A new isolate, Bacillus sp. ALK-7 can synthesize ethylene from l-aminocyclopropane-l-carboxylic acid (ACC) as well as from methionine. The ACC has only been recognized as a key intermediate found in the metabolic pathway leading to ethylene formation in various plants. The efficiency of ethylene formation from the ACC by Bacillus sp. ALK-7 was about 2 times as high as that from the methionine. The reaction from ACC to ethylene formation was also shown to be mediated by the cell-free extracts of Bacillus sp. ALK-7.
The role of S-adenosylmethionine (SAM) as an intermediate in interrelation between polyamine and ethylene biosynthesis was studied in suspension cultures of Nicotiana tabacum L. Exogenous SAM stimulated the polyamine and ethylene biosynthesis in 4 day-cultured cells, which were in active cell divisions, and 10 day cultured cells, which went on with active cell elongation and senescence. SAM-induced ethylene production was more effective in 10 day-cultured cells than in 4 day-cultured cells, but SAM-induced polyamine biosynthesis was more effective in 4 day-cultured cells than in 10 day-cultured cells. Polyamine contents were increased by the blockage of ethylene biosynthetic pathway in the conversion of SAM to ethylene via 1-aminocyclopropane-1-carboxylinc acid (ACC) with aminooxyacetic acid (AOA). Also, ethylene production was increased by the inhibitors of polyamine biosynthesis such as methylglyoxal bis-(guanylhydrazone) (MGBG), dicyclohexylamine (DCHA), $\alpha$-difluoromethylarginine (DFMA) and $\alpha$-difluoromethylorinithine (DFMO). These results suggest that there may be interrelations between polyamine and ethylene biosynthesis for the competition of SAM and the inherent mechanism of switch on-off in polyamine and ethylene biosynthetic activity with the progress of cell growth and senescence.
The physiological effects of oligogalacturonic acid (OGA:D. P. 6-7), a product of acid hydrolysis of polygalacturonic acid (PGA), on ethylene biosynthesis in mung bean (Vigna radiata W.) hypocotyl segments was studied. Among PGA, OGA and monogalacturomic acid (MGA), only OGA stimulated ethylene production in mung bean hypocotyl segments, and the most effective concentraton of OGA was 50$\mu\textrm{g}$/mL. Time course data indicated that this stimulatiion effect of OGA appeared after 90 min incubation period and continued until 24 h. When indol-3-acetic acid (IAA) and 1-aminocyclopropane-1-carboxylic acid (ACC) were treated with OGA to investigate the mechanism of OGA on ethylene production, they did not show synergistic effects on ethylene production. The stimulation of ethylene production by OGA was due to the increase of in vivo ACC synthase activity, but OGA treatment had no effect of in vivo ACC oxidase activity. The effect of aminoethoxy vinyl glycine (AVG) and Co2+, the inhibitor of ethylene synthesis, was siminished a little by the OGA, but the treatment of Ca2+, known to increase ACC, with OGA did not increase the ethylene production, this effect seems to be specific for Ca2+ because other divalent cation, Mg2+, did not show the inhibition of OGA-indyuced ethylene production. It is possible that the OGA adopts a different signal transduction pathway to the ethylene bioxynthesis.
The substitution reaction of Fe$(CO)_5$ by ethylene has been studied for plausible intermediates by means of extended Huckel calculations. Among various reaction mechanisms the favorable reaction pathway is via a dissociative mechanism in which ethylene approaches to Fe$(CO)_4$ unit. For Fe$(CO)_4$ fragment, the square planar conformation is found to be the most stable form by the extended Huckel calculations. Our calculations show that ethylene attacks square planar intermediate formed by removing one carbonyl from Fe$(CO)_5$ and then the unstable species thus formed is distored to the most stable trigonal bipyramid with the ethylene lying in the equatorial plane.
The gaseous hormone ethylene influences many aspects of plant growth, development, and responses to a variety of stresses. The biosynthesis of ethylene is tightly regulated by various internal and external stimuli, and the primary target of the regulation is the enzyme 1-aminocyclopropane-1-carboxylic acid (ACC) synthase (ACS), which catalyzes the rate-limiting step of ethylene biosynthesis. We have previously demonstrated that the regulation of ethylene biosynthesis is a common feature of most of the phytohormones in etiolated Arabidopsis seedlings via the modulation of the protein stability of ACS. Here, we show that various phytohormones also regulate ethylene biosynthesis from etiolated rice seedlings in a similar manner to those in Arabidopsis. Cytokinin, brassinosteroids, and gibberellic acid increase ethylene biosynthesis without changing the transcript levels of neither OsACS nor ACC oxidases (OsACO), a family of enzymes catalyzing the final step of the ethylene biosynthetic pathway. Likewise, salicylic acid and abscisic acid do not alter the gene expression of OsACS, but both hormones downregulate the transcript levels of a subset of ACO genes, resulting in a decrease in ethylene biosynthesis. In addition, we show that the treatment of the phytohormones results in distinct etiolated seedling phenotypes, some of which resemble ethylene-responsive phenotypes, while others display ethylene-independent morphologies, indicating a complicated hormone crosstalk in rice. Together, our study brings a new insight into crosstalk between ethylene biosynthesis and other phytohormones, and provides evidence that rice ethylene biosynthesis could be regulated by the post-transcriptional regulation of ACS proteins.
The rate of evolution of ethylent by tomato plants was rapidly increased by ozone fumigation. In the present study, the mechanism of ethylent evolution by ozone was investigated in experiments with aminoethoxyvinylglycine (AVG) and tiron, which inhibit the formation of ethylene and peroxidation of lipids, respectively. Pretreatment with AVG significantly inhibited the ozone-induced ethylent evolution, but the treatment of plants with tiron did not inhibit. These results indicate that the induction of the evolution of ethylene by ozone involves the pathway via aminocyclopropane-1-carboxylate (ACC), while not released as a result of the peroxidation of lipids. Ozone-induced ethylent evolution was greater in dar- than light-incubated, intact tomato plants. The difference between dark- and light-ethylene evolution was examined with diuron, an inhibitor of photosynthetic electron transport. The inhibitor treatment promoted ethylent evolution. These results suggest that ethylent retention and metabolism in plants were regulated by internal $CO_2$ levels which, in turn, were controlled in large part by photosynthesis. Thus, ethylene was retained in illuminated leaf tissue under low intenal $CO_2$ concentration which may develop in a sealed container without exogenously supplied $CO_2$.
Kim, Se Hee;Han, Sang Eun;Lee, Hye Eun;Cho, Mi-Ae;Shin, Il Sheob;Kim, Jeong-Hee;Cho, Kang-Hee;Kim, Dae-Hyun;Hwang, Jeong Hwan
한국육종학회지
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제42권5호
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pp.481-487
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2010
The ripening behavior of three apple cultivars, 'Tsugaru', 'Hongro' and 'Fuji' was distinctive and the involvement of POLYGALACTURONASE(PG) in the fruit softening process was confirmed to be ethylene dependent. Fruit softening is genetically coordinated by the action of several cell wall enzymes, including PG which depolymerizes cell wall pectin. Also, loss of firmness is associated with increasing of the ripening hormone, ethylene. In this work, climacteric ripening of three apple cultivars, Tsugaru, Hongro and Fuji, producing different ethylene levels and ripening responses, was examined. Correspondingly in Fuji, a linear and basal ethylene level was observed over the entire period of measurements, and Tsugaru and Hongro displayed a typical climacteric rise in ethylene production. Transcript accumulation of genes involved in ethylene biosynthesis (MdACS3 and MdACO1) and MdPG1 was studied in Tsugaru, Hongro and Fuji cultivars. Expression of MdACO1 transcripts was shown in all three ripened apple fruits. However, the MdACS3 and MdPG1 were transcribed differently in these cultivars. Comparing the MdPG1 of 'Tsugaru', 'Hongro' and 'Fuji', structural difference was discovered by genomic Southern analysis. Overall results pointed out that MdACS3 and MdPG1 play an important role in regulation of fruit ripening in apple cultivar.
Kim, Gyuree;Jang, Sejeong;Yoon, Eun Kyung;Lee, Shin Ae;Dhar, Souvik;Kim, Jinkwon;Lee, Myeong Min;Lim, Jun
Molecules and Cells
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제41권12호
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pp.1033-1044
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2018
As sessile organisms, plants have evolved to adjust their growth and development to environmental changes. It has been well documented that the crosstalk between different plant hormones plays important roles in the coordination of growth and development of the plant. Here, we describe a novel recessive mutant, mildly insensitive to ethylene (mine), which displayed insensitivity to the ethylene precursor, ACC (1-aminocyclopropane-1-carboxylic acid), in the root under the dark-grown conditions. By contrast, mine roots exhibited a normal growth response to exogenous IAA (indole-3-acetic acid). Thus, it appears that the growth responses of mine to ACC and IAA resemble those of weak ethylene insensitive (wei) mutants. To understand the molecular events underlying the crosstalk between ethylene and auxin in the root, we identified the MINE locus and found that the MINE gene encodes the pyridoxine 5′-phosphate (PNP)/pyridoxamine 5′-phosphate (PMP) oxidase, PDX3. Our results revealed that MINE/PDX3 likely plays a role in the conversion of the auxin precursor tryptophan to indole-3-pyruvic acid in the auxin biosynthesis pathway, in which TAA1 (TRYPTOPHAN AMINOTRANSFERASE OF ARABIDOPSIS 1) and its related genes (TRYPTOPHAN AMINOTRANSFERASE RELATED 1 and 2; TAR1 and TAR2) are involved. Considering that TAA1 and TARs belong to a subgroup of PLP (pyridoxal-5′-phosphate)-dependent enzymes, we propose that PLP produced by MINE/PDX3 acts as a cofactor in TAA1/TAR-dependent auxin biosynthesis induced by ethylene, which in turn influences the crosstalk between ethylene and auxin in the Arabidopsis root.
The Arabidopsis gene AtLEC (At3g15356) gene encodes a putative 30-kDa protein with a legume lectin-like domain. Likely to classic legume lectin family of genes, AtLEC is expressed in rosette leaves, primary inflorescences, and roots, as observed in Northern blot analysis. The accumulation of AtLEC transcript is induced very rapidly, within 30 min, by chitin, a fungal wall-derived oligosaccharide elictor of the plant defense response. Transgenic Arabidopsis carrying an AtLEC promoter-driven ${\beta}$-glucuronidase (GUS) construct exhibited GUS activity in the leaf veins, secondary inflorescences, carpel heads, and silique receptacles, in which no expression could be seen in Northern blot analysis. This observation suggests that AtLEC expression is induced transiently and locally during developmental processes in the absence of an external signal such as chitin. In addition, mechanically wounded sites showed strong GUS activity, indicating that the AtLEC promoter responds to jasmonate. Indeed, methyl jasmonate and ethylene exposure induced AtLEC expression within 3-6 h. Thus, the gene appears to play a role in the jasmonate-/ethylene-responsive, in addition to the chitin-elicited, defense responses. However, chitin-induced AtLEC expression was also observed in jasmonate-insensitive (coi1) and ethylene-insensitive (etr1-1) Arabidopsis mutants. Thus, it appears that chitin promotes AtLEC expression via a jasmonate- and/or ethylene-independent pathway.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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