The experiment was conducted to evaluate the effects of pathogenic Escherichia coli on diarrhea, growth performance, and blood profile of weaned pigs. A total of 48 pigs were used and housed in individual pens of disease containment chambers for 16 d (4 d before and 12 d after the first challenge [d0]). The treatments were with or without the pathogenic E. coli challenge (F-18 E. coli strain; heat-labile, heat-stable, and Shiga-like toxins). Pigs were orally inoculated with a dose of $10^{10}cfu$ E. coli per 3 mL PBS daily for 3 days. The common nursery diet and water were available at all times. The ADG, ADFI, G:F, diarrhea score, ratio of fecal ${\beta}$-hemolytic coliforms from total coliforms (RHT), and blood profile were measured. The pathogenic E. coli reduced (P < 0.05) ADG from d0 to 6 (117 vs. 297 g/d) and from d0 to 12 (377 vs. 238 g/d) compared with the control. Meanwhile, the pathogenic E. coli increased (P < 0.05) diarrhea score (average 3.4 vs. 1.4) and RHT (average 82 vs. 11%) on d3, 6, and 9 and the number of white blood cells (17.59 vs. $13.48{\times}10^3/{\mu}L$) on d6 compared with the control. No differences were found on ADFI and others in the blood profile (total protein and hematocrit). In conclusion, pathogenic E. coli used in this experiment successfully caused mild diarrhea, increased number of white blood cells, and adversely affected growth rate of weaned pigs.
Biosynthesis of indole-3-acetic acid (IAA) via the indole-3-pyruvic acid pathway involves three kinds of enzymes; aminotransferase encoded by aspC, indole-3-pyruvic acid decarboxylase encoded by ipdC, and indole-3-acetic acid dehydrogenase encoded by iad1. The ipdC from Enterobacter cloacae ATCC 13047, aspC from Escherichia coli, and iad1 from Ustilago maydis were cloned and expressed under the control of the tac and sod promoters in E. coli. According to SDS-PAGE and enzyme activity, IpdC and Iad1 showed good expression under the control of $P_{tac}$, whereas AspC was efficiently expressed by $P_{sod}$ originating from Corynebacterium glutamicum. The activities of IpdC, AspC, and Iad1 from the crude extracts of recombinant E. coli Top 10 were 215.6, 5.7, and 272.1 nmol/min/mg-protein, respectively. The recombinant E. coli $DH5{\alpha}$ expressing IpdC, AspC, and Iad1 produced about 1.1 g/l of IAA and 0.13 g/l of tryptophol (TOL) after 48 h of cultivation in LB medium with 2 g/l tryptophan. To improve IAA production, a tnaA gene mediating indole formation from tryptophan was deleted. As a result, E. coli IAA68 with expression of the three genes produced 1.8 g/l of IAA, which is a 1.6-fold increase compared with wild-type $DH5{\alpha}$ harboring the same plasmids. Moreover, the complete conversion of tryptophan to IAA was achieved by E. coli IAA68. Finally, E. coli IAA68 produced 3.0 g/l of IAA after 24 h cultivation in LB medium supplemented with 4 g/l of tryptophan.
We investigated the transgalactosylation reaction of chlorphenesin (CPN) using ${\beta}$-galactosidase (${\beta}$-gal)-containing Escherichia coli (E. coli) cells, in which galactose from lactose was transferred to CPN. The optimal CPN concentration for CPN galactoside (CPN-G) synthesis was observed at 40 mM under the conditions that lactose and ${\beta}$-gal (as E. coli cells) were 400 g/l and 4.8 U/ml, respectively, and the pH and temperature were 7.0 and $40^{\circ}C$, respectively. The time-course profile of CPN-G synthesis under these optimal conditions showed that CPN-G synthesis from 40 mM CPN reached a maximum of about 27 mM at 12 h. This value corresponded to an about 67% conversion of CPN to CPN-G, which was 4.47-5.36-fold higher than values in previous reports. In addition, we demonstrated by thin-layer chromatography to detect the sugar moiety that galactose was mainly transferred from lactose to CPN. Liquid chromatography-mass spectrometry revealed that CPN-G and CPN-GG (CPN galactoside, which accepted two galactose molecules) were definitively identified as the synthesized products using ${\beta}$-gal-containing E. coli cells. In particular, because we did not use purified ${\beta}$-gal, our ${\beta}$-gal-containing E. coli cells might be practical and cost-effective for enzymatically synthesizing CPN-G. It is expected that the use of ${\beta}$-gal-containing E. coli will be extended to galactose derivatization of other drugs to improve their functionality.
The generation of secretory IgA antibodies (Abs) for specific immune protection of mucosal surfaces depends on stimulation of the mucosal immune system, but this is not effectively achieved by parenteral or even oral administration of most soluble antigens. Thus, to produce a possible vaccine antigen against urinary tract infections, the uropathogenic E. coli (UPEC) adhesin was genetically coupled to the heat-labile Escherichia coli enterotoxin A2B (ltxa2b) gene and cloned into a pMAL-p2E expression vector. The chimeric construction of pMALfimH/ltxa2b was then transformed into E. coli K-12 TB1 and its nucleotide sequence was verified. The chimeric protein was then purified by applying the affinity chromatography. The purified chimeric protein was confirmed by SDS-PAGE and westem blotting using antibodies to the maltose binding protein (MBP) or the heat labile E. coli subunit B (LTXB), plus the N-terminal amino acid sequence was analyzedd. The orderly-assembled chimeric protein was confirmed by a modified $G_{M1}$-ganglioside ELISA using antibodies to adhesin. The results indicate that the purified chimeric protein was an Adhesin/LTXA2B protein containing UPEC adhesin and the $G_{M1}$-ganglioside binding activity of LTXB. thisstudy also demonstrate that peroral administration of this chimeric immunogen in mice elicited high level of secretory IgA (sIgA) and serum IgG Abs to the UPEC adhesin. The results suggest that the genetically linked LTXA2B acts as a useful mucosal adjuvant, and that adhesin/LTXA2A chimeric protein might be a potential antigen for oral immunization against UPEC.
Adherence to HEp-2 cells has been proposed as a virulence characteristic of enteropathogenic E. coli (EPEC). The role of the HEp-2 adherent E. coli was evaluated in a group of children with endemic diarrhea admitted to Hanyang University Hospital in Seoul, Korea. HEp-2-adherent E. coli was detected in fecal samples of 59 (59%) of 100 cases and ten (22.7%) of 44 concurrent control children (p<0.0005). Adherence was exhibited by 15 serogroups and subgroups, but within these groups more than one adherence pattern was frequently observed. Of 17 strains belonging to traditional infantile EPEC serogroups, 12(70.6%) gave a positive adherence. Of 45 enterotoxin producing strains, 24 (53.3%) gave a positive adherence. HEp-2-adherent strains that did not belong to classic EPEC serogroups and did not produce heat-stable and/or heat-labile enterotoxins(referred as enteroadherent E. coli, EAEC) was found in 29 (29%) of the patients with diarrhea and in six (13.6%) of the well children (p<0.05). From 22 of the 29 cases, no pathogen other than EAEC was isolated. These findings strongly implicate EAEC as the cause of diarrhea in the children. Our study supports the concept that EAEC may be an important cause of endemic diarrhea in Korean children.
For the development of new cephalosporin antibiotics with aminothiazolcarboxymethylethoxyimino moiety on the C-7 position and tetrazolymethyl moiety on the C-3 position of cephe m ring, 7${\beta}$-[(Z)-2-(2-aminothiazol-4-yl)-2-(1-carboxy-1-methylethoxyimino)acetamido]-3-[5-(substituted)tetrazol-2-yl]methyl-3-cephem-4-carboxylic acids(28-35) were synthesized. These compounds were tested for antimicrobial activity in vitro against Gram(+) and Gram(-) bacteria. They showed remarkable antibacterial activity against Escherichia coli AB 1157, Escherichia coli AB 0111, Escherichia coli BE 1186, Micrococcus luteus ATCC 9341, Salmonella typhimurium TV 119, Salmonella typhimurium SL 1102, Staphylococcus aureus IFO 12732, Staphylococcus aureus R-209, but these compounds were not active against Pseudomonas aeruginosa N-10.
Porcine E coli infection is a disease caused by Enterotoxin produced by Enterotoxigenic Escherichia coli(ETEC). Enteric colibacillosis has become an economically important disease in pigs as a result of increasing intensification of farrowing management. The present study undertaken to obtain the antibiotic sensitivity and distribution of serogroups and pili producibility test of ETEC from E. coli isolates in Chonnam. The results obtained were as follows. 1. A total of 71 isolates identified as E, coli employing IMViC system from rectal specimens of 54 piglets with diarrhea. 2. In antibiotic sensitivity test, isolates showed high sensitivity to AN, CM, Fox, GM, but resistance to EM, NA TC. 3. The distribution of 25 Isolates of serogroups were 0141:K85(11.3%), 08:K87(8.5%), 064:K (5.6%), 0138:K8l (4.2%), 0139 :K82(2.8%), 0157:K88ac(1.4%) and 0149:K9l (1.4%). 4. MRHA of guinea pig erythrocytes was detected in 8 out of 25OK serotypes and 9 out of 46 unidentified serotypes. MRHA titers of serotypes showed from 64 to 128 in 0141: K85, 2 in 0138:K8l and no titers in 0139:K82. 5. The production of heat labile enterotoxin of ETEC was detect 39 out of 52 isolates showed $\beta$-hemolysin, 7 out of 52 isolates showed ${\gamma}$-hemolysin and 6 out of 52 isolates showed ${\gamma}$-hemolysin by $GM_1$ganglioside ELISA. The distribution of LT toxin were in 12 isolate showed $\beta$-hemolysin, 2 isolates showed ${\alpha}$-hemolysin and 3 isolates showed ${\gamma}$-hemolysin in 25 OK serotypes.
Antimicrobial susceptibility of 157 Gram-negative bacilli (90 Escherichia coli. 30 Enterobacter aerogenes, 18 Klebsiella pneumoniae, 12 Proteus spp., 3 Pseudomonas aeruginosa and 4 Alcaligenes faecalis) isolated from infected bovine udders was determined by the plate dilution method. Gentamicin and oxolinic acid at a concentration of $12.5{\mu}g/ml$ were very active to all of 157 Gram-negative bacilli tested, and 98% of these strains were susceptible to nalidixic acid at a concentration of $25{\mu}g/ml$. Most of the 90 Escherichia coli strains were inhibited by chloramphenicol, ampicillin and carbenicillin and carbenicillin at a concentration of $12.5{\mu}g/ml$. None of the Klebsiella pneumoniae strains were inhibited at a concentration of $50{\mu}g/ml$ of ampicillin and carbenillin, whereas all the species of Proteus resisted a concentration of $50{\mu}g/ml$ or higher tetracycline. All the 3 strains of Pseudomonas aeruginosa were highly resistant to streptomycin, kanamycin, Ampicillin, chloramphenicol, tetracycline and nalidixic acid.
This report describes a high-level expression of human alpha-2a interferon ($IFN{\alpha}-2a$) in Escherichia coli and its pilot scale purification by using a monoclonal antibody-independent chromatographic procedure that is based on anion-exchange, cation-exchange, hydrophobic interaction, and gel filtration. The recombinant E. coli produced much more $IFN{\alpha}-2a$ in a soluble form, when cultivated at low temperatures than at high-temperature fermentation. However, if the bacterial growth was taken into consideration, fermentation at $30^{\circ}C$ seemed optimal for the interferon production. By using our new protocol, we recovered approximately 160 mg of $IFN{\alpha}-2a$ with a specific activity of $3.59{\times}10^8$ IU/mg from 201 of the broth. The gel permeation chromatographic and SDS-PAGE indicated that the interferon preparation was purified to homogeneity and was of the correctly folded fast-migrating monomer.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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