The effect of Fumonisin B1, a mycotoxin produced by Fusarium moniliforme on bacterial viruses P1 and Lambda, was investigated by the virus plaque assay. Fumonisin B1 inhibited the P1 viral multiplication in the concentration range from $100{\mu}g$/ml to $400{\mu}g$/ml. The inhibition was Fumonisin B1 concentration-dependent. Another bacterial virus Lambda multiplication was also inhibited by lower concentration of Fumonisin B1 ($10{\mu}g$/ml~$50{\mu}g$/ml). This inhibition was dependent on Fumonisin B1 and on virus-Fumonisin B1 reaction time. Sensitivity of bacteriophage Lambda to Fumonisin B1 was higher than that of P1 virus. Lambda vital DNA was treated in vitro with Fumonisin B1 at various concentration. Significant DNA fragmentation by Fumonisin 191 was observed in the agarose gel electrophoresis. Lambda viral DNA was partially digested even in the Fumonisin B1 $10{\mu}g$ and the level of its fragmentation was dependent on Fumonisin B1 amount up to $30{\mu}g$ per assay.
Fumonisin B1 is a secondary metabolite of Fusarium moniliforme, a contaminant of corn and corn product. Fumonisin B1 has been shown to be responsible for major toxicological effects of the fungus in rats, horses, and pigs. Fumonisin B1 induced λ DNA fragmentation, which was increased with incubation time, reducing agent NADPH and metal ion (Cu2+). The DNA damage was inhibited by dimethyl sulfoxide (DMSO) or mannitol as radical scavenger for free radicals. DNA fragmentation, induced by fumonisin B1 in the presence of 1 mM NADPH and 0.1 mM CuCl2, was inhibited by 100 mM DMSO. By the in vitro reaction of fumonisin B1 with supercoiled plasmid pBR322 DNA, plasmid DNA was relaxed, eventually linearized in the agarose gel electrphoresis. From rifampicin sensitive E. coli CSH138 in bacterial mutagenesis system, the rifampicin resistant E. coli mutants were obtained by fumonisin B1. These results suggest that fumonisin B1 may be a possible environmental mutagen in bacterial mutagen assay system.
The purpose of this study was to determine the effect of sulfinpyrazone on fumonisin $B_1$-induced elevation of free sphingoid bases in LLC-$PK_1$ cells. Fumonis ins are a family of mycotoxins produced by the fungi Fusarium moniliforme which is common contaminant in corn. Fumonisins are also potent inhibiors of sphingosine and sphinganine N-acyltransferases (ceramide synthases), key enzymes in sphingolipid metabolism resulting in the elevation of free sphinganine. The cytosolic concentration of fumonisin B1 was known to be closely proportional to the elevation of free sphinganine in LLC-PK1 cells [Yoo, H.-S., Norred, W.P., Wang, E., Merrill, A.H., Jr., and Riley, R.T. (1992) Toxicol. Appl.Pharmacol. 114. 9-15]. Sulfinpyrazone, an anion transport inhibitor, reduced the elevated level of free sphinganine resulting from fumonisin B1 inhibition of de novo sphingolipid biosynthesis. Fumonisin B1 at a concentration of 20${\mu}$M showed approximately 120pmol/$10^6$ cells relative to 3-10pmol/$10^6$ cells in control cultures, and sulfinpyrazone at a concentration of 200${\mu}$M partially reversed the increased level of free sphinganine induced by fumonisin $B_1$ down to normal level after exposure to fumonisin $B_1$ for 8 to 24hr. However, the reduced effect of sulfinpyrazone on the fumonisin $B_1$-induced elevation of intracellular sphinganine was not shown after 24hr. Fumonisin $B_1$ exposure to LLC-PK1 cells for 36 and 48hr showed approximately 74 and 80pmol per $10^6$ cells relative to 82 and 76pmol,respectively, in fumonisin $B_1$ plus sulfinpyrazone-treated cultures. Sulfinpyrazone-induced less elevation of free sphinganine in confluent cells after exposure to fumonisin $B_1$ suggested that either sulfinpyrazone may block the availability of fumonisin $B_1$ to cells or act on the fumonisin $B_1$ interaction with ceramide synthase.
Fumonisins are specific inhibitors of ceramide synthase in sphingolipid metabolism. An alteration in sphingolipid metabolism as a result of fumonisin exposure is related to cell death (Yoo et al., 1992). The objective of this study was to investigate whether elevated free sphinganine levels are related to the sensitivity of cultured cells to fumonisin exposure. Fumonisin $B_1$ elevated the intracellular free sphinganine concentraions in both LLC-$PK_1$ and Chinese hamster ovary (CHO) cells. However, CHO cells are resistant to fumonisin cytotoxicity at 50${u}m$, while LLC-$PK_1$ cells are sensitive at concentrations greater than 357M. The intracellular concentration of free sphinganine in LLC-$PK_1$ cells treated at 50${u}m$ fumonisin $B_1$ for 72 h was approximately 1450 pmol/mg protein relative to the 37 pmol observed in the control culture. Under the same conditions, the population of apoptotic cells in the 50${u}m$ fumonisin $B_1$-treated culture was approximately 37% of the total compared to 12% in the control. The caspase III-like activity after 72 h in the 50${\mu}$M fumonisin $B_1$-exposed culture Increased to approximately 50 $pmol/mg$ protein/hr compared to 6 $pmol/mg$ protein/hr in the control. L-cycloserine, a serine palmitoyltransferase inhibitory reduced the fumonisin $B_1$-stimulated caspase III-like activity down to the control level. Under the same culture conditions, the intracellular concentration of free sphinganine after-cycloserine plus fumonisin $B_1$ treatment was 140 pmol/mg protein compared to 1450 $pmol/mg$ protein in fumonisin $B_1$ alone. The intracellular concentration of free sphinganine in CHO cells treated with 50${u}m$ fumonisin $B_1$ for 72 h was al)proximately 460 pmol/mg protein, indicating that the mass amount of elevated free sphinganine in the CHO cells was about 32% of that in LLC-$PK_1$ cells. Adding exogenous sphinganine to the CHO cells along with 50${u}m$ fumonisin $B_1$ treatment for 72 h caused both necrosis and apoptosis. In conclusion, the elevated endogenous sphinganine acts as a contributing factor to the fumonisin-induced cell death.
Fumonisin B1, a mycotoxin, is thought to induce esophageal cancer in humans and apoptosis in animal cells by inhibiting ceramide synthase. Dumonisin Bl may also generate reactive oxygen species directly or indirectly, leading to DNA damage and lipid peroxidation. In this study, a DNA fragmentation assay, dichlorofluorescein (DCF) analysis, and single cell gel electrophoresis (SCGE) were used to investigate the involvement of cellular free radicals, specifically hydrogen peroxide, in the DNA damaging activity of fumonisin B1. From an in vitro DNA fragmentation assay, E. coli DNA, damage by fumonisin Bl was increased by the addition of superxide dismutase (SOD) and decreased by catalase. SCGE and DCF analysis in vivo showed that the nuclear DNA damage and intracellular free radicals in cultured rat hepatocytes treated with fumonisin B1 were increased with the concentration of fumonisin Bl . DNA damage and free radical generation were inhibited by the addition of catalase. Fumonisin Bl , in the presence of SOD, produces hydrogen peroxide causing oxidative DNA damage and protein malfunction, leading to genotoxicity and cytotoxicity of the toxin.
한국산 사료용 옥수수로부터 fumonisin $B_1$과 $B_2$ 오염 분포 현황을 조사하기 위하여 여러 지역에서 시료를 채취한 후 HPLC의 형광검출기를 이용하여 분석하였다. 분석된 197개 시료 중에서 fumonisin독소의 오염범위와 평균치는 $FB_1$이 72.6%인 143개, $FB_2$는 62.4%인 128개가 오염되었으며 그 범위는 각각 $0{\sim}224.2\;{\mu}g/g$과 $0{\sim}56.98\;{\mu}g/g$을 나타내었다. 각도별로 생산되는 옥수수의 총 fumonisin오염상황은 143개 시료중 $1\;{\mu}g/g$ 이하의 오염은 15.4%, $10\;{\mu}g/g$ 이상의 오염은 37.5% 그리고 $30\;{\mu}g/g$ 이상의 오염은 14%를 각각 나타내었으며 각도별 $10\;{\mu}g/g$ 이상의 오염율을 살펴보면 강원도가 52.3%로 가장 높았고 경기(45.0%), 전북(40.0%), 충북(26.9%) 및 경북(11.1)의 순으로 나타났다. 또한 각도에서 수집한 옥수수로부터 연도별로 총 fumonisin독소의 농도별 오염현황을 조사한 결과 1996년산이 1995년산에 비하여 $10\;{\mu}g/g$이상 검출된 시료가 더많은 것으로 나타났으며 연도별 평균 fumonisin $B_1$과 $B_2$의 오염현황은 모두 1995년산이 1996년산에 비하여 현저히 높게 나타났으며 $FB_1$은 1995년도에 분석한 시료에서는 평균 오염수준이 경기, 강원, 전북, 충북 및 경북의 순으로 높게 나타났고 1996년산은 평균 오염수준이 강원, 경북, 전북 및 경기의 순으로 나타났으며 $FB_2$의 경우도 비슷한 경향을 나타내었다.
Ninety-two isolates of Fusarium species were obtained from Chinese corn samples. The predominant Fusarium species isolated from corn seeds were F. moniliforme, F. proliferatum, F. oxysporum and F. subglutinans, and all 13 species were identified. Each isolate was grown on autoclaved wheat grains and wheat cultures were fed by twenty-one-day-old female rats for the toxicity test. Twenty-six out of 92 isolates caused the death accompanying feed refusal, severe weight loss, liver damage, and hemorrhages in the stomach and intestines. Of the toxigenic isolates, 17 isolates of F. moniliforme, 4 of F. oxysporum, 3 of F. proliferatum, and one of each F. sporotrichioides and unknown species were lethal to rats. The analyses of fumonisin B1 production of the 26 toxigenic Fusarium isolates were carried out by thin layer chromatography and high-performance liquid chromatography, and fumonisin B1 was confirmed by mass spectrometry. Fumonisin B1 was produced in wheat culture at levels ranging from 280 $\mu\textrm{g}$/g to 3,952 $\mu\textrm{g}$/g by all of toxigenic F. moniliforme and F. proliferatum, but by none of the other toxigenic Fusarium species. The present results suggest the high possibility of natural occurrence of fumonisin B1 in corn samples imported from China.
Fumonisins are a family of mycotoxins produced by the fungus Fusarium moniliforme which is a common contaminant in corn. Fumonisins are potent inhibitors of sphingosine and sphinganine N-acyltransferase (ceramide synthase), key enzymes in sphingolipid metabolism. The purpose of this study was to provide the evidence that the elevated levels of free sphingoid bases (primarily sphinganine) and depletion of complex sphingolipids were closely related to the inhibition of cell growth in LLC-$PK_1$ cells exposed to fumonisin $B_1$$(\leq 35 {\mu}M)$. Concentrations of fumonisin $B_1$ between 10 and $35 {\mu}M$ were known to inhibit cell growth without cytotoxicity in $LLC-PK_1$ cells (Yoo et al. Toxicol. Appl. Pharmacol. 114, 9-15, 1992). Cells exposed to 35$\mu M$ fumonisin B$_1$ for 48 and 72 hr developed a fibroblast-like (elongated and spindle-shaped) appearance and were less confluent than normal cells. At between 24 and 48 hr after exposure to fumonisin $B_1$ cells were beginning to show the inhibition of cell growth and at 72 hr the number of viable cells in fumonisin-treated cultures was about 50% of concurrent control cultures. During the 24 hr lag period preceding inhibition of cell growth, the free sphinganine levels in cells exposed to $35 {\mu}M$ fumonisin $B_1$ were highly elevated (approximately 230 fold higher than normal cells). The elevated levels of free sphinganine were $435\pm14$$pmoles/{10^6}$ cells at 48 hr and approximately TEX>$333\pm11$$pmoles/{10^6}$ cells in cells exposed to $35{\mu}M$ fumonisin$B_1$ at 72 hr, while the levels of free sphinganine in normal cells were less than 2$pmoles/{10^6}$ cells. Under the same condition, depletion of intracellular complex sphingolipids as a consequence of fumonisin inhibition of de novo sphingolipid biosynthesis and turnover pathway was appeared. Content of free sphingold bases in dividing cells was more elevated than in confluent cells at 24-48 hr after cells were exposed to $20{\mu}M$ fumonisin $B_1$. The dividing cells were showing the inhibition of cell growth at 48-72 hr and $20{\mu}M$ fumonisin $B_1$. The results of this study support the hypothesis that the inhibition of cell growth is very well related to the disruption of sphingolipid metabolism in $LLC-PK_1$ cells.
Levels of fumonisins, mycotoxins produced by fungal species, must be accurately and rapidly monitored to ensure food safety. In this study, using surface plasmon resonance sensor, a batch-type biosensor was fabricated to detect fumonisin $B_1$. By applying this biosensor to fumonisin $B_1$ solutions of 0 to 6 ppm, a significant calibration model was developed for measurement. Coefficient of determination in regression analysis for the model was 0.920. Results indicate that detection of fumonisin $B_1$ by surface plasmon resonance biosensor was highly feasible.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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