Embryonic stem cell-preconditioned microenvironment is important for cancer cells properitities by change cell morphology and proliferation. This microenvironment induces cancer cell reprogramming and results in a change in cancer cell properties such as differentiation and migration. The cancer microenvironment affects cancer cell proliferation and growth. However, the mechanism has not been clarified yet. Using the ES-preconditioned 3-D microenvironment model, we provide evidence showing that the ES microenvironment inhibits proliferation and reduces oncogenic gene expression. But ES microenvironment has no effect on telomerase activity, cell viability, cellular senescence, and methylation on Oct4 promoter region. Furthermore, methylation of Nanog was increase on ES-preconditioned microenvironment and supports results that no difference on RNA expression levels. Taken together, these results demonstrated that in the ES-preconditioned 3-D microenvironment is a crucial role for cancer cell proliferation not senescence.
Lee, Jung Bok;Kim, Jin Mee;Kim, Sun Jong;Park, Jong Hyuk;Hong, Seok Ho;Roh, Sung Il;Kim, Moon Kyoo;Yoon, Hyun Soo
Molecules and Cells
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v.19
no.1
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pp.31-38
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2005
Human embryonic stem (hES) cells have unique features including unlimited growth capacity, expression of specific markers, normal karyotypes and an ability to differentiate. Many investigators have tried to use hES cells for cell-based therapy, but there is little information about the properties of available hES cell lines. We compared the characteristics of three hES cell lines. The expression of SSEA-1, -3, -4, and APase, was examined by immunocytochemistry, and Oct-4 expression was analyzed by RT-PCR. Differentiation of the hES cells in vitro and in vivo led to the formation of embryoid bodies (EBs) or teratomas. We examined the expression of tissue-specific markers in the differentiated cells by semiquantitative RT-PCR, and the ability of each hES cell line to proliferate was measured by flow cytometry of DNA content and ELISA. The three hES cell lines were similar in morphology, marker expression, and teratoma formation. However there were significant differences (P < 0.05) between the differentiated cells formed by the different cell lines in levels of expression of tissue-specific markers such as renin, kallikrein, Glut-2, ${\beta}-$ and ${\delta}-globin$, albumin, and ${\alpha}1-antitrypsin$ (${\alpha}1-AT$). The hES cell lines also differed in proliferative activity. Our observations should be useful in basic and clinical hES cell research.
Fish ovarian germline stem cells (OGSCs) that have the abilities to self-renew and differentiate into functional gametes can be used in various researches and applications. A main issue to be solved for effective utilization of fish OGSCs is the development of their stable in vitro culture condition, but only few researches about fish OGSC culture have been reported so far. In this study, in order to find the clues to develop the culture condition for OGSCs from Japanese medaka (Oryzias latipes), we tried to establish somatic cell lines as a candidate for the feeder cells and evaluated its supporting effects on the culture of ovarian cell populations from O. latipes. As the results, the somatic cell lines could be established only from the embryonic tissues among three tissues derived from embryos, fins and ovaries. Three embryonic cell lines were tested as a feeder cell for the culture of ovarian cell population and all three cell lines induced cell aggregation formation of the cultured ovarian cells whereas the feeder-free condition did not. Furthermore, a significant cellular proliferation was observed in the ovarian cells cultured on two of three cell lines. As a trial to increase the capacity of the cell lines as a feeder cell that supports the proliferation of the cultured ovarian cells, we subsequently established a stable line that expresses the foreign O. latipes fibroblast growth factor 2 (FGF2) from an embryonic cell line and evaluated its effectiveness as a feeder cell. The ovarian cells cultured on FGF2 expressing feeder cells still formed cell aggregates but did not show a significant increase in cellular proliferation compared to those cultured on non-transformed feeder cells. The results from this study will provide the fundamental information for in vitro culture of medaka OGSCs.
Human embryonic stem cells have been highlighted as a valuable cellular source in the regenerative medicine field, due to their pluripotency. However, there is the challenge of the establishment of specific functional cell type forms of undifferentiated human embryonic stem cells (hESC). To establish and purify functional cell types from hESCs, we differentiated undifferentiated hESCs into vascular lineage cells and sorted the specific cell population from the whole cell population, depending on their cell volume, and compared them with the non-sorted cell population. We observed that about 10% of the PECAM positive population existed in the VEGF induced differentiating human embryoid body (hEB), and differentiated hEBs were made into single cells for cell transplantation. After making single cells, we performed cell sorting using a fluorescence-activated cell sorter (FACs), according to their cell volume on the basis of FSC region gating, and compared their therapeutic capacity with the non-sorted cell population through cell transplantation into hindlimb ischemic disease model mice. 4 Weeks after cell transplantation, the recovery rate of blood perfusion reached 54% and 17% in the FSC regions of sorted cells- and non-sorted cells, respectively. This result suggests that derivation of a functional cell population from hESCs can be performed through cell sorting on the basis of cell volume after preliminary differentiation induction. This approach may then greatly contribute to overcoming the limitations of marker sorting.
We have developed a new passaging technique for the expansion of human embryonic stem cells (hESCs) that involves simply pipetting portions of hESCs acquired from colonies, reducing the laborious and time-consuming steps in the expansion of hESCs. Compared to general mechanical methods of passaging, our pipetting method allowed hESCs colonies to be broken into small fragments, which showed significantly higher attachment rates onto feeder cell layers. This technique produced three times the number of hESCs colonies than conventional mechanical methods. In addition, this pipetting method allowed us to distinguish differentiated hESCs from undifferentiated hESCs during hESCs colony pipetting. The hESCs cultured by pipetting method displayed normal human chromosomes for over 60 passages. According to RT-PCR and immunohistochemical analysis, the hESCs successfully maintained their undifferentiated state and pluripotency which was also confirmed by teratoma formation in viva Therefore, the pipetting method described in this study is a useful tool to efficiently and quickly expand hESCs on a large scale without enzyme treatment.
The embryonic zebrafish (Danio rerio) is rapidly becoming an important model organism for studies of early events in vertebrate development. Neural crest-derived pigment cell precursors of the embryonic zebrafish give rise to melanophores, xanthophores, and/or iridophores. Cell-signaling mechanisms related to the development of pigmentation and pigment pattern formation remain obscure. In this study, zebrafish embryos were treated with various signaling-related molecules - LiCl (an inositol-phosphatase inhibitor), forskolin (a protein kinase-A activator), a combination of LiCl/forskolin, and LiCl/heparin (an IP3 inhibitor) in order to identify the mechanisms involved in pigmentation. LiCl treatment resulted in ultrastructural and morphological alterations of melanophores. To identify the possible proteins responsible for this ultrastructural and morphological change, phosphorylation patterns in vitro and in vivo were analyzed. LiCl and LiCl/forskolin treatment elicited dramatic increases in the phosphorylation of a 55-kDa protein which was inhibited by heparin treatment. LiCl treatment also induced phosphorylation of a 55-kDa protein in melanophores purified from adult zebrafish. Collectively these results suggest that a LiCl-induced 55-kDa phosphoprotein plays a role in melanophore morphology and ultrastructure and ultimately effects gross pigmentation.
Background and Objectives: Embryologically, mesodermal development is closely related to the development of various organs such as muscles, blood vessels, and hearts, which are the main organs that make up the body. However, treatment for mesoderm developmental disorders caused by congenital or acquired factors has so far relied on surgery and drug treatment for symptom relief, and more fundamentally, treatment for mesoderm developmental disorders is needed. Methods and Results: In our study, microRNA (miRNA), which plays an important role in the mesoderm development process, was identified and the developmental function was evaluated. miRNAs consist of small nucleotides, which act as transcription factors that bind to the 3' untranslated region and suppressed target gene expression. We constructed the human embryonic stem cell (hESC) knockout cell line and analyzed the function and characteristics of miR-5739, which plays an important role in mesoderm lineage. miR-5739 acts as a transcription factor targeting SMA, Brachyury T, Hand1, which controls muscle proliferation and differentiation, and KDR gene, which regulates vessel formation in vitro. In vivo results suggest a role in regulating muscle proliferation and differentiation. Gene ontology analysis confirmed that the miR-5739 is closely related to genes that regulate muscle and vessel proliferation and differentiation. Importantly, abnormal expression of miR-5739 was detected in somatic cells derived from patients with congenital muscle disease. Conclusions: Our study demonstrate that miR-5739 gene function significantly affects transcriptional circuits that regulate muscle and vascular differentiation during embryonic development.
Three types of clonal cell lines were isolated according to their size and phenotype from the adherent cell populations in long-term liquid cultures from the embryonic fibroblast cells of Zebrafish, Danio rerio. All kind of cell lines were well proliferated. The size and number of clonal cell lines derived colonies from stable embryonic cells were significantly increased in the presence of NAC and A2P conditioned medium from the cell lines. The stable cell lines and clonal cell lines were cap-able of well proliferation in vitro. These cell lines have been maintained in continuous culture without change in characteristics. A majority of the clonal cells (80%) was shown a normal chromosomal complement (50 chromosomes, 2N) in according with FACs analysis. Majority of cells were positive to vimentin staining and none of them were positive for nestin and Oct -4 by immunocytochemistry. These results indicate that the clonal cell lines obtained from cultured cells are fibroblasts and may be extremely useful in genetic manipulation for further nuclear transfer and fish cloning.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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