Cetaceans (whales, dolphins, and porpoises) are aquatic mammals that experienced drastic changes during the transition from terrestrial to aquatic environment. Morphological changes include streamlined body, alterations in the face, transformation of the forelimbs into flippers, disappearance of the hindlimbs and the acquisition of flukes on the tail. For a prolonged diving, cetaceans acquired hypoxia-resistance by developing various anatomical and physiological changes. However, molecular mechanisms underlying these adaptations are still limited. CREB-binding protein (CREBBP) is a transcriptional co-activator critical for embryonic development, growth control, metabolic homeostasis and responses to hypoxia. Natural selection analysis of five cetacean CREBBPs compared with those from 15 terrestrial relatives revealed strong purifying selection, supporting the importance of its role in mammals. However, prediction for amino acid changes that elicit functional difference of CREBBP identified three cetacean specific changes localized within a region required for interaction with SRCAP and in proximal regions to KIX domain of CREBBP. Mutations in CREBBP or SRCAP are known to cause craniofacial and skeletal defects in human, and KIX domain of CREBBP serves as a docking site for transcription factors including c-Myb, an essential regulator of haematopoiesis. In these respects, our study provides interesting insights into the functional adaptation of cetacean CREBBP for aquatic lifestyle.
International Journal of Industrial Entomology and Biomaterials
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v.9
no.1
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pp.145-148
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2004
As an initial step to define the molecular mechanism of diapause during embryogenesis of the silkworm, Bombyx mori, mRNA transcripts from diapausing eggs and diapause-activated eggs were compared by differential expression using cDNA microarray. Twenty-four individual cDNA clones were identified. Amomg them, ten genes including alcohol dehydrogenase, dead box-l, cytochrome oxidase subunit I and 18 wheeler showed increased expression in the diapause-activated eggs. The rest of fourteen genes showed increased expression in diapausing eggs.
The nuclear transplantation technique is known as the most potential and efficient method for producing large numbers of genetically identical animals from a single embryo and somatic cells. After Dolly was introduced in 1997, many scientists were amazed. A possibility came to a reality that live offspring could be produced with differentiated somatic cells from an adult animal. On the other side, many in the press and the sensationalists focused on the socially, ethically and scientifically unacceptable sides of the technology. In this article, the history, current status and prospects of the technological development of nuclear transplantation in mammals and its application to the production of cloned animals are described. For the efficient and successful production of cloned embryos by nuclear transplantation, the right selection, preactivation and micromanipulation of oocytes as capacious recipient cytoplasm, the adequate and benefitial preparation of multiple totipotent embryonic and somatic cells as donor nuclei, fusion of them and in vitro production of cloned embryos are very critical. Recently the overall efficiency of production of cloned embryos and offspring in livestock has been much improved. Cloning will also be a more efficient, faster and useful way of creating transgenic fetuses for gene therapies, gene pharming, organs for xenotransplantation by preselection and mass production of transgenic embryos and consequently improving the production efficiency in transgenic animals. Further technical development of nuclear transplantation will enable large-scale production of cloned livestock and in near future the commercial cloning of animals will become a reality.
An E1B-defective adenovirus, named r2/Ad carrying the neo expression cassette, was constructed by homologous recombination. The construction, selection (using neomycin as a selective marker), and propagation of the recombinant virus was performed in human embryonic kidney 293 cells (HEK 293). An in vitro study demonstrated that this recombinant virus has the ability to replicate in and lyse some p53-deficient human tumor cells such as human glioma tumor cells (U251) and human bladder cells (EJ), but not in some cells with functional p53, such as human adenocarcinoma cells (A549) and human fibroblast cells (MRC-5). Also, based on the cytopathic effect (CPE), it was demonstrated, under identical conditions, that the U251 cells were more sensitive to r2/Ad replication than the EJ cells. In this paper, we report that r2/Ad could be very useful in studying the in vitro selective replication of E1B-defective adenovirus and has great potential in cancer gene therapy.
This study was conducted to establish an in vitro maturation (IVM) system by selection of efficient macromolecule in the porcine in vitro production (IVP) technology. To choose the efficient macromolecules in the development of porcine embryos, the effects of 3 kinds of macromolecules (porcine serum; PS, porcine follicular fluid; pFF, and polyvinyl alcohol; PVA) supplemented in IVM media on the maturation, cleavage, and development rates to blastocyst of parthenogenetic activation (PA) and in vitro fertilization (IVF) embryos were examined. The maturation rates of porcine oocytes in media supplemented with PS were significantly higher than those with pFF and PVA (92.4% vs. 85.4%, 77.1%; p<0.05). In the cleavage and development to blastocyst rates, supplement with PS or pFF in the IVM media was more effective than PA. However, there were no significant differences in cleavage and development to blastocyst between PS and pFF group. From the results of this study, it was demonstrated that PS was optimal macromolecule in the porcine IVM media.
Proceedings of the Korean Society of Developmental Biology Conference
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2003.10a
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pp.101-101
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2003
Main strategy for a treatment of Parkinson's disease (PD), due to a progressive degeneration of dopaminergic neurons, is a pharmaceutical supplement of dopamine derivatives or ceil replacement therapy. Both of these protocols have pros and cons; former exhibiting a dramatic relief but causing a severe side effects on long-term prescription and latter also having a proven effectiveness but having availability and ethical problems Embryonic stem (ES) cells have several characteristics suitable for this purpose. To investigate a possibility of using ES cells as a carrier of therapeutic gene(s), human ES (hES, MB03) cells were transfected with cDNAs coding for tyrosine hydroxylase (TH) in pcDNA3.1 (+) and the transfectants were selected using neomycin (250 $\mu /ml$). Expression of TH being confirmed, two of the positive clone (MBTH2 & 8) were second transfected with GTP cyclohydrolase 1 (GTPCH 1) in pcDNA3.1 (+)-hyg followed by selection with hygromycin-B (150 $\mu /ml$) and RT-PCR confirmation. By immune-cytochemistry, these genetically modified but undifferentiated dual drug-resistant cells were found to express few of the neuronal markers, such as NF200, $\beta$-tubulin, and MAP2 as well as astroglial marker GFAP. This results suggest that over-production of BH4 by ectopically expressed GTPCH I may be involved in the induction of those markers. Transplantation of the cells into striatum of 6-OHDA- denervated PD animal model relieved symptomatic rotational behaviors of the animals. Immunohistochemical analyses showed the presence of human cells within the striatum of the recipients. These results suggest a possibility of using hES cells as a carrier of therapeutic gene(s).
Yin, Huiqun;Jiang, Hong;He, Ruibing;Wang, Cunli;Zhu, Jie;Li, Yang
Clinical and Experimental Reproductive Medicine
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v.43
no.1
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pp.31-37
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2016
Objective: The aim of this study was to investigate associations between the morphology score of blastocysts and blastocoele re-expansion speed after warming with clinical outcomes, which could assist in making correct and cost-effective decisions regarding the appropriate time to vitrify blastocysts and to transfer vitrified-warmed blastocysts. Methods: A total of 327 vitrified-warmed two-blastocyst transfer cycles in women 38 years old and younger were included in this retrospective study. Results: The clinical pregnancy rate (CPR) and implantation rate (IR) of transfers of two good-morphology grade 4 blastocysts vitrified on day 5 (64.1% and 46.8%, respectively) were significantly higher than the CPR and IR associated with the transfers of two good-morphology grade 3 blastocysts vitrified on day 5 (46.7% and 32.2%, respectively). No significant differences were found in the CPR and IR among the transfers of two good-morphology grade 4 blastocysts regardless of the day of cryopreservation. Logistic regression analysis showed that blastocoele reexpansion speed after warming was associated with the CPR. Conclusion: The selection of a good-morphology grade 4 blastocyst to be vitrified could be superior to the choice of a grade 3 blastocyst. Extending the culture of grade 3 blastocysts and freezing grade 4 or higher blastocysts on day 6 could lead to a greater likelihood of pregnancy. Since re-expansion was shown to be a morphological marker of superior blastocyst viability, blastocysts that quickly re-expand after warming should be prioritized for transfer.
Recipients are an integral part of embryo transfer and they are expensive to maintain as a good recipient. Recipient management is one of the most important components in a successful embryo transfer program. Management includes selection and subsequent care of the animals. A good recipient is basically on "open" cows or heffers whose reproductive tract is capable of receiving one or two embryos and incubating it to term. Potential recipients should be always be healthy and cycling normally ranging from 18 to 23 days. A thorough veterinary examination is recommended for candidate of recipients and cattle for questionable health should be eliminated from the recipient herd. Age and size of recipients are particularly important considerations when heifers are used, because of most embryos available for transfer are from large dams and sires. Body condition can influence a recipient's production, reproduction and health. Obese and underconditioned cattle should be avoided for use. Transfer of fresh embryos especially requires precise synchronization of donors and recipients. For estrus synchronization, PGF$_2$$\alpha$ is injected twice 10 to 12 days apart and short4erm progestagen treatment is applied to potential recipient cattle by coil into vagina (PRID) or ear implant (Synchro-Mate-B). The highest pregnancy results are achieved in recipients at exact synchrony with donors or 12 to 24 hr earlier than donors. Estrus detection is a major factor in breeding efficiency. High accuracy can be achieved by use of heat mount detection alds or by obserbing cattle for 30-minute peroids 3 times daily. Assay progesterone in milk can be used to discrIminate between pregnant and nonprenant recipients. Rectal palpation on day 35 to 70 after is an accurate and safe method of pregnancy diagnosis. Embryonic mortality in recipients may be associated with factors such as high environmental temperature and nutritional or lactational stress in early lactation period. Achievement of short calving interval requires concentrated management activity during the first 90 days following calving. Acceptable candidate for a recipient should be routinely vaccinated for infectious diseases. Proper nutritional programs according to NRC requirements and body condition scoring system for recipient cattles are vital to the ultimate success of an embryo transfer program.r program.
Recent studies on nuclear transfer and induced pluripotent stem cells have demonstrated that differentiated somatic cells can be returned to the undifferentiated state by reversing their developmental process. These epigenetically reprogrammed somatic cells may again be differentiated into various cell types, and used for cell replacement therapies through autologous transplantation to treat many degenerative diseases. To date, however, reprogramming of somatic cells into undifferentiated cells has been extremely inefficient. Hence, reliable markers to identify the event of reprogramming would assist effective selection of reprogrammed cells. In this study, a transgene construct encoding enhanced green fluorescent protein (EGFP) under the regulation of human Oct4 promoter was developed as a reporter for the reprogramming of somatic cells. Microinjection of the transgene construct into pronuclei of fertilized mouse eggs resulted in the emission of green fluorescence, suggesting that the undifferentiated cytoplasmic environment provided by fertilized eggs induces the expression of EGFP. Next, the transgene construct was introduced into human embryonic fibroblasts, and the nuclei from these cells were transferred into enucleated porcine oocytes. Along with their in vitro development, nuclear transfer embryos emitted green fluorescence, suggesting the reprogramming of donor nuclei in nuclear transfer embryos. The results of the present study demonstrate that expression of the transgene under the regulation of human Oct4 promoter coincides with epigenetic reprogramming, and may be used as a convenient marker that non-invasively reflects reprogramming of somatic cells.
Background: Monoclonal antibodies (mAb) of rodent origin are produced with ease by hybridoma fusion technique, and have been successfully used as therapeutic reagents for humans after humanization by genetic engineering. However, utilization of these antibodies for therapeutic purpose has been limited by the fact that they act as immunogens in human body causing undesired side effects. So far, there have been several attempts to produce human mAbs for effective in vivo diagnostic or therapeutic reagents including the use of humanized xenomouse that is generated by mating knockout mice which lost Ig heavy and light chain genes by homologous recombination and transgenic mice having both human Ig heavy and light gene loci in their genome. Methods: Genomic DNA fragments of mouse Ig heavy and light chain were obtained from a mouse brain ${\lambda}$ genomic library by PCR screening and cloned into a targeting vector with ultimate goal of generating Ig knockout mouse. Results: Through PCR screening of the genomic library, three heavy chain and three light chain Ig gene fragments were identified, and restriction map of one of the heavy chain gene fragments was determined. Then heavy chain Ig gene fragments were subcloned into a targeting vector. The resulting construct was introduced into embryonic stem cells. Antibiotic selection of transfected cells is under the progress. Conclusion: Generation of xenomouse is particularly important in medical biotechnology. However, this goal is not easily achieved due to the technical difficulties as well as huge financial expenses. Although we are in the early stage of a long-term project, our results, at least, partially contribute the successful generation of humanized xenomouse in Korea.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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