• Asian-Australasian Journal of Animal Sciences
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• 제12권4호
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• pp.520-524
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• 1999

The present experiments were designed to examine whether exogenous DNA injected into the germinal crescent region (GCR) of early stage of developing embryos, which is considered to be the main place from which PGCs originate, can be transferred to recipient chicken embryos. In this experiment, Miw Z (DNA) dissolved in the transfection reagent (TR: Boehringer, Germany) was introduced into the GCR of donor embryos at stage 3-5 or 9-11, followed by continued incubation until the stage 13-15 of embryonic development. The PGCs collected from the embryonic blood vessels were examined for the incorporation of the injected DNA into the PGCs by the methods of X-gal staining and PCR analysis. As the results, the foreign DNA was successfully incorporated into the PGCS, leading to their transfer to the gonadal tissues. The present results, therefore, suggest that the early stage (3-5 or 9-11) of chicken embryonic development would be more successful than stage 13-15 in transferring exogenous genes to the recipient embryos, leading to the possibility of producing transgenic chicken medianting the PGCS.

• 한국가축번식학회지
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• 제21권1호
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• pp.1-7
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• 1997

형질 전환동물의 유선을 이용한 단백질의 생산이 보편화되고 있지만 원하는 단백질이 만들어지기 까지 많은 시간과 노력이 필요하며 기술적인 어려움이 항시 따른다. 그래서 보다 쉽게 재조합된 유전자의 발현 정도를 시험하는 in vitro에서의 시험방법의 개발은 중요한 의미가 있다고 하겠다. 따라서 본 연구에서는 인간의 유방암을 가진 환자의 유선에서 유래된 MCF7 cell line을 이용하여 유선 특징의 유전자 발현을 위한 세포 배양 모델을 개발하고자 하였다. 우선 소의 카제인의 cDNA를 MMTV-LTR의 통제하에 clone하였으며, 이것을 CaPO4의 침전법으로 MCF7 cell에 transfection 시킨 다음, HAT 배양액으로 선발하였으며, dexamethasone으로 유도시키고, 발현되는 정도를 면역 항체를 이용하여 분석하였다. 선발된 세포는 dexamethasone에 의하여 MMTV promoter가 유도되는 것을 확인할 수 있었다. 따라서 MCF7 cell과 같이 다양한 steroid receptor를 가지고 있는 세포는 유선 특정의 유전자 발현을 위한 세포 배양 모델에 유용하게 사용이 될 수 있을 것이다.

• Journal of Microbiology
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• 제39권4호
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• pp.300-304
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• 2001

Epstein-Barr Virus(EBV)-transformed lymphoblastoid B cell lines, BLCL which expresse antigens, are potential antigen-presenting cells(APCs) for the induction of CTL in vitro. However transfection of BLCLs with subsequent selection by antibiotics is notoriously difficult because plating efficiencies of BLCLsare reported to be 1% or less. To generated stable transfectants of BLCLs we produced high titers of retroviruess encoding pp 65 antigen of human cytomegalovirus of foreign antigens and trans-duced them of BLCLs. The pp 65 gene was cloned into the retroviral vector pLXSN. The recombinant retroviral vector was transfected to ecotropic packaging cell line, CP&E86, and this polyclonal recom-binant retrovirus was transduced to PA317 that is amphotropic pakaging cell line. The titers of colned PA317 amphotropic retroviruses ranged from 5 to $\times$10$^{6}$ colony forming units (CFU)per ml (CFU/ml) We performed three rounds of consecutive transductions to BLCLs in order to improve the clon-ing effieiencies. The expression of recombinant HCMV-pp65 antigen was more than 20% after the final transduction. THe third-transduced BLCLs were easily selected in optimal concentration of G418. BLCLs expressing foreign antigens could be used as target cells for CTL assay and/or as APCs for induction of in vitro CTL responses specific for viral and tumor antigens.

• Reproductive and Developmental Biology
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• 제38권2호
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• pp.71-77
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• 2014

The specific genetic modification in porcine somatic cells by gene targeting has been very difficult because of low efficiency of homologous recombination. To improve gene targeting, we designed three kinds of knock-out vectors with ${\alpha}1,3$-galactosyltransferase gene (${\alpha}1,3$-GT gene), DT-A/pGT5'/neo/pGT3', DT-A/NLS/pGT5'/neo/pGT3' and pGT5'/neo/ pGT3'/NLS. The knock-out vectors consisted of a 4.8-kb fragment as the 5' recombination arm (pGT5') and a 1.9-kb fragment as the 3' recombination arm (pGT3'). We used the neomycin resistance gene (neo) as a positive selectable marker and the diphtheria toxin A (DT-A) gene as a negative selectable marker. These vectors have a neo gene insertion in exon 9 for inactivation of ${\alpha}1,3$-GT locus. DT-A/pGT5'/neo/pGT3' vector contain only positive-negative selection marker with conventional targeting vector. DT-A/NLS/pGT5'/neo/pGT3' vector contain positive-negative selection marker and NLS sequences in upstream of 5' recombination arm which enhances nuclear transport of foreign DNA into bovine somatic cells. pGT5'/neo/pGT3'/NLS vector contain only positive selection marker and NLS sequence in downstream of 3' recombination arm, not contain negative selectable marker. For transfection, linearzed vectors were introduced into porcine ear fibroblasts by electroporation. After 48 hours, the transfected cells were selected with $300{\mu}g/ml$ G418 during 12 day. The G418-resistant colonies were picked, of which 5 colonies were positive for ${\alpha}1,3$-GT gene disruption in 3' PCR and southern blot screening. Three knock-out somatic cells were obtained from DT-A/NLS/ pGT5'/neo/pGT3' knock-out vector. Thus, these data indicate that gene targeting vector using nuclear localization signal and negative selection marker improve targeting efficiency in porcine somatic cells.

• Applied Biological Chemistry
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• 제44권4호
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• pp.211-214
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• 2001

Drosophila melanogaster Schneider line 2(S2)세포의 외래 단백질 발현 시스템을 이용한 외래 단백질의 한시적 발현을 검토하고, 서로 다른 terminator를 이용하였을 때의 단백질 발현 및 mRNA 발현 정도를 검토하였다. 한시적 발현의 경우 transfection agent를 제거하고 36-48시간 동안 배양한 경우, 가장 높은 green fluorescent protein(GEP)의 발현을 보였다. SV4O p(A), SV4O small T-antigen, 인간 gastrin 3'UTR을 terminator로 지니는 발현 벡터시스템에 각각 endostatin유전자를 cloning시킨 뒤 재조합 endostatin의 mRNA의 발현 정도를 비교하였다. 한시적 발현을 시킨 뒤 36시간 후 endostatin의 발현 정도를 비교해 본 결과 SV40 p(A)를 terminator로 사용했을 때 mRNA및 단백질의 발현이 가장 높았다.

• Reproductive and Developmental Biology
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• 제32권3호
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• pp.153-158
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• 2008

형질 전환 동물 생산에는 조직 및 시기 특이적 발현 조절이 가능하다는 장점 때문에 유즙 내로 외부 유전자를 발현시키는 시스템이 널리 이용되고 있다. 유전자 발현 즉, 단백질 생산은 프로모터의 강도뿐만 아니라 mRNA의 안정성에 의해서도 조절된다. 특히, polyadenylation에 의한 poly A의 길이는 in vivo와 올 in vitro에서 mRNA 안정성 및 목적 유전자의 번역효율에 영향을 준다. 본 연구에서는 이러한 mRNA 안정성이 목적 유전자의 발현에 미치는 영향을 알아보기 위해 3'-UTR 염기 서열을 분석하였다. 이 3'-untranslated region(UTR) 내의 poly A signal을 기준으로 putative cytoplasmic polyadenylation element(CPE) 부위와 downstream elements(DSE: U-rich, G-rich, GU-rich)의 염기 서열을 분석하고, 각각의 element를 기준으로 15 종의 luciferase reporter vector를 제작하여, 생쥐 유선 세포주(HC11)와 돼지 유선 세포주(PMGC)에 각각 transfection시킨 후 48시간 동안 배양하고 luciferase 발현량을 분석하였다. PMGC의 경우, luciferase의 발현은 exon 9의 CPE 2,3 및 DSE 1을 포함한 #6 construct에서 유의적으로 높은 발현량을 보였으며, exon 9의 CPE 2, 3과 DSE를 모두 포함하고 있는 #11 construct에서도 유의적으로 높은 발현량을 보였다. 이러한 결과는 형질 전환 돼지 생산에 있어 #6 및 11 construct의 사용은 목적의 유전자를 효과적으로 발현시키는데 기여할 것으로 사료된다.