The extracellular endoinulase from Streptomyces sp. 556 was purified and characterized, The culture broth was fractionated by ammonium sulfate saturation followed by DEAE-cellulose column chromatography and 5ephadex G-200 gel filtration, The ultimately purified fraction revealed a single band in 7.5% polyacrylamide gel electropherogram. The purified enzyme showed the maximal activity at pH 5.5-6.0 and $50^{\circ}C$, but lost 93% of inulase activity after 30 min incubation at $55^{\circ}C$ . The essen.tial amino acid residue for catalytic activity appeared to be tryptophan. This endo inulase was activated by $Mn^{2+}$, whereas inactivated by $Ag^{+}$, $Hg^{+}$, $Cu^{2+}$, $Zn^{2+}$, $Fe^{3+}$ and $Mo^{6+}$ EDTA and 8-hydroxyquinoline inhibited the enzyme so that the enzyme was considered to be a metalloenzyme. The Km value for inulin was 0.287 mM, and no invertase or $\alpha$-glucosidase activity was found in the enzyme.
Journal of the Society of Cosmetic Scientists of Korea
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v.37
no.3
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pp.265-273
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2011
In this study, the antioxidative and inhibitory effects on tyrosinase and elastase of Hippophae rhamnoides (H. rhamnoides) leaf extracts were investigated. The ethyl acetate fraction of H. rhamnoides extracts showed more effective free radical (1,1-diphenyl-2-picrylhydrazyl, DPPH) scavenging activity ($FSC_{50}$ = 4.68 ${\mu}g$/mL). Reactive oxygen species (ROS) scavenging activity ($OSC_{50}$) of the aglycone fraction in the luminol-dependent $Fe^{3+}$-EDTA/$H_2O_2$ system was 0.19 ${\mu}g$/mL. The aglycone fraction exhibited more prominent cellular protective effects (${\tau}_{50}$, 133.3 min at 10 ${\mu}g$/mL) in the $^1O_2$-induced photohemolysis of human erythrocytes. The inhibitory effect ($IC_{50}$) of the aglycone fraction on tyrosinase was 54.86 ${\mu}g$/mL, and more effective than arbutin known as whitening agent. These results indicate that fractions of Hippophae rhamnoides extract can be used as antioxidants in biological system, particulaly skin exposed to UV radiation by quenching and/or scavenging $^1O_2$ and other ROS, and protecting cellular membranes against ROS.
Journal of the Society of Cosmetic Scientists of Korea
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v.33
no.2
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pp.61-67
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2007
In this study, the antioxidative effects of Equisetum arvense extracts were investigated. The free radical (1,1 diphenyl-2-picrylhydrazyl, DPPH) scavenging activity ($FSC_{50}$) of extract/fractions of Equisetum arvense was in the order: 50 % ethanol extract ($182.04{\mu}g/mL$) < ethylacetate fraction ($54.50{\mu}g/mL$) < deglycosylated flavonoid aglycone fraction ($14.13{\mu}g/mL$). Reactive oxygen species (ROS) scavenging activities ($OSC_{50}$) of some Equisetum arvense extracts on ROS generated in $Fe^{3+}-EDTA/H_2O_2$ system were investigated using the luminol- dependent chemiluminescence assay. The order of ROS scavenging activity was deglycosylated flavonoid aglycone fraction ($OSC_{50}$, $3.54{\mu}g/mL$) < 50 % ethanol extract ($0.80{\mu}g/mL$) < ethylacetate fraction ($0.006{\mu}g/mL$). Ethylacetate fraction showed the most prominent scavenging activity. The protective effects of extract/fractions of Equisetum arvense on the rose-bengal sensitized photohemolysis of human erythrocytes were investigated. The ethanol extract (50%) suppressed photohemolysis in a concentration dependent manner, particularly deglycosylated aglycone extract exhibited the most prominent celluar protective effect ($\tau_{50}$, 161.10 min at $10{\mu}g/mL$). These results indicate that extract/fractions of Equisetum arvense can function as antioxidants in biological systems, particularly skin exposed to UV radiation by scavenging $^1O_2$ and other ROS, and protect cellular membranes against ROS.
The prcx.iuction of extracellular 1,4-${\beta}$-glucanase by Cellulomonas sp. CS1-1 on microcrystalline cellulose, sigmacell was maximal after 5-day cultivation as 280 units/mL, which was three times higher than the level produced on carboxymethyl cellulose. A carboxymethyl cellulase containing the carbohydrate of 8.2% was purified from the culture filtrate by successive procedures of column chromatographies. Purification factor was calculated as 22-folds with the specific carboxymethyl cellulase activity of 31.9 units/mg. The molecular weight and isoelectric point of the purified enzyme were 54,000 and pI 5.4, respectively. The optimal pH and temperature were 6.0 and $45^{\circ}C$, and the enzyme was stable between pH 6.5 and 7.5 and below $50^{\circ}C$. The estimated Km and Vmax were 10 mg/mL and $6.25{\mu}mol/min$ for carboxymethyl cellulose and 30.3 mg/mL and $2.85{\mu}mol/min$ for sigmacell, respectively. The enzyme was partially inhibited by $Ag^+$, $Zn^{+{+}}$, $Fe^{+{+}}$ and EDTA, while completely inhibited by $Cd^{+{+}}$ and $Hg^{+{+}}$ at 1 mM concentration.
Antioxidative activities of pine, oak, and lily pollen extracts were evaluated based on 1,1-diphenyl-2-picrylhydrazyl (DPPH) radical-scavenging ability and inhibition of lipid peroxidation in animal tissues. Each pollen was extracted with 50% ethanol, 100% ethanol or water. DPPH radical-scavenging capacity of 50% ethanol extract ($EC_{50}$ 40.0 mg/mL) of pine pollen was higher than those of water (46.8 mg/mL) and 100% ethanol (131.2 mg/mL) extracts of pollen. Fifty percent ethanol (3,2 mg/mL) was also better than 100% ethanol (4.5 mg/mL) and water (8.3 mg/mL) for extraction of oak pollen. For preparation of lily pollen extracts, 100% ethanol was most effective (14.0 mg/mL), followed by water (18.8 mg/mL) and 50% ethanol (24.0 mg/mL). Oak pollen showed higher DPPH radical-scavenging activity than others. Lipid peroxidation in rat brain homogenate induced by ascorbate-Fe3+-EDTA and rat kidney homogenate were inhibited by water extracts of all pollens in dose-dependent manner. Extracts of oak and lily pollen showed higher lipid peroxidation inhibition than pine pollen extract. Polyphenol content was highest in oak pollen extract $(32.5{\pm}0.7\;{\mu}g/mg\;pollen)$, followed by lily extract $(25.9{\pm}1.4\;{\mu}g/mg\;pollen)$ and pine extract $(9.3{\pm}0.7\;{\mu}g/mg\;pollen)$.
Among 27 Bacillus sp. isolated from Meju, a traditional Korean soybean fermented food, a strain MJ-226 was selected due to its strong fibrinolytic activity, and it was identified to be Bacillus subtilis MJ-226 according to morphological and biochemical characterization and sugar utilization. The fibrinolytic enzyme of B. subtilis MJ-226 was maximally produced by cultivating in the Tryptic Soy Broth (TSB) for 24~26 h at $37^{\circ}C$, and the enzymes activity was promoted with adding glucose, fructose, peptone or yeast extract to TSB. The fibrinolytic enzyme was stable at the range of pH from 6.0 to 8.0, and between 35 and $40^{\circ}C$. Also, when the crude enzyme was exposed to various metal ions and chemical inhibitors for 12 h, the enzyme stability was maintained by $MnSO_4$, $CaCl_2$, KCl, and NaCl. However, the stability was destroyed by treatment with $CuSO_4$, $MgSO_4$, $ZnSO_4$, $FeSO_4$, and $BaCl_2$, and the enzyme was unstable in the presence of chemical inhibitors such as iodoacetic acid, leupeptin, phenylmethanesulphonyl fluoride (PMSF), sodium dodecyl sulfate (SDS), thiourea, trans-1,2-diaminocyclohexane-N,N,N',N'-tetraacetic acid (CDTA) and ethylenediaminetetraacetic acid (EDTA).
An exoinulase-producing bacterium was isolated from soil, and identified as Streptomyces sp. The maximum inulase production was achieved when inulin as carbon source and soybean meal as organic nitrogen source were included in the culture. The exoinulase was considered to be a constitutive enzyme produced not only by inulin but also by soluble starch or glucose. The purified enzyme on DEAE-cellulose and Sephadex G-200 column showed the maximal activity at $pH\;5.5{\sim}6.0$ and $50^{\circ}C$, but lost 65% inulase activity at $50^{\circ}C$ after 1 hour incubation. This exoinulase was activated by $Mn^{+2}$, wherease more that 80% inactivation was observed with $Ag^+$, $Hg^{+2}$ and $Fe^{+3}$. The enzyme was possibly a metalloenzyme in that EDTA and 8-hydroxyquinoline inhibited the enzyme. Km values for inulin (16.51 mM) and sucrose (14.62 mM) were in very close range suggesting mostly equal affinity toward the subatrates. However, the maximum velocity for inulin was 10 times greater than for sucrose.
The influence of urushiol, as an allergen on laccase property of Fomitella fraxinea was investigated. The enzyme production was reached to the highest level after 10 days, cultivation and the activity and mycelial biomass were increased by 2.5 and 1.5 folds, respectively, by adding urushiol in the culture medium. In liquid cultures using a Cu Mn-free medium, laccase lactivity was decreased by 3.8-9.2 folds, with similar dry cell weight. Two isoenzymes, were purified using anion exchange, hydrophobic interaction and size-exclusion chromatographies. Both isoenzymes are monomeric proteins, with $M_W$ around 67 kDa(Lac1) and 66 kDa(Lac2), and isoelectric points of 3.67 and 3.81. The optimal conditions for purified isoenzymes were found to be pH 4.5-5.0 and $30-35^{\circ}C$. Activity decreased by the addition of $Fe^{2+}$, $Mg^{2+}$, $Na^+$, and strongly inhibited by EDTA and sodium azide.
Kim, Hyun-Kyoung;Lee, Jae-Chang;Kang, Nam-Hyun;Kim, Song-Hee;Kim, Jong-Guk;Chung, Ki-Chul
Journal of Life Science
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v.17
no.5
s.85
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pp.625-633
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2007
We isolated a new extracellular alginate lyase-producing microorganism, which displayed alginate-depolymerizing activity in plate assays, from coastal soils in Wando, Jeollanam-do, Korea. This alginate-depolymerizing bacterium belonged to the genus Streptomyces and it was named Streptomyces sp. MET 0515. An extracellular alginate lyase(ALY1) secreted by Streptomyces sp. MET 0515, was purified to homogeneity by a combination of acetone precipitation, anion-exchange chromatography (Q-Sepharose and DEAE-Sepharose) and Sephacryl S-200 HR gel filtration chromatography. Its molecular mass was 26 kDa as determined by SDS-PACE analysis. The enzyme had an optimal temperature of $70^{\circ}C$ for its activity, and was most active at pH 7.5. The thermal and pH stability were $0-50^{\circ}C$, and pH 6.0-9.0, respectively. The enzyme activity was stimulated by 1mM $Mn^{2+}$, and inhibited by 1mM $Fe^{3+}$, 1mM EDTA and 1mM $Zn^{2+}$. Preliminary analysis of substrate specificity showed that this alginate lyase had activity on both poly-alpha 1,4-L-guluronate and poly-beta 1,4-D-mannuronate in the alginate molecule.
Polyphenol oxidase from Flammulina velutipes was purified and characterized. Purification of polyphenol oxidase was achieved by ammonium sulfate precipitation, Superdex G-200 gel filtration chromatography, Phenyl superose affinity chromatography, Mono-Q anion exchange chromatography and Superdex S-200 gel filtration chromatography on FPLC. After these purification steps specific activity of purified polyphenol oxidase increased to 199.1 units/mg. Polyphenol oxidase from F. velutipes was composed of a single polypeptide with molecular weight of about 40 kDa. Optimum pH and temperature for the enzyme reaction were found to be 6.0 and $25^{\circ}C$, respectively. The activity of the enzyme gradually decreased at acidic pH between 3 and 5, and the enzyme lost its activity at alkaline pH between 8 and 10. This enzyme exhibited high substrate specificity to o-diphenols. Km-values for L-DOPA and caffeic acid were found to be 3.97 mM and 1.78 mM, respectively. 2-mercaptoethanol, L-ascorbic acid, sodium bisulfite, EDTA and $Mg^{2+}$ inhibited the activity of pholyphenol oxidase and $Cu^{2+}$, $Fe^{2+}$, $Zn^{2+}$ and $Ni^{2+}$ increased enzyme activity. The activity of enzyme was well maintained at $-70^{\circ}C$ for over 4 months, and at $-20^{\circ}C$ for 1 months.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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