Concept and establishment of essential amino acids in animals and human beings rendered immeasurable contributions to animal production and human health. In ruminant animals, however, essential amino acids have never been completely established. The present review proposes a hypothesis that histidine may not be an essential amino acid for normal growing cattle (Japanese black) at least at the growing stage after about 450 kg of body weight on the basis of the experimental results of histidinol dehydrogenase activities in some tissues of the cattle together with hints from which the hypothesis was derived. At the same time, histidinol dehydrogenase activities in liver, kidney and muscle of swine, mouse, fowl and wild duck will be shown and the essentiality of histidine in these animals will be discussed. Finally, the essentiality of histidine for adult human will briefly be discussed.
Kim, Soo-Ja;Ko, Moon-Kyu;Chai, Kyu-Yun;Cho, Seong-Wan;Lee, Woo-Yiel
Bulletin of the Korean Chemical Society
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v.28
no.2
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pp.271-275
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2007
γ -Glutamyl transpeptidase (EC 2.3.2.2) plays a key role in glutathione metabolism by catalyzing the transfer of the γ -glutamyl residue and hydrolysis of glutathione. The functional residues at the active site of the rat kidney γ -glutamyl transpeptidase were investigated by kinetic studies at various pH, the treatment of diethylpyrocarbonate (DEPC), and photooxidation in presence of methylene blue. An ionizable group affecting the enzymatic activity with an apparent pKa value of 7.1, which is in the range of pKa values for a histidine residue in protein, was obtained by examining the pH-dependence of kinetic parameters. The pH effect on the photoinduced inactivation rate of the enzyme corresponds to that expected for the photooxidation of the free histidine. The involvement of a histidine in the catalytic site of the enzyme was further supported by DEPC modification accompanied by an increase in absorbance at 240 nm, indicating the formation of Ncarbethoxyhistidine. The histidine located at the position of 382 in the precursor of the enzyme is primarily suspected based on the amino acid sequence alignment of the transpeptidases from various organisms.
The isoform 1 of cyclodextrin glycosyltransferase (CGTase, EC 2.4.1.19) from Paenibacillus sp. A11 was purified by a preparative gel electrophoresis. The importance of histidine, tryptophan, tyrosine, and carboxylic amino acids for isoform 1 activity is suggested by the modification of the isoform 1 with various group-specific reagents. Activity loss, when incubated with diethylpyrocarbonate (DEP), a histidine modifying reagent, could be protected by adding 25 mM methyl-$\beta$-cyclodextrin substrate prior to the modification. Inactivation kinetics of isoform 1 with DEP resulted in second-order rate constants ($k_{inactivation}$) of $29.5\;M^{-1}s^{-1}$. The specificity of the DEP-modified reaction for the histidine residue was shown by the correlation between the loss of isoform activity and the increase in the absorbance at 246 nm of N-carbethoxyhistidine. The number of histidines that were modified by DEP in the absence and presence of a protective substrate was estimated from the increase in the absorbance using a specific extinction coefficient of N-carbethoxyhistidine of $3,200\;M^{-1}cm^{-1}$. It was discovered that methyl-$\beta$-CD protected per mole of isoform 1, two histidine residues from the modification by DEP. To localize essential histidines, the native, the DEP-modified, and the protected forms of isoform 1 were digested by trypsin. The resulting peptides were separated by HPLC. The peptides of interest were those with $R_t$ 11.34 and 40.93 min. The molecular masses of the two peptides were 5,732 and 2,540 daltons, respectively. When the data from the peptide analysis were checked with the sequence of CGTase, then His-140 and His-327 were identified as essential histidines in the active site of isoform 1.
The activation of heat shock factor 1 (HSF1) can be induced by the changes in environmental pH, but the mechanism of HSF1 activation by acidification is not completely understood. This paper reports that a low pH (pH~6.0) can trigger human HSF1 activation. Considering the involvement of the imidazole group of histidine residues under acid pH stress, an in vitro EMSA experiment, Trp-fluorescence spectroscopy, and protein structural analysis showed that the residue, His83, is the essential for pH-dependent human HSF1-activation. To determine the roles of His83 in the HSF1-mediated stress response affecting the cellular acid resistance, mouse embryo fibroblasts with normal wild-type or mutant mouse HSF1 expression were preconditioned by heating or pH stress. The results suggest that His83 is essential for HSF1 activation or the HSF1-mediated transcription of heat shock proteins, in protecting cells from acid pH stress.
Neurofilament-L (NF-L) is a major element of the neuronal cytoskeleton and is essential for neuronal survival. Moreover, abnormalities in NF-L result in neurodegenerative disorders. Carnosine and the related endogeneous histidine dipeptides prevent protein modifications such as oxidation and glycation. In the present study, we investigated whether histidine dipeptides, carnosine, homocarnosine, or anserine protect NF-L against oxidative modification during reaction between cytochrome c and $H_2O_2$. Carnosine, homocarnosine and anserine all prevented cytochrome c/$H_2O_2$-mediated NF-L aggregation. In addition, these compounds also effectively inhibited the formation of dityrosine, and this inhibition was found to be associated with the reduced formations of oxidatively modified proteins. Our results suggest that carnosine and histidine dipeptides have antioxidant effects on brain proteins under pathophysiological conditions leading to degenerative damage, such as, those caused by neurodegenerative disorders.
Seo, Back-Won;Kim, Hee-Kyoung;Lee, Yin-Won;Yun, Sung-Hwan
The Plant Pathology Journal
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v.23
no.2
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pp.51-56
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2007
A plant pathogenic fungus, Gibberella zeae (anamorph: Fusarium graminearum), not only generates economic losses by causing disease on cereal grains, but also leads to severe toxicosis in human and animals through the production of mycotoxins in infected plants. Here, we characterized a histidine auxotrophic mutant of G. zeae, designated Z43R1092, which was generated using a restriction enzyme-mediated integration (REMI) procedure. The mutant exhibited pleiotropic phenotypic changes, including a reduction in mycelial growth and virulence and loss of sexual reproduction. Outcrossing analysis confirmed that the histidine auxotrophy is linked to the insertional vector in Z43R1092. Molecular analysis showed that the histidine requirement of Z43R1092 is caused by a disruption of an open reading frame, designated GzHIS7. The deduced product of GzHIS7 encodes a putative enzyme with an N-terminal glutamine amidotransferase and a C-terminal cyclase domain, similar to the Saccharomyces cerevisiae HIS7 required for histidine biosynthesis. The subsequent gene deletion and complementation analyses confirmed the functions of GzHIS7 in G. zeae. This is the first report of the molecular characterization of histidine auxotrophy in G. zeae, and our results demonstrate that correct histidine biosynthesis is essential for virulence, as well as sexual development, in G. zeae. In addition, our results could provide a G. zeae histidine auxotroph as a recipient strain for genetic transformation using this new selectable marker.
The rapid increase in the prevalence of metabolic syndrome, which is associated with a state of elevated systemic oxidative stress and inflammation, is expected to cause future increases in the prevalence of diabetes and cardiovascular diseases. Oxidation of polyunsaturated fatty acids and sugars produces reactive carbonyl species, which, due to their electrophilic nature, react with the nucleophilic sites of certain amino acids. This leads to formation of protein adducts such as advanced glycoxidation/lipoxidation end products (AGEs/ALEs), resulting in cellular dysfunction. Therefore, an effective reactive carbonyl species and AGEs/ALEs sequestering agent may be able to prevent such cellular dysfunction. There is accumulating evidence that histidine containing dipeptides such as carnosine (${\beta}$-alanyl-L-histidine) and anserine (${\beta}$-alanyl-methyl-L-histidine) detoxify cytotoxic reactive carbonyls by forming unreactive adducts and are able to reverse glycated protein. In this review, 1) reaction mechanism of oxidative stress and certain chronic diseases, 2) interrelation between oxidative stress and inflammation, 3) effective reactive carbonyl species and AGEs/ALEs sequestering actions of histidine-dipeptides and their metabolism, 4) effects of carnosinase encoding gene on the effectiveness of histidine-dipeptides, and 5) protective effects of histidine-dipeptides against progression of metabolic syndrome are discussed. Overall, this review highlights the potential beneficial effects of histidine-dipeptides against metabolic syndrome. Randomized controlled human studies may provide essential information regarding whether histidine-dipeptides attenuate metabolic syndrome in humans.
Zinc plays a key role in genetic expression, cell division, and cell growth and is essential for the functions of more than 450 metalloenzyme. There are high concentrations of zinc in pigment epithelium in bullfrog eye. Zinc deficiency causes night blindness and abnormal dark adaptation. The purpose of this study was to identify ERG (electroretinogram) b-wave sensitivity during light and dark adaptation in bullfrog retina after zinc and zinc chelators treatment such as histidine and TSQ (N-(6-methoxy-8-qunolyl)-p-toluenesulfon amide). Especially, we focused whether histidine act as a zinc chelator in the Muller cell. The results of our study are summarized as follows: 1) Both zinc and histidine elevated ERG b-wave amplitude and threshold in Muller cells by accelerating rhodopsin regeneration time and increased a-peak absorbance during light adaptation. 2) TSQ reduced those by prolonging rhodopsin regeneration time and decrement of a-peak absorbance during light adaptation. 3) Zinc shortened rhodopsin regeneration time and prolonged a-peak absorbance. These results suggested that histidine may act as a zinc-mediated transporter in presynaptic Muller cell membrane rather than zinc chelator and acts as a GABA-receptor inhibitor which blocks $Cl^-$ influx to the postsynapse.
An aspartase purified from Hafnia alvei was inactivated by diethylpyrocarbonate (DEP) in a pseudo-first-order inactivation. The first-order plot was biphasic. The inactivation process was not saturable and the second order rate constant was $1.3\;M^{-1}s^{-1}$. The inactivated aspartase was reactivated with NH₂OH. The difference absorption spectrum of DEP-inactivated vs native enzyme preparations revealed a marked peak around 242 nm. The pH dependence of the inactivation rate suggests that an amino acid residue having a pK value of 7.2 was involved in the inactivation. L-aspartate, fumarate (substrates), and chloride ion (inhibitor) protected the enzyme against inactivation, indicating that histidine residues for the enzyme activity are located at the active site of this aspartase. Inspection of the presence and absence of $Cl^-$ ion demonstrated that the number of essential histidine residues is less than two. Thus, one or two histidines are in or near the aspartate binding site and participate in an essential step of the catalytic reaction.
The enzyme Fuc aldolase from Methanococcus jannaschii that catalyzes the aldol condensation of DHAP and L-lactaldehyde to give fuculose-1-phosphate was inactivated by DEP. The inactivation was pseudo first-order in the enzyme and DEP, which was biphasic. A pseudo second-order rate constant of 120$M^{-1}min^{-1}$ was obtained at pH 6.0 and $25{\circ}C$. Quantifying the increase in absorbance at 240nm showed that four histidine residues per subunit were modified during the nearly complete inactivation. The statistical analysis and the time course of the modification suggested that two or three histidine residues were essential for activity. The rate of inactivation was dependent on the pH, and the pH inactivation data implied the involvement of the amino acid residue with a $pK_a$ value of 5.7. Fuc aldolase was protected against DEP inactivation by DHAP, indicating that the histidine residues were located at the active site of Fuc aldolase. DL-Glyceraldehyde, as an alternative substrate to L-lactaldehyde, showed no specific protection for the Fuc aldolase.
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