Members of the genus Aspergillus are the most common fungi and all reproduce asexually by forming long chains of conidiospores (or conidia). The impact of various Aspergillus species on humans ranges from beneficial to harmful. For example, several species including Aspergillus oryzae and Aspergillus niger are used in industry for enzyme production and food processing. In contrast, Aspergillus flavus produce the most potent naturally present carcinogen aflatoxins, which contaminate various plant- and animal-based foods. Importantly, the opportunistic human pathogen Aspergillus fumigatus has become the most prevalent airborne fungal pathogen in developed countries, causing invasive aspergillosis in immunocompromised patients with a high mortality rate. A. fumigatus produces a massive number of small hydrophobic conidia as the primarymeans of dispersal, survival, genome-protection, and infecting hosts. Large-scale genome-wide expression studies can now be conducted due to completion of A. fumigatus genome sequencing. However, genomics becomes more powerful and informative when combined with genetics. We have been investigating the mechanisms underlying the regulation of asexual development (conidiation) and gliotoxin biosynthesis in A. fumigatus, primarily focusing on a characterization of key developmental regulators identified in the model fungus Aspergillus nidulans. In this review, I will summarize our current understanding of how conidiation in two aspergilli is regulated.
Liver plays a major role in maintaining glucose homeostasis in mammals. Under fasting conditions, hepatic glucose production is critical as a source of fuel to maintain the basic functions in other tissues, including skeletal muscle, red blood cells, and the brain. Fasting hormones glucagon and cortisol play major roles during the process, in part by activating the transcription of key enzyme genes in the gluconeogenesis such as phosphoenol pyruvate carboxykinase (PEPCK) and glucose 6 phosphatase catalytic subunit (G6Pase). Conversely, gluconeogenic transcription is repressed by pancreatic insulin under feeding conditions, which effectively inhibits transcriptional activator complexes by either promoting post-translational modifications or activating transcriptional inhibitors in the liver, resulting in the reduction of hepatic glucose output. The transcriptional regulatory machineries have been highlighted as targets for type 2 diabetes drugs to control glycemia, so understanding of the complex regulatory mechanisms for transcription circuits for hepatic gluconeogenesis is critical in the potential development of therapeutic tools for the treatment of this disease. In this review, the current understanding regarding the roles of two key transcriptional activators, CREB and FoxO1, in the regulation of hepatic gluconeogenic program is discussed.
Many secreted proteins have disulfide bonds that are important for their structure and function. Protein disulfide isomerase (PDI, EC 5.3.1.4.), an enzyme that catalyzes the formation and rearrangement of thiol/disulfide exchange reactions, is a resident of the endoplasmic reticulum (ER). The subcellular localization and its function as catalyst of disulfide bond formation in the biosynthesis of secretory and cell membrane proteins suggest that PDI plays a key role in the secretory pathway. We have isolated a cDNA encoding protein disulfide isomerase from Bombyx mori(bPDI). It has been characterized under ER stress conditions (dominantly induced by calcium ionophore A23187, tunicamycin and DTT), which is known to cause an accumulation of unfolded proteins in the ER. Furthermore, It has also been examined for tissue distribution(pronounced at the fat body), hormonal regulation (juvenile hormone, insulin and juvenile +transferrin; however, it is not effected by transferrin alone), and the effect of exogenous bacteria (peak at 16 h after infection) on the bPDI mRNA expression. The results suggest that bPDI is a member of the ER stress protein group, and it may play an important role in exogenous bacterial infection in fat body, and that homones regulate its expression.
Diethylstilbestrol (DESB) is a synthetic estrogen not only that routinely prescribed, but also that known to be a teratogen. In this study, we found a novel pharmacological feature that DESB is able to positively modulate CD29 $({\beta}1-integrin)$ function. Thus, DESB up-regulated homotypic cell-cell adhesion of monocytic U937 cells mediated by CD29. However, DESB did not increase the surface level of CD29 and its binding activity to ligand (fibronectin), according to flow cytometric analysis and cell-fibronectin adhesion assay. Instead, the DESB-mediated up-regulation of cell-cell adhesion was blocked by several signaling enzyme inhibitors. Treatment of U0126 [an extracellular signal-regulated kinase (ERK) inhibitor], SB20358 (a p38 inhibitor) or Rp-8-pCPT-cGMP (a protein kinase G inhibitor) clearly inhibited DESB-mediated up-regulation of cell-cell adhesion induced by CD29. However, estrogen receptor antagonist ICI 182,780 failed to abrogate DESB effect. Therefore, our data suggest that DESB may up-regulate CD29-mediated cell-cell adhesion via modulating intracellular signaling enzymes such as ERK, PKG, and p38, independent of estrogen receptor function.
Transglutaminase2 (TGM2) is a multi-functional calcium dependent enzyme that affects angiogenesis, apoptosis, differentiation, attachment, and changes in the extracellular matrix. However, its function in periodontal tissue has not yet been studied. The aim of this study was to investigate the association of the TGM2 expression and the modulation of inflammatory mediators in inflamed periodontal ligament (PDL) cells induced by pro-inflammatory cytokines such as Interleukin-$1{\beta}$ and the Tumor necrosis $factor-{\alpha}$. The expression of TGM2 was increased in the inflamed periodontal tissue and PDL cells. Over-expressed TGM2 in the PDL cells increased expression of MMP1, MMP3, IL-6, CXCL8, and PTGS2. Conversely, inhibition of TGM2 activity using LDN27219, a TGM2 inhibitor, resulted in decreased expression of MMP1, MMP3, IL-6, and CXCL8. The mRNA expression was confirmed by RT-PCR and quantified by qRT-PCR. Protein levels were also confirmed by immunofluoroscence staining. These results suggest that TGM2 plays an important role in the regulation of inflammatory mediators which exacerbate tissue damage in inflamed periodontal tissue.
In this study, an efficient whole cell-based biotransformation for the production of liquiritigenin was developed using Laetiporus sulphureus CS0218 as biocatalyst and aqueous extracts of Glycyrrhiza uralensis as co-substrate, respectively. In order to determine the efficacy of this method, the optimal bioconversion conditions including mycelial growth, three important enzyme activities (${\beta}$-glucosidase, ${\alpha}$-rhamnosidase and ${\beta}$-xylosidase), and apparent viscosity of culture broth were monitored. After optimization, aqueous extracts of G. uralensis were added to the culture medium to directly produce algycone liquiritigenin. By applying this strategy, 67.5% of liquiritin was converted to liquiritigenin at pH 3.0 after 9 days of incubation and finally liquiritigenin was purified from the reaction mixture. And then, their biological activities including anti-oxidant and superoxide dismutase were observed. In fact, purified liquiritigenin was capable of bi-directional functions (i.e., either up-regulation or down-regulation of SIRT1 which is associated with aging). The results indicate that this strategy would be beneficial to produce biologically active liquiritigenin and could be used in pharmaceutical, cosmetic and food applications.
Jeong, Jee-Yeong;Zhou, Jin-Rong;Gao, Chong;Feldman, Laurie;Sytkowski, Arthur J.
BMB Reports
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제47권7호
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pp.411-416
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2014
In the present study, we demonstrate that ectopic expression of 56-kDa human selenium binding protein-1 (hSP56) in PC-3 cells that do not normally express hSP56 results in a marked inhibition of cell growth in vitro and in vivo. Down-regulation of hSP56 in LNCaP cells that normally express hSP56 results in enhanced anchorage-independent growth. PC-3 cells expressing hSP56 exhibit a significant reduction of hypoxia inducible protein (HIF)-$1{\alpha}$ protein levels under hypoxic conditions without altering HIF-$1{\alpha}$ mRNA (HIF1A) levels. Taken together, our findings strongly suggest that hSP56 plays a critical role in prostate cells by mechanisms including negative regulation of HIF-$1{\alpha}$, thus identifying hSP56 as a candidate anti-oncogene product.
C. congregatus를 산성 액체배지(pH4.2)에 배앙할 경우 세포막연관 laccase가 배양 초기에 대량 합성분비되었으며 분비된 효소의 작용에 의하여 melanin색소가 중성배지에 비하여 빨리 생성되었고 배양 24시간 후에 배지의 산도는 pH5.2로 증가되었다. 이 효소의 합성은 transcription inhibitor인 5-fluorouracil에 의하여 크게 억제되었다.
Ye, Dong-Jin;Kwon, Yeo-Jung;Shin, Sangyun;Baek, Hyoung-Seok;Shin, Dong-Won;Chun, Young-Jin
Biomolecules & Therapeutics
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제25권3호
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pp.321-328
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2017
Steroid sulfatase (STS) is an enzyme responsible for the hydrolysis of aryl and alkyl sulfates. STS plays a pivotal role in the regulation of estrogens and androgens that promote the growth of hormone-dependent tumors, such as those of breast or prostate cancer. However, the molecular function of STS in tumor growth is still not clear. To elucidate the role of STS in cancer cell proliferation, we investigated whether STS is able to regulate the integrin signaling pathway. We found that overexpression of STS in HeLa cells increases the protein and mRNA levels of integrin ${\beta}1$ and fibronectin, a ligand of integrin ${\alpha}5{\beta}1$. Dehydroepiandrosterone (DHEA), one of the main metabolites of STS, also increases mRNA and protein expression of integrin ${\beta}1$ and fibronectin. Further, STS expression and DHEA treatment enhanced phosphorylation of focal adhesion kinase (FAK) at the Tyr 925 residue. Moreover, increased phosphorylation of ERK at Thr 202 and Tyr 204 residues by STS indicates that STS activates the MAPK/ERK pathway. In conclusion, these results suggest that STS expression and DHEA treatment may enhance MAPK/ERK signaling through up-regulation of integrin ${\beta}1$ and activation of FAK.
CD4+ T helper (Th) cells play a crucial role in the modulation of innate and adaptive immune responses through the differentiation of Th precursor cells into several subsets, including Th1, Th2, Th17, and regulatory T (Treg) cells. Effector Th and Treg cells are distinguished by the production of signature cytokines and are important for eliminating intracellular and extracellular pathogens and maintaining immune homeostasis. Stimulation of naive Th cells by T cell receptor and specific cytokines activates master transcription factors and induces lineage specification during the differentiation of Th cells. The master transcription factors directly activate the transcription of signature cytokine genes and also undergo post-translational modifications to fine-tune cytokine production and maintain immune balance through cross-regulation with each other. This review highlights the post-translational modifications of master transcription factors that control the differentiation of effector Th and Treg cells and provides additional insights on the immune regulation mediated by protein argininemodifying enzymes in effector Th cells.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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