Background: Salting-out extraction (SOE) had been developed as a special branch of aqueous two-phase system recently. So far as we know, few reports involved in extracting ginsenosides with SOE because of the lower recovery caused by the unique solubility and surface activity of ginsenosides. A new SOE method for rapid pretreatment of ginsenosides from the enzymatic hydrolysates of Panax quinquefolium was established in this article. Methods: The SOE system comprising ethanol and sodium carbonate was selected to extract ginsenosides from the enzymatic hydrolysates of Panax quinquefolium, and HPLC was applied to analyze the ginsenosides. Results: The optimized extraction conditions were as follows: the aqueous two-phase extraction system comprising ethanol, sodium carbonate, ethanol concentration of 41.51%, and the mass percent of sodium carbonate of 7.9% in the extraction system under the experimental condition. Extraction time had minor influence on extraction efficiency of ginsenosides. The results also showed that the extraction efficiencies of three ginsenosides were all more than 90.0% only in a single step. Conclusion: The proposed method had been successfully applied to determine ginsenosides in enzymatic hydrolysate and demonstrated as a powerful technique for separating and purifying ginsenosides in complex samples.
In this study, we investigate the effect of pretreatment method on lipid extraction from Enteromorpha intestinalis using physical, thermo-chemical, and enzymatic process such as ultrasonication, high temperature treatment, freezing, microwave irradiation, osmotic shock, pH shock, homogenizing, and enzymatic treatment. In pretreatment with separated lipid extraction, the high extraction yield was obtained by high temperature treatment ($121^{\circ}C$ for 5 min) with 0.1 N HCl, which is 1.4 times higher than that of control. In pretreatment with direct lipid extraction, the high extraction yields were obtained by 0.1 N HCl pretreatment, microwave irradiation (700W, 1 min with twice), and 10% NaCl pretreatment, which is 1.45 times higher than that of control. In the result of enzymatic pretreatment with 17 kinds of enzymes, Cellic CTec II showed the high extraction yield of 5.3%, and which is 1.9 times higher than that of control. Moreover, the extraction yield was increased by the increase of enzyme amounts. In 10% enzyme amount, about 5.8% yield was obtained.
In clinical practice, homocysteine has gained popularity because its elevated values are strongly associated with an increased risk of cardiovascular disease. More recently, a new enzymatic colorimetric assay for homocysteine in biological sample, suitable for automated clinical analyzers, has been proposed. To evaluate one of these enzymatic methods and compare the results obtained with this method with those of an immunoenzymatic method, thirty-two samples were analyzed for total homocysteine by HiSens$^{(R)}$ homocysteine reagent on the automated chemistry analyzers TBA 200FR and compared to the widely used immunoenzymatic method ADVIA Centaur. In TBA 200FR, the within-run CVs of two control materials were 3.23% and 0.92%, respectively; the between run CVs were 4.58% and 2.55%, respectively. And in ADVIA 1650, the within-run CVs were 6.81% and 0.99%, respectively; the between run CVs were 9.0% and 3.9%, respectively. The recovery for homocysteine was 100% ($60.8{\mu}mol/L$), 99.1% ($48.64{\mu}mol/L$), 96.3% ($36.48{\mu}mol/L$), 96.1% ($24.32{\mu}mol/L$), and 92.1% ($12.16{\mu}mol/L$). The regression equation of TBA 200FR vs. ADVIA Centaur was y=0.9095x-2.5086 (r=0.9632). And the regression equation for the ADVIA 1650 chemistry vs. Immulite 2000 was y=0.8418x + 0.3207 (r=0.9625). In conclusion, this enzymatic method using automated chemistry analyzer for homocysteine assay shows acceptable analytical performance. I suggest that this assay will be suitable for routine analysis.
Objectives: The enzymatic hydrolysis is one of the processing methods that improve its effectiveness on medicinal herbs. In this research, changes in ingredients and activity by enzymatic hydrolysis were studied. Methods: For this study, a carbohydrate hydrolase such as viscozyme, which converts glycosides to aglycone, was applied to induce constituent changes in Sophora japonica Linne, Houttuynia cordata Thunberg and Leonurus japonicus Houttuyn. Changes in antioxidant activity were measured using the 1,1-diphenyl-2-picrylhydrazl (DPPH) method, and changes in ingredients were analyzed by high performance liquid chromatography. Results: As a result of enzymatic hydrolysis, the content of quercetin was increased from 1.26 mg/g to 29.66 mg/g in Sophora japonica Linne, from 0 mg/g to 0.66 mg/g in Houttuynia cordata Thunberg and from 0.43 mg/g to 0.71 mg/g in Leonurus japonicus Houttuyn. As a result of the antioxidant experimentation, the IC50 of Sophora japonica Linne decreased from 5 ug/ml (MeOH extract) and 9.1 ug/ml (EtOAc fraction) to 3.0 ug/ml, Houttuynia cordata Thunberg decreased from 15.6 ug/ml (MeOH extract) and 13.6 ug/ml (EtOAc fraction) to 11.2 ug/ml, and Leonurus japonicus Houttuyn decreased from 14.4 ug/ml (MeOH extract) and 12.6 ug/ml (EtOAc fraction) to 10.2 ug/ml. Conclusion: In conclusion, it was confirmed that glycoside rutin contained in the three medicinal herbs was changed to quercetin which is the aglycone, by the enzymatic hydrolysis using viscozyme. In terms of antioxidant activity, Sophora japonica Linne showed a significant antioxidant activity value that closes to the control group butylated hydroxyanisole. Houttuynia cordata Thunberg and Leonurus japonicus Houttuyn showed a minor increase in antioxidant activity.
In this thesis, both soap and enzymatic degumming method were adopted and the optimum degumming conditions were obtained. Difference between the two degumming methods in silk fiber state was investigated and analyzed on the basis of the results of physical testings, polarizing microscopy, scanning electron microscopy, viscosity measurement, (${\alpha}$+$\varepsilon$) amino group contents measurement, birefringence measurement, amino acid analysis, thermal analysis, infrared spectroscopy and x-ray diffraction analysis. The results obtained were summarized as follows; Physical test results of the degummed silk fiber showed that the tenacity and the elongation of enzymatic degummed silk fiber were lower than those of soap degummed fiber. But SEM observation and amino acid analysis showed almost the same tendency in the two degumming methods. The viscosity of enzymatic degummed silk fiber was lower than that of soap degummed fiber, but (${\alpha}$+$\varepsilon$) amino group contents was higher in the enzymatic degummed fiber. It can be suggested that the enzymatic degummed silk fibroin was more degraded than the soap degummed fibroin. The birefringence, endothermic temperature of DSC spectrum, IR crystallinity and X-ray lateral order factor of enzymatic degummed silk fiber were higher than those of soap degummed fiber. It seems that the enzymatic degummed silk fiber has the higher crystallinity than that of soap degummed one according to the above results. However, it can be inferred that these differences between soap and enzymatic degummed fiber would be lessened if pretreatment and aftertreatment were included in the enzymatic degumming process.
In this study, we investigated the use of liquid crystals to selectively detect the activity of enzymes at interfaces decorated with oligopeptide-based membranes. We prepared a mixed monolayer of tetra(ethylene glycol)-terminated lipids and carboxylic acid-terminated lipids at the aqueous-liquid crystal (LC) interface. The 17 amino-acid oligopeptide SNFKTIYDEANQFATYK was then immobilized onto this mixed monolayer through N-hydroxysuccinimide-activation of the carboxylic acid groups. We examined the orientational behavior of nematic 4-cyano-4'-pentylbiphenyl (5CB) after conjugation of the 17 amino-acid oligopeptide with the mixed monolayer assembled at the interface. Immobilization of the oligopeptide caused orientational transitions in 5CB, with a change from homeotropic (perpendicular) to tilted alignment, which was primarily due to the reorganization of the monolayer. The orientation of the 5CB molecules returned to its homeotropic state after contacting the interface containing ${\alpha}$-chymotrypsin, which can cleave the immobilized oligopeptide. Control experiments confirmed that the enzymatic activity of ${\alpha}$-chymotrypsin triggered the ordering transitions in the LC. These results suggest that the LC can provide a facile method for selective detection of enzymatic activity.
The immobilization of enzyme is one of the key issues both in the field of enzymatic research and industrialization. In this work, we reported a facile method to immobilize Candida Antarctica lipase B (CALB) in alginate carrier. In the presence of calcium cation, the enzyme-alginate suspension could be cross-linked to form beads with porous structure at room temperature, and the enzyme CALB was dispersed in the beads. Activity of the enzyme-alginate composite was verified by enzymatic hydrolysis reaction of p-nitrophenol butyrate in aqueous phase. The effects of reaction parameters such as temperature, pH, embedding and lyophilized time on the reactive behavior were discussed. Reuse cycle experiments for the hydrolysis of p-nitrophenol butyrate demonstrated that activity of the enzyme-alginate composite was maintained without marked deactivation up to 6 repeated cycles.
Sh. R. Madyarov;Yeo, Joo-Hong;Lee, Kwang-Gill;Lee, Yong-Woo
International Journal of Industrial Entomology and Biomaterials
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v.2
no.1
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pp.7-13
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2001
Enzymatic hydrolysis of different forms of silk fibroin (soluble, gel and insoluble forms) by industrial and commercial enzyme preparations to obtain aqueous and powdered silk fibroin in relatively mild conditions was investigated. A mono-enzymatic hydrolysate systems were tested for hydrolysis of water-soluble form of fibroin as most productive form of protein substrate. Insoluble forms of substrate usually were hydrolyzed less effective. In some cases from soluble fibroin substrate gel was formed during hydrolysis process. This hindered intermixing and decreased rates of hydrolysis. Insoluble sediments were formed in enzymatic hydrolysates in other cases. These sediments and also sediment after chemical hydrolysis were purified and tested on amino acids content for comparison. Sediments formation in these conditions are considered as pure tyrosine isolation method. Obtained hydrolysates were characterized by gel-chromatography analysis and other standard biochemical methods. Possibility of application of enzymatic hydrolysis for preparation of silk fibroin hydrolysates is discussed.
The crystalline fraction of silk fibroin (Fcp) was obtained from the aqueous solution of silk fibroin hydrolyzed by $\alpha$-chymotrypsin. The molecular weight of Fcp was found approximately 7000 by using high speed GPC. On the other hand, a high molecular weight of PIFcp product could be obtained by the reverse reaction of enzymatic proteolysis of Fcp precipitates. Some parts of this PIFcp have the molecular weights of approximately 17000 and 24000. As a result of x-ray diffraction analysis, the crystal structure of Fcp and PIFcp was turned out silk-II type and silk-I type, respectively. Upon the reverse reaction of enzymatic protelysis, the structural transition occured from silk-II type to silk-I type crystal for the most of Fcp precipitates. It was confirmed that PIFcp might be somewhat stable crystal structure of silk-I type according to the thermal analysis as well as x-ray diffraction method.
Park, Soyoon;Moon, Keumok;Park, Cheon-Seok;Jung, Dong-Hyun;Cha, Jaeho
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.28
no.4
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pp.566-570
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2018
Because glycosylation of aesculetin and its 6-glucoside, aesculin, enhances their biological activities and physicochemical properties, whole-cell biotransformation and enzymatic synthesis methodologies using Neisseria polysaccharea amylosucrase were compared to determine the optimal production method for glycoside derivatives. High-performance liquid chromatography analysis of reaction products revealed two glycosylated products (AGG1 and AGG2) when aesculin was used as an acceptor, and three products (AG1, AG2, and AG3) when using aesculetin. The whole-cell biotransformation production yields of the major transfer products for each acceptor (AGG1 and AG1) were 85% and 25%, respectively, compared with 68% and 14% for enzymatic synthesis. These results indicate that whole-cell biotransformation is more efficient than enzymatic synthesis for the production of glycoside derivatives.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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