a phylogenetic tree. Based on the preliminary results of SM biosynthetic gene prediction in B. bassiana, we analyzed the conserved gene orders of beauvericin and bassianolide biosynthetic gene clusters among the hypocrealean fungi. Reciprocal best blast hit (RBH) approach was performed to identify the regions orthologous to the biosynthetic gene cluster in the selected fungal genomes. A clear recombination pattern was recognized in the inferred A-domain tree in which A-domains in the 1st and 2nd modules of beauvericin and bassianolide synthetases were grouped in CYCLO and EAS clades, respectively, suggesting that two modules of each synthetase have evolved independently. In addition, inferred topologies were congruent with the species phylogeny of Cordycipitaceae, indicating that the gene fusion event have occurred before the species divergence. Beauvericin and bassianolide synthetases turned out to possess identical domain organization as C-A-T-C-A-NM-T-T-C. We also predicted precursors of beauvericin and bassianolide synthetases based on the extracted signature residues in A-domain core motifs. The result showed that the A-domains in the 1st module of both synthetases select D-2-hydroxyisovalerate (D-Hiv), while A-domains in the 2nd modules specifically activate L-phenylalanine (Phe) in beauvericin synthetase and leucine (Leu) in bassianolide synthetase. antiSMASH ver. 2.0 predicted 15 genes in the beauvericin biosynthetic gene cluster of the B. bassiana genome dispersed across a total length of approximately 50kb. The beauvericin biosynthetic gene cluster contains beauvericin synthetase as well as kivr gene encoding NADPH-dependent ketoisovalerate reductase which is necessary to convert 2-ketoisovalarate to D-Hiv and a gene encoding a putative Gal4-like transcriptional regulator. Our syntenic comparison showed that species in Cordycipitaceae have almost conserved beauvericin biosynthetic gene cluster although the gene order and direction were sometimes variable. It is intriguing that there is no region orthologous to beauvericin synthetase gene in Cordyceps militaris genome. It is likely that beauvericin synthetase was present in common ancestor of Cordycipitaceae but selective gene loss has occurred in several species including C. militaris. Putative bassianolide biosynthetic gene cluster consisted of 16 genes including bassianolide synthetase, cytochrome P450 monooxygenase, and putative Gal4-like transcriptional regulator genes. Our synteny analysis found that only B. bassiana possessed a bassianolide synthetase gene among the studied fungi. This result is consistent with the groupings in A-domain tree in which bassianolide synthetase gene found in B. bassiana was not grouped with NRPS genes predicted in other species. We hypothesized that bassianolide biosynthesizing cluster genes in B. bassiana are possibly acquired by horizontal gene transfer (HGT) from distantly related fungi. The present study showed that B. bassiana is the only species capable of producing both beauvericin and bassianolide. This property led to B. bassiana infect multiple hosts and to be a potential biological control agent against agricultural pests.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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