Lee Geum-Sil;Kim Eun-Yeong;Min Hyeon-Jeong;Park Se-Pil;Jeong Gil-Saeng;Im Jin-Ho
Proceedings of the KSAR Conference
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2002.06a
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pp.83-83
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2002
This study was to compare the characteristics of parthenogenetic mES (P-mES) cells and in vitro fertilization mES cells. Mouse oocytes were recovered from superovulated 4wks hybrid F1 (C57BL/6xCBA/N) female mice. The oocytes were treated with 7% ethanol for 5 min and 5 ㎍/㎖ cytochalasin-B for 4 h. For IVF, the oocytes were inseminated with epididymal sperm of hybrid Fl male mice (1×10/sup 6//㎖). IVF and parthenogenetic embryos were cultured in M16 medium for 4 days. Cell number count in blastocysts was carried out differential labelling using propidium iodide (red) and bisbenzimide(blue). (omitted)
Kim, Duk-Kyung;Seo, Sam-Youl;Lee, Eun-Young;Lee, Seul-Ki;Han, Jae-Yong
Proceedings of the Korea Society of Poultry Science Conference
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2001.11a
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pp.69-70
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2001
Lectins have great potential as to determine the alternation of the distribution of cell surface carbohydrates during cellular development and differentiation. Here, we investigated the presence and distribution of cell surface carbohydrates on chicken primordial germ cells (PGCs) during the migration and gonadal stages using a variety of lectins. A total of six FITC-labelled lectins from several specificity classes were used: ConA (glucose/mannose), WGA (N-acetylglucosamine), STA (N-acetylglucosamine), DBA (N-acetylgalactosamine/galactose), UEA-I (fucose) and PHA-E (oilgosaccharide). As a results, PGC-specific binding was observed in STA. PGCs of migration stage (2.5- and 5.5-day embyos) were STA-positive whereas PGCs of 10-day embryonic gonad were not. The results suggest that N-acetylglucosamine residuse are present specifically in migrating chicken PGCs and changes during development.
Proceedings of the Korean Society of Developmental Biology Conference
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2003.10a
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pp.7-8
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2003
Since it was first reported in 1997, somatic cell cloning has been demonstrated in several other mammalian species. On the mouse, it can be cloned from embryonic stem (ES) cells, fetus-derived cells, and adult-derived cells, both male and female. While cloning efficiencies range from 0 to 20%, rates of just 1-2% are typical (i.e. one or two live offspring per one hundred initial embryos). Recently, abnormalities in mice cloned from somatic cells have been reported, such as abnormal gene expression in embryo (Boiani et al., 2001, Bortvin et al., 2003), abnormal placenta (Wakayama and Yanagimachi 1999), obesity (Tamashiro et ai, 2000, 2002) or early death (Ogonuki et al., 2002). Such abnormalities notwithstanding, success in generating cloned offspring has opened new avenues of investigation and provides a valuable tool that basic research scientists have employed to study complex processes such as genomic reprogramming, imprinting and embryonic development. On the other hand, mouse ES cell lines can also be generated from adult somatic cells via nuclear transfer. These 'ntES cells' are capable of differentiation into an extensive variety of cell types in vitro, as well assperm and oocytes in vivo. Interestingly, the establish rate of ntES cell line from cloned blastocyst is much higher than the success rate of cloned mouse. It is also possible to make cloned mice from ntES cell nuclei as donor, but this serial nuclear transfer method could not improved the cloning efficiency. Might be ntES cell has both character between ES cell and somatic cell. A number of potential agricultural and clinical applications are also are being explored, including the reproductive cloning of farm animals and therapeutic cloning for human cell, tissue, and organ replacement. This talk seeks to describe both the relationship between nucleus donor cell type and cloning success rate, and methods for establishing ntES cell lines. (중략)
The endogenous retrovirus-like elements (HERVs) found on several human chromosomes are somehow involved in gene regulation, especially during the transcription level. HERV-H, located on chromosome Xp22, may regulate gastrin-releasing peptide receptor (GRPR) in connection with diverse diseases. By suppression subtractive hybridization screen on SV40-immortalized lung fibroblast (WI-38 VA-13), we discovered that expression of HERV-HX2, a clustered HERV-H sequence on chromosome X, was upregulated in immortalized lung cells, compared to that of normal cells. Expression of HERV-HX2 was then analyzed in various cell lines, including normal somatic cells, cancer cells, SV40-immortalized cells, and undifferentiated and differentiated human embryonic stem cells. Expression of HERV-HX2 was specifically upregulated in continuously-dividing cells, such as cancer cells and SV40-immortalized cells. Especially, HERV-HX2 in HeLa cells was highly upregulated during the S phase of the cell cycle. Similar results were obtained in hES cells, in which undifferentiated cells expressed more HERV-HX2 mRNA than differentiated hES cells, including neural precursor and endothelial progenitor cells. Taken together, our results suggest that HERV-HX2 is upregulated in cancer cells and undifferentiated hES cells, whereas downregulated as differentiation progress. Therefore, we assume that HERV-HX2 may playa role on proliferation of cancer cells as well as differentiation of hES cells in the transcriptional level.
Neural stem cells (NSCs) can proliferate and differentiate into multiple cell types that constitute the nervous system. NSCs can be derived from developing fetuses, embryonic stem cells, or induced pluripotent stem cells. NSCs provide a good platform to screen drugs for neurodegenerative diseases and also have potential applications in regenerative medicine. Natural products have long been used as compounds to develop new drugs. In this review, natural products that control NSC fate and induce their differentiation into neurons or glia are discussed. These phytochemicals enable promising advances to be made in the treatment of neurodegenerative diseases.
Differentiation of cells can be induced through modulation of endogenous regulators using exogenous factors. Useful transfection systems to transport a specific exogenous regulator into cell have been tried but still there are many obstacles to overcome. In this study, we examined the transfection efficiency of cell permeable peptides (CPPs) in mouse embryonic stem cell under the various conditions. To identify the CPP-mediated translocation of a protein, we employed recombinant CPP-enhanced green fluorescent protein (EGFP). Viability of R1 cells was different between experimental groups depending on the kind of CPP and the concentration of CPP-EGFP. Translocation of CPP-EGFPs into the R1 cells was not detected until 30 min after CPP-EGFPs treatment in all groups. After 1 hr, translocation of pEP-1-EGFP-N was detected, but it could not be detected in the other group. Transfection of pEP-1EGFP-N was independent on its concentration. The time course did not show saturation even after 24 hr in pEP-1-EGFP-N. These results showed that the permeability depended on the kind of CPP and the location of His-tag in the case of examined CPPs, and did not need biological energy. On summary, the efficiency of transfection of CPP-EGFP depends on the CPP sequences but the culture time is not a key factor in transfection for the mouse embryonic stem cell. For the future studies to improve the efficiency of translocation of protein into embryonic stem cells, it is needed to develop modified CPP or mediator. The studies would be very useful to induce the differentiation of embryonic stem cells.
MicroRNAs (miRNAs) function as a key regulator of diverse cellular functions. To find out novel miRNAs that promote the differentiation of mouse embryonic stem cells (mESCs), we compared the miRNAs expression profiles of mESCs under self-renewal vs. differentiation states. We noticed that miR-222 was highly expressed during the differentiation of mESCs. Quantitative RT-PCR analysis revealed that expression of miR-222 was up-regulated during the embryonic bodies formation and retinoic acid -dependent differentiation. When miR-222 was suppressed by antogomiR-222, the differentiation of mESCs was delayed compared to control. Self-renewal marker expression or cell proliferation was not affected but the expression of lineage specific marker was suppressed by the treatment of miR-222 inhibitor during the differentiation of mESCs. Taken together, these results suggest that miR-222 functions to promote the differentiation of mESCs by regulating expression of differentiation related genes.
Embryonic stem (ES) cells have a capability to generate all types of cells. However, the mechanism by which ES cells differentiate into specific cell is still unclear. Using microarray technology, the differentiation process in mouse embryonic stem cells was characterized by temporal gene expression changes of mouse ES cells during differentiation in a monolayer culture. A large number of genes were differentially regulated from 1 day to 14 days, and less number of genes were differentially expressed from 14 days to 28 days. The number of up-regulated genes was linearly increased throughout the 28 days of in vitro differentiation, while the number of down-regulated genes reached the plateau from 14 days to 28 days. Most differentially expressed genes were functionally classified into transcriptional regulation, development, extra cellular matrix (ECM),cytoskeleton organization, cytokines, receptors, RNA processing, DNA replication, chromatin assembly, proliferation and apoptosis related genes. While genes encoding ECM proteins were up-regulated, most of the genes related to proliferation, chromatin assembly, DNA replication, RNA processing, and cytoskeleton organization were down-regulated at 14 days. Genes known to be associated with embryo development or transcriptional regulation were differentially expressed mostly after 14 days of differentiation. These results indicate that the altered expression of ECM genes constitute an early event during the spontaneous differentiation, followed by the inhibition of proliferation and lineage specification. Our study might identify useful time-points for applying selective treatments for directed differentiation of mouse ES cells.
Primary cultures of rat cortical and chicken embryonic brain cells were employed to establish a reliable screening method for natural products blocldng or enhancing glutamate-induced neurotoxicity. Exposure of primary cultured rat cortical cells or chicken embryonic brain cells to high dose of glutamate resulted in the fragmentation of neutites and consequent neuronal death. The level of cytoplasmic lactate dehydrogenase(LDH), indicator for cell survival in cultures, was significantly reduced at exposure to glutamate. For the practical application of the methods, series of concentrations of plants extracts and positive control were applied prior to the glutamate insult on primary cultures of rat cortical and chicken embryonic, brain cells. Relative LDH level in cells was measured for the estimation of the effect of the test materials on the glutamatergic neurons. The validity of the present screening method for natural products acting on glutamatergic neurons was examined with dextromethorphan, a known glutamatergic antagonist. The treatment of 100 $\mu{M}$ dextromethorphan prevented the reduction of LDH in rat cortical and chicken embryonic brain cells caused by glutamate insult keeping 60% and 90% of LDH level in normal control, respectively. Above results indicate that primary cultures of rat cortical and chicken embryonic brain cells could be proper systems for the screening of potential natural agents acting on glutamatergic, neurons. Between the two types of cultures, primary culture of chicken embryonic brain cells seemed to be a better system for the primary screening, since it is technically easier and economical compared to that of rat cortical cells.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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