Human embryonic stem (ES) cells are derived from the inner cell mass of the preimplantation embryo and have the capacity to differentiate into various types of cells in the body. Hence, these cells may potentially be an indefinite source of cells for cell therapy in various degenerative diseases including neuronal disorders. For clinical applications of human ES cells, directed differentiation of these cells would be necessary. The objective of this study is to develop the culture condition for the expansion of neural precursor cells derived from human ES cells. Human ES cells were able to differentiate into neural precursor cells upon a stepwise culture condition. Neural precursor cells were propagated up to 5000-fold in cell numbers over 12-week period of culture and evaluated for their characteristics. Expressions of sox1 and pax6 transcripts were dramatically up-regulated along the differentiation stages by RT-PCR analysis. In contrast, expressions of oct4 and nanog transcripts were completely disappeared in neural precursor cells. Expressions of nestin, pax6 and sox1 were also confirmed in neural precursor cells by immunocytochemical analysis. Upon differentiation, the expanded neural precursor cells differentiated into neurons, astrocytes, and oligodendrocytes. In immunocytochemical analysis, expressions of type III ${\beta}$-tubulin and MAP2ab were observed Presence of astrocytes and oligodendrocytes were also confirmed by expressions of GFAP and O4, respectively. Results of this study demonstrate the feasibility of long-term expansion of human ES cell-derived neural precursor cells in vitro, which can be a potential source of the cells for the treatment of neurodegenerative disorders.
Kim, Young-Eun;Park, Jeong-A;Ha, Yang-Wha;Park, Sang-Kyu;Kim, Hee Sun;Oh, Sun Kyung;Lee, Younghee
Development and Reproduction
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v.16
no.4
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pp.353-361
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2012
Human embryonic stem (ES) cells are a potential source of cells for developmental studies and for a variety of applications in transplantation therapies and drug discovery. However, human ES cells are difficult to culture and maintain at a large scale, which is one of the most serious obstacles in human ES cell research. Culture of human ES cells on MEF cells after disassociation with accutase has previously been demonstrated by other research groups. Here, we confirmed that human ES cells (H9) can maintain stem cell properties when the cells are passaged as single cells under a feeder-free culture condition. Accutase-dissociated human ES cells showed normal karyotype, stem cell marker expression, and morphology. We prepared frozen stocks during the culture period, thawed two of the human ES cell stocks, and analyzed the cells after culture with the same method. Although the cells revealed normal expression of stem cell marker genes, they had abnormal karyotypes. Therefore, we suggest that accutase-dissociated single cells can be usefully expanded in a feeder-free condition but chromosomal modification should be considered in the culture after freeze-thawing.
In vitro developmental ability of early preimplantation monse embryos was shown to be depend on the embryonic stages, media and snpplements and their interaction(Experiment 1). The development of I-cell embryos were more promoted in the complex medinm(Ham's Fl0) than in the simple one(m-KRB), but that of 2-cell embryos showed the reverse effect. The bovine serum albumin(BSA) as a medium snpplement more promoted the development of I- and 2-cell embryos, compared with human fetal cord serum(HCS). On the other hand, the harmful effect of HCS was especially shown on the early cleavage in the embryonic development of the two stages. The effect of serum, in the respect of interaction between media and snpplements. was also more significantly appeared in m-KRB than Ham's Fl0. In the experiment 2, when the harmful effect of HCS was compared with that of fetal bovine serum(FBS), the former more promoted the development of l - and 2-cell embryos than the latter. The effect of HCS was more significantly shown in the development of I-cell than that of 2-cell embryos. Conclusively, as I- and 2-cell embryos were different in the requirements for the in vitro development. the optimal medium and supplement have to be selected for each embryonic stage. It is also respected to the better result if it take into consideration into the kinds of sera when serum is used for culture of early preimplantation embryos.
Embryonic stem (ES) cell-derived cardiomyocytes (ESCMs) must be specifically purified in order to prevent teratoma formation, and this confusing issue has hampered their clinical application. We therefore investigated a technique to generate pure labeled ESCMs for possible use in cardiac repair. We generated transgenic ES cell lines expressing enhanced green fluorescent protein (EGFP) under the transcriptional control of the $\alpha$-cardiac myosin heavy chain ($\alpha$-MHC) promoter. Differentiated EGFP-positive ES cells displayed characteristics of CMs. Furthermore, neuregulin-1 (NRG-1) upregulated the expression of the cardiac-restricted transcription factors Nkx2.5 and GATA-4, as well as differentiated CM factors ($\alpha$-MHC, $\beta$-MHC). Immunohistochemistry demonstrated that NRG-1 increased expression of cardiac-specific troponin T in the beating foci of the embryoid bodies. This work revealed a potential method for specifically labeling and enriching ESCMs by combining genetically-engineered ES cell clones and exogenous growth factor treatment.
The present study was carried out to investigate the effects of EGF and anti-EGF on early embryonic development and hatching in mice. Developmental and hatching rates of mouse em-bryos from 2-cell to morular stage which were cultured in Ham's FlO medium supplemented with EGF (1-1,000 ng/ml) or anti-EGF (whole serum diluted from 1:10 to 1:1,000) were compared to those of control When mouse early 2-cell embryos were cultured in the EGF supplemented medium, blastulation was accelerated compared with control. Hatching rate was also significantly (p
Large quantities of high-quality recipient oocytes with uniform cytoplasm are needed for research in the promising field of somatic cell nuclear transfer (SCNT) and embryonic stem cell research. In canines, however, it is difficult to obtain large quantities of oocytes because each donor produces a limited number of mature oocytes in vivo. Although in vitro maturation (IVM) is considered an alternative approach to oocyte production, this technique is still too rudimentary to be used for the production of highquality, uniform oocytes in large quantities. One technique for overcoming this difficulty is to use oocytes obtained from different species. This technique is known as interspecies SCNT (iSCNT). This review provides an overview of recent advances in canine - porcine interspecies SCNT.
The differentiation of mouse embryonic stem(ES) cell into smooth muscle cells(SMC) may play a major role in cardiovascular development and under pathophysiological conditions. Therefore, in the present study, we have examined the differentiation of ES cells and its related gene expression. SMC differentiation was indicated by cellular morphology and time-dependent induction of dibutyryl adenosine 3,5-cyclic monophosphate(DBcAMP)and retinoic acid(RA) on smooth muscle ${\alpha}$-actin($SM{\alpha}A$), smooth muscle myosin heavy chain(SMMHC) gene expression. The control was undifferentiated ES cells(protein expressions represent 50-60kDaOct-4). The results of this study show that morphology of embryoid body and confirmation of $SM{\alpha}A$ expression by immunocytochemistry. Moreover, SMMHC and desmin expression was significantly increased by time dependent manner(5, 7, 15 days), in contrast to $SM{\alpha}A$ expression was slightly decreased on 15days. In conclusion, DBcAMP and RA stimulate mouse ES cells differentiation into SMC and enhanced $SM{\alpha}A$, SMMHC and desmin expression.
Optimizing the conditions for stem cell culture is an essential prerequisite for the efficient utilization of stem cells. In the culture of fish embryonic stem cells (ESCs) or ESC-like cells, embryo extracts are important for stable growth, but there is no rule for determining the developmental stage of the embryos used to obtain extracts. Therefore, this study investigated the effects of the developmental stage of extract donor embryos on the culture of Oryzias dancena ESC-like cells. O. dancena ESC-like cells were cultured in different media containing each of four types of embryo extract depending on the developmental stage of the extract donor embryos. Growth, morphology, colony-forming ability, alkaline phosphatase (AP) activity, and embryoid body (EB) formation of the cells were investigated. While the developmental stage of the extract donor embryos did not influence the growth, morphology, AP activity, or EB formation of ESC-like cells, colony-forming ability was affected and the pattern of the effects differed completely between the two ESC-like cells investigated. These results suggest that the developmental stage of extract donor embryos should be selected carefully for the culture of ESC-like cells, according to the research purpose and type of cell line.
It has been reported that ganglioside GT1b is expressed during neuronal cell differentiation from undifferentiated mouse embryonic stem cells (mESCs), which suggests that ganglioside GT1b has a direct effect on neuronal cell differentiation. Therefore, this study was conducted to evaluate the effect of exogenous addition of ganglioside GT1b to an in vitro model of neuronal cell differentiation from undifferentiated mESCs. The results revealed that a significant increase in the expression of ganglioside GT1b occurred during neuronal differentiation of undifferentiated mESCs. Next, we evaluated the effect of retinoic acid (RA) on GT1b-treated undifferentiated mESCs, which was found to lead to increased neuronal differentiation. Taken together, the results of this study suggest that ganglioside GT1b plays a crucial role in neuronal differentiation of mESCs.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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