Chang, In-Seop;Kim, Do Hee;Kim, Byung Hong;Shin, Pyong Kyun;Yoon, Jung Hoon;Lee, Jung Sook;Park, Yong Ha
Microbiology and Biotechnology Letters
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v.25
no.1
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pp.1-8
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1997
Carbon monoxide (CO)-utilizing acetogens were enriched and KIST612 isolated from anaerobic digester fluid was selected for its abilities to tolerate high CO and acetate concentration. The isolate KIST612 was identified as Eubacterium limosum based on the morphological and biochemical characteristics, G+C content of DNA and 16S rRNA sequence analysis. E. limosum KIST612 produced acetate and butyrate from CO. The optimum temperature and pH for the growth and acids formations were 37$\cdot $C and 7.0, respectively. The growth rate and acids productivity of E. limosum KIST612 were higher than those of any other known acetogens when CO was used as the sole energy and carbon source.
The strain KIST612, initially identified as E. limosum, was a suspected member of E. callanderi due to differences in phenotype, genotype, and average nucleotide identity (ANI). Here, we found that E. limosum ATCC 8486T and KIST612 are genetically different in their central metabolic pathways, such as that of carbon metabolism. Although 16S rDNA sequencing of KIST612 revealed high identity with E. limosum ATCC 8486T (99.2%) and E. callanderi DSM 3662T (99.8%), phylogenetic analysis of housekeeping genes and genome metrics clearly indicated that KIST612 belongs to E. callanderi. The phylogenies showed that KIST612 is closer to E. callanderi DSM 3662T than to E. limosum ATCC 8486T. The ANI between KIST612 and E. callanderi DSM 3662T was 99.8%, which was above the species cut-off of 96%, Meanwhile, the ANI value with E. limosum ATCC 8486T was not significant, showing only 94.6%. The digital DNA-DNA hybridization (dDDH) results also supported the ANI values. The dDDH between KIST612 and E. callanderi DSM 3662T was 98.4%, whereas between KIST612 and E. limosum ATCC 8486T , it was 57.8%, which is lower than the species cut-off of 70%. Based on these findings, we propose the reclassification of E. limosum KIST612 as E. callanderi KIST612.
Chang, In-Seop;Kim, Do-Hee;Kim, Byung-Hong;Shin, Pyong-Kyun;Sung, Ha-Chin;Lovitt, Robert W.
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.8
no.2
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pp.134-140
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1998
Eubacterium limosum KIST612 was cultured on phosphate-buffered basal medium (PBBM) with carbon monoxide (CO) as the sole energy and carbon source. The initial growth rate of this strain was approximately 0.17~0.25 $h^-1$/ and the $K_s$ value for dissolved substrate was 0.14 mM. CO was limiting during the growth of the bacterium when the CO partial pressure was less than 0.6 atm (0.5 mM dissolved CO). The bacterial growth rate was reduced in the presence of acetate. When sufficient CO was supplied using a gas-lift reactor, the acetate concentration went up to 90 mM in 116 h. Based on these findings, it is suggested that a pressurized reactor be used to develop a process to convert CO-rich gases into multi-carbon compounds.
Soymilk was cultured by various human large intestinal bacteria and lactic acid bacteria; Bifidobacterium longum, Lactobacillus acidophilus, Baeteroides fragilis, Eubacterium limosum, Clostridium perfringens and Escherichia coli. Among them, only B. longum utilized raffinose and stachyose actively which are major oligosaccharides present in soymilk by producing active ${\alpha}-galactosidase$ and produced greatest acid. Number of colony forming unit of B. longum reached $1.5{\times}10^{8}$ after 16 hr culture in soymilk. Also Bifidobacterium longum produced the highest level of ${\alpha}-galactosidase,\;{\beta}-galactosidase\;and\;{\alpha}-galactosidase$, in soymilk during culture.
Terminalia chebula Retz., which was showed antimicrobial activity against intestinal pathogens through screening herbs related treatments of intestinal diseases, were extracted by methanol and fractionated by n-hexane, ethylether, ethylacetate,and water. Antimicrobial activities of the methanol extract and each fractionates were then investigated under the anaerobic broth system. The methanol extract showed antimicrobial activity against all intestinal pathogens(Eubacterium limosum ATCC 10825, Escherichia coli ATCC 25922 and Staphylococcus aureus KFCC 11764 hardly grew at 2,000$\mu$g/ml of concentration. Especially, Escherichia coli ATCC 25922 and Staphylococcus aureus KFCC 11764 hardly grew at 2,000$\mu$g/ml of concentration. There is no significant difference of antimicrobial activity among each fractionates. Fraction of Terminaliz chebula Retz. ethylacetate fractionate, which were fractionated by Sephadex G-200 and Silica gel column chromatography revealed the strongest antimicrobial activity at 12 to 21 and 22 to 34 of fraction number, respectively.
The water extract of Sinomeniiacuti Radix (Sinomenium acutum) was found out to have a strong inhibition activity on the growth of Clostridium perfringens. The anti-bacterial activity was stable at the range of pH 1 to pH 13 and kept in a thermal treatment at $121^{\circ}C$ for 15 minutes. The minmal inhibition concentration of the Sinomeniiacuti Radix extract on the growth of Cl. peifringens was 1000 ppm. The Sinomeniiacuti Radix extract also suppressed the growth of Cl. ramosum, Cl. paraputnficum, Cl. butyn'cum, Bifidobacterium blficum, Bacteriodes fragilis, Eubacterium limosum. The extract, however, did not inhibit the growth of Bif adolescentis, Blf. infantis, Bif longum, E. coli. Enterococcus faecalis and Staphylococcus aureus. On the other hand, the extract showed a promoting effect for the growth of Bif animalis and Lactobacillus acidophilus.
Journal of the Korean Society of Food Science and Nutrition
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v.39
no.11
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pp.1587-1594
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2010
This study was designed to investigate the effect of Artemisia capillaris extracts on the intestinal microflora. In agar diffusion method, the solvent fractions of Artemisia capillaris showed growth inhibition against the intestinal microflora. In particular, the chloroform fraction of Artemisia capillaris had strong antibacterial activity against Clostridium perfringens, Clostridium difficile, Eubacterium limosum, and Bacteroides fragilis, but did not show antibacterial activity against Bifidobacterium bifidum and Lactobacillus acidophilus. Most chloroform fraction of Artemisia capillaris inhibitory activities were not reduced by heat treatment or pH variation against C. perfringens, C. difficile, E. limosum, and B. fragilis. MICs of the chloroform fraction were 1.25 mg/mL against C. perfringens, E. limosum and B. fragilis and 2.5 mg/mL against C. difficile. MBCs of chloroform fraction were 5 mg/mL against C. perfringens, E. limosum and 2.5 mg/mL against C. difficile, B. fragilis. The ethyl acetate fraction of Artemisia capillaris showed $3.08{\pm}0.03$ mg/10 mg total polyphenol and $1.91{\pm}0.03$ mg/10 mg total flavonoid contents. In vivo tests were performed to investigate the influence of Artemisia capillaris extract on the intestinal microflora in rats. The results showed the possibilities of utilizing Artemisia capillaris extracts as a functional food component to control intestinal microflora.
Journal of the Korean Society of Food Science and Nutrition
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v.29
no.1
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pp.35-40
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2000
The effect of levanheptaose produced by levanase from Streptomyces sp. 366L on principle intestinal microflora was investigated. The reaction product, levanheptaose, was used as a carbon source for various intestinal microflora. As a results, Bifidobacterium adolescentis, Lactobacillus acidophilus, and Eubacterium limosum grew effectively in the in vitro experiment, whereas Clostridium perfringens, E. coli, and Staphylococcus aureus did not. Therefore levanheptaose seems to promote selectively the growth of B. adolescentis and L. acidophilus. In the in vivo experiment, the effect of levanheptaose on the growth of intestinal microflora, $\beta$-fructosidase activity, pH, and butyrate concentration were examined in rats. Apparently, the number of fecal Bifidobacteria, the amount of butyrate, and $\beta$-fructosidase activity were increased, whereas total aerobes and pH were reduced in rats fed by levanheptaose diets, compared with those of control diets. We concluded that those effects may be beneficial in improving gastrointestinal health.
This study was designed to investigate the effect of cactus (Opuntia ficus-indica var. saboten) extracts on the intestinal bacteria, antioxidative activity and angiotensin -I-converting enzyme(ACE) inhibitory activity. The antimicrobial activities were measured using the 96well-plate method and disc plate method with concentration of 20mg of cactus extract. The stem extract of cactus was inhibitory against Eubacterium limosum, Clostridium perfringens, C. butyricum, C. difficile and Staphylococcus aureus, but was not inhibitory against Bacteroides fragilis, Bifidobacterium bifidum, Lactobacillus acidophilis, Streptococcus thermophilus. The fruit extract of cactus showed no inhibition against Bacteroides fragilis, Bifidobacterium bifidum, Lactobacillus acidophilis, and Streptococcus thermophilis. Their inhibitory activities were not reduced after heat and pH treatment. Antioxidative effects of cactus extracts showed high total polyphenol and flavonoid contents and high activity against free radical DPPH. The stem and fruit extract of cactus showed strong ACE inhibitory activities of 88.8% and 69.2%, respectively. In conclusion cactus (Opuntia ficus-indica var. saboten) extract might be utilized as a functional food material to control intestinal microflora.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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