Kim T. S.;Cao Y.;Cheong H. T.;Yang B. K.;Park C. K.
Reproductive and Developmental Biology
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v.29
no.3
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pp.149-154
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2005
The purpose of this study was the analysis of sperm ability in Specific Pathogen Free (SPE) miniature pig for production of bio-organ. The collected semen was diluted with extender and stored at $17^{\circ}C$t for up to 7 days. The semen samples were evaluated at 0, 1, 3, 5, and 7 days of storage for analysis of sperm ability. Sperm ability was evaluated by examining viability, progressive motility, sperm abnormality and intensity of the sperm membrane. Also, the semen was processed according to the convenient freezing method, and frozen-thawed sperm was evaluated by examining viability, capacitation and acrosome reaction using chlortetracycline (CTC) staining. Motility of spermatozoa of SPF miniature pig was significantly (P<0.05) lower on 3 days or later compared to the Duroc, Yorkshire and Landrace in domestic boar. The percentage of abnormal spermatozoa of Landrace were significantly (P<0.05) higher than in SPF miniature pig, Duroc and Yorkshire that had a similar percentage on 5 or 7 days of sperm storage. The percentage of spermatozoa with coiled tail decreased during the storage period but there were no significant difference. On the other hand, viability of frozen-thawed spermatozoa had a significantly (P<0.05) lower in SPF miniature pig than in other domestic boars. CTC patterns had no significant difference, but SPF miniature pig had higher percentage of capacitated spermatozoa and lower percentage of acrosome-reacted it than domestic boars. Therefore, this study suggest that it is necessary to develop the suitable extender and freezing methods methods for the high viable rate and fertilizing ability in vitro.
Sa, S.J.;Wee, M.S.;Oh, J.Y.;Cheong, H.T.;Park, S.B.;Yang, B.K.;Kim, C.I.;Park, C.K.
Korean Journal of Animal Reproduction
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v.25
no.4
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pp.327-337
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2001
This study investigated the effects of superoxide dismutase (SOD) on lipid peroxidation and fertilizing ability in vitro of boar spermatozoa frozen-thawed. The percentages of motile sperm were highest when SOD of 10 units/$m\ell$ was added to washing medium for spermatozoa. However, the rates of motile sperm were not significantly different in different concentrations of SOD. On the other hand, the motile rates of sperm washed with SOD were lower in sperm inculbated for 120 min than 30 min regardless of the different concentrations of SOD. The percentage of spermatozoa that reached acrosome reaction were increased with incubation periods prolonged. No significant differences, however, were observed in acrosome reaction rates between sperm incubated with and without SOD supplementation for 0, 60 and 120 min. When oocyies inseminated with different concentrations of SOD, the penetration rates were significantly (P<0.05) higher in medium with 1 unit/$m\ell$ than 0, 10 and 100 units/$m\ell$ of SOD. However, the proportions of polyspermit oocytes were significantly (P<0.05) lower in medium with 10 and 100 units/$m\ell$ than 0 unit/$m\ell$ of SOD. In another experiment, the sperm suspension were also treated with different concentrations of SOD and were assayed far sulfhydryl(-SH) group content. In the groups treated with 100 units/$m\ell$ of SOD, sperm-SH group were higher than another groups. However, sperm-SH group content were not siginificantly different in spermatozoa treated with different concentrations of SOD. Under the same conditions, the lipid peroxidation of sperm was evaluated on the basis of malondialdehyde production. The addition of SOD to sperm suspension decreased the formation or malondialdehyde. However, there were not significantly different in sperm treated with different concentrations of SOD. The activity of sperm binding to zona pellucida was also evaluated through binding to salt-stored porcine oocytes. The sperm binding to zona pellucida were gradually increased with SOD concentrations added. The number of spermatozoa binded to zona pellucida were significantly (P<0.05) higher in medium with 100 units/$m\ell$ than 0 units/$m\ell$ of SOD. These findings suggested that SOD cause an enhancement penetrarion ability and sperm zona binding in boar spermatozoa frozen-thawed.
Kim, In-Cheul;Ryu, Jae-Weon;Cho, Kyu-Ho;Hong, Joon-Ki;Choi, Eun-Ji;Choi, Bong-Hwan;Park, Jun-Cheol;Moon, Hong-Kil;Son, Jung-Ho
Reproductive and Developmental Biology
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v.32
no.2
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pp.127-133
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2008
The objective of this study was two folds: to investigate the relationship between paternal identification rate and sperm quality parameters such as motility and sperm chromatin structure assay after heterospermic insemination; to see if mutual complement between tests and development of useful technique to enhance the fertility in artificial insemination. In individual boar's fertilizing ability, 3 high fertility boars showed significantly high fertility (p<0.05) compared to 3 low fertility boars, but there was no difference in litter size between two groups. Sperm motility test in pooled and individual semen using computer assisted sperm analysis (CASA) revealed that no significant difference among boars. The high fertile boar showed tendency of low %Red (High red fluorescence/green+red fluorescence) in sperm chromatin structure assay (SCSA) but paternal identification rate from piglets did not differ after heterospermic insemination. The correlation coefficient between individual or pooled semen function test and farrowing rates were well correlated as follows: %Red with litter size (r= - 0.53, p=0.03); %Red with paternal identification rates (r=-0.51, p=0.03); paternal identification rates with litter size (r=0.57, p=0.02). These results indicate that sperm chromatin structure assay and sperm quality parameter test in pooled semen are useful method to predict and evaluate the fertilizing capacity after heterospermic insemination in boars.
Kim, S.W.;Baik, C.S.;Kim, J.M.;Suh, B.H.;Lee, J.H.
Clinical and Experimental Reproductive Medicine
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v.17
no.2
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pp.197-202
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1990
Early studies demonstrated that seminal plasma has a factor which inhibits fertilizing ability in a reversible manner. The factor can be precipitated by centrifugation at 104000g for 18 hr. The precipitate was applied to a CM cellulose column and eluted with high salt concentration. This fraction possessed antifertilizing activity was applied to a Sephacryl S-200 column according to a modification of the method of Reddy et al. Using such inhibition of in vitro fertilization ability as an assay, we have carried our experiments to purified the factor. When the factor was added to IVF medium, 70-80% of fertilization was inhibited.
Defective or inadequate semen quality, usually presenting as low sperm count or poor sperm motility , is recognizable by semen analysis. However, the ability of spermatozoa to fertilize an ovum is not determined used in various experiments. In this study, hamster oocyte sperm penetration assay was used to determine the fertilizing capacity of sperms in 20 subjects which divided into two groups, group A with 10 normal fertile men, and group B with 10 infertile men. The % penetration in group A and group B were 61% and 35% respectively, which showed statistically not significant but fertilization index was significantly different between group A(FI=2.24) and group B(FI=O.05). Additionally it seemed that the percentage of sperm penetraton was influenced more by the motility of spermatozoa than by the number.
The aim of these experiments was to investigate the effects of bovine oviduct epithelial cells (OEC) derived from different segments to bind sperm binding and maintain their motility in vitro. In experiment 1, the number of sperm attached to OEC derived from isthmus or ampulla, the motility of unattached sperm during co-culture and fertilizing ability were assessed. In experiment 2, heparin treated sperm (hsp) or no treated sperm (nsp) were used to evaluate OEC binding ability of capacitated sperm. In experiment 1, regardless of their origin, approximately 65% of the sperm were attached to OEC within 2h. From 6h of co-culture, the numbers of unattached sperm on ampullary OEC were significantly higher than those on isthmic OEC (p<0.005). From 12h of co-culture, the motility of unattached sperm on isthmic OEC were significantly higher than those on ampullary OEC(p<0.05). The cleavage rate of oocytes inseminated on OEC derived from isthmic segment was also significantly higher than those from ampullary segment (p<0.01). In experiment 2, the numbers of unattached hsp on OEC were significantly higher than those of controls (p<0.01), between 2-24h examination. From 12h of co-culture, the motility of unattached nsp were significantly greater than those of hsp (p<0.01). These results show that bovine OEC derived from the isthmus play more important role(s) for sperm binding, maintaining motility and fertilization in vitro than those from the ampulla, and heparin induced capacitation may change sperm binding ability on OEC in vitro.
This study examines the effects on fertilization rate (FR), hatching rate (HR), and normal individual rate after artificial fertilization using frozen thawed sperm according to the cryoprotectant (DMSO) concentration and the period of cryopreserved sperm of longtooth grouper, Epinephelus bruneus. Performing artificial fertilization using frozen-thawed sperm, after freezing the sperm at different DMSO concentration of 5.0%, 7.5%, 10.0% respectively, FR were (DMSO 5.0%: $99.5{\pm}0.8%$, DMSO 7.5%: $99.5{\pm}0.7%$, and DMSO 10.0%: $99.6{\pm}0.6%$). The results are not significantly different from the control fresh sperm (100%). HR also (DMSO 5.0%: $96.2{\pm}2.3%$, DMSO 7.5%: $95.3{\pm}3.6%$, 10.0%: $96.6{\pm}1.8%$) were not significantly different in each group. The normal individual rate after hatching using with control fresh sperm ($98.4%{\pm}0.5$) and DMSO concentration level of 5.0% ($97.8{\pm}0.1%$) were not significantly different. However, with 7.5% ($97.2{\pm}0.6%$) and 10.0% DMSO concentrations ($95.9{\pm}0.2%$) are lower than the normal individual rate after hatching observed in the control and 5.0% DMSO. Performing artificial fertilization using frozen-thawed sperm at different frozen period (2 days, 2 years, and 3 years), 10% DMSO FR and HR of 3 years (FR; $66.8{\pm}1.8%$, HR: $82.0{\pm}12.9%$) and 2 years (FR; $78.5{\pm}14.8%$, HR: $79.3{\pm}0.6%$) cryopreserved sperm were lower than control (FR; 100%, HR: $91.1{\pm}3.6%$) and 2 days cryopreserved sperm (FR; $99.6{\pm}0.6%$, HR: $96.6{\pm}1.8%$). These results suggest suitable DMSO concentration ranges of cryopreservation sperm for E. bruneus is 5 to 10% and with 2 to 3 years cryopreservation period, cryopreservation sperm can be useful for seed production.
Procedures to separate motile. normal & motile and acrosome-reacted sperm with high efficiency have clinical application in Assisted Reproductive Technology in terms of increasing the probability of fertilization by a normal sperm and subsequent normal embryonic development. This study evaluated the effects of 10 sperm preparation techniques [Swim-up from a washed pellet (SU). Swim-up from semen (SO). Continuous Percoll Gradients I (PIC). Discontinuous Percoll Gradients I (PID). Continuous Percoll Gradients II(P II C). Discontinuous Percoll Gradients II(P II D), SpermPrep (SFC). Wang's tube (WT). Albumin Gradients (AG), Low temperature capacitation (LTC)] on motility (%), normal morphology (%), motile sperm recovery rate(%). morphologically normal & motile sperm recovery rate (%), true acrosome reaction (%) and fertilizing ability. A P II D proved to be an effective means of separating morphologically normal & motile sperm. Our results indicated the P II D has advantages as compared with other methods in terms of recovery rate. enhancement of motility and normal morphology. And a LTC seems to be an effective means of enhancing the true acrosome reaction and fertilizing ability. These results suggest that the combined method of LTC and P II D for separation of morphologically normal & motile sperm and acrosome reacted sperm may be a useful procedure for intrauterine insemination and in vitro fertilization in the management of male factor infertility as well as for isolation of subpopulation of sperm for basic research.
The aim of these experiments was to investigate the effects of oviduct epithelial cells on bovine in vitro fertilization. Oviduct epithelial cell monolayers (OEC) on the 4-well dish were prepared according to general procedures. Monolayers were formed within 5days. The medium for OEC culture (TCM199 with 10% FBS) was replaced with IVF-TALP 2h before each experiment. Macromolecules/proteins from oviductal conditioned medium (OM) were recovered by ultrafiltration, which desalted and concentrated macromolecules greater than 5kDa, and this OM were added to W medium (experiment 1). The cleavage rate in OM+OEC group was significantly higher than in OM group (p〈0.01). In this experiment 2, oocytes were inseminated on OEC with sperm which had been pre-incubated with OEC for 0 or 4h before insemination. In this experiment, oocytes were exposed to sperm only 8 h for clarifying the effect. After insemination, oocytes were cultured in CRlaa. At 42 h post insemination, oocytes were denuded and examined for evidence of cleavage. The cleavage rates of oocytes which were inseminated with OEC treated sperm for 4 h were significantly higher than those of the other group (p〈0.01). In conclusion, sperm released from OEC have more fertilizing ability than those before attachment.
The present study was undertaken to clarify the role of TEST-Yolk Buffer(TYB) as a factor for the improvement of human sperm fertility potential. We examined the effects of low temperature capacitation using TYB on sperm motility (%), motility pattern, normal morphology, true acrosome reaction, sperm penetration assay and human in vitro fertilization. Comparing the TYB method and swim-up method, the sperm motility(%) of selected sperm was not significantly different, but statistically significant differences were found in curvilinear velocity, linearity, lateral head displacement, normal morphology(%) and true acrosome reaction(%)(p<0.05). Results obtained from the sperm penetration assay demonstrated that the penetration index and penetration rate were increased significantly(p<0.05) when the spermatozoa were incubated in TYB, as compared with swim-up method. And fertilization of intact human oocytes was more succesful when spermatozoa were pretreated with TYB at $4^{\circ}C$ for 48 hours as compared with swim-up method. Our results show that TYB method have advantages in terms of enhancement of sperm hyperactivation, increased true acrosome reaction, increased ability to penetrate zona-free hamster ova and augmented fertilization of human oocytes, suggesting that TYB is superior in its ability to preserve sperm motility and fertilizing ability.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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