We present a continuous electrical cell lysis chip, using a DC bias voltage to generate the focused high electric field for cell lysis as well as the electroosmotic flow for cell transport. The previous cell lysis chips apply an AC voltage between micro-gap electrodes for cell lysis and use pumps or valves for cell transport. The present DC chip generates high electrical field by reducing the width of the channel between a DC electrode pair, while the previous AC chips reducing the gap between an AC electrode pair. The present chip performs continuous cell pumping without using additional flow source, while the previous chips need additional pumps or valves for the discontinuous cell loading and unloading in the lysis chambers. The experimental study features an orifice whose width and length is 20 times narrower and 175 times shorter than the width and length of a microchannel. With an operational voltage of 50 V, the present chip generates high electric field strength of 1.2 kV/cm at the orifice to disrupt cells with 100% lysis rate of Red Blood Cells and low electric field strength of 60 V/cm at the microchannel to generate an electroosmotic flow of $30{\mu}m/s{\pm}9{\mu}m/s$. In conclusion, the present chip is capable of continuous self-pumping cell lysis at a low voltage; thus, it is suitable for a sample pretreatment component of a micro total analysis system or lab-on-a-chip.
Shim, Sang Woo;Kim, Young Ha;Lee, Hoon Taek;Shim, Hosup
Asian-Australasian Journal of Animal Sciences
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제21권3호
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pp.358-363
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2008
The intracytoplasmic sperm injection (ICSI) procedure has recently been utilized to produce transgenic animals and may serve as an alternative to the conventional pronuclear microinjection in species such as pigs whose ooplasm is opaque and pronuclei are often invisible. In this study, the effects of sperm membrane disruption and electrical activation of oocytes on in vitro development and expression of transgene green fluorescent protein (GFP) in ICSI embryos were tested to refine this recently developed procedure. Prior to ICSI, sperm heads were treated with Triton X-100+NaCl or Triton X-100+NaCl+NaOH, to disrupt membrane to be permeable to exogenous DNA, and incubated with linearized pEGFP-N1 vector. To induce activation of oocytes, a single DC pulse of 1.3 kV/cm was applied to oocytes for $30{\mu}sec$. After ICSI was performed with the aid of a micromanipulator, in vitro development of embryos and GFP expression were monitored. The chemical treatment to disrupt sperm membrane did not affect the developmental competence of embryos. 40 to 60% of oocytes were cleaved after injection of sperm heads with disrupted membrane, whereas 48.6% (34/70) were cleaved without chemical treatment. Regardless of electrical stimulation to induce activation, oocytes were cleaved after ICSI, reflecting that, despite sperm membrane disruption, the perinuclear soluble sperm factor known to mediate oocyte activation remained intact. After development to the 4-cell stage, 11.8 (2/17, Triton X-100+NaCl+NaOH) to 58.8% (10/17, Triton X-100+NaCl) of embryos expressed GFP. The expression of GFP beyond the stage of embryonic genome activation (4-cell stage in the pig) indicates that the exogenous DNA might have been integrated into the porcine genome. When sperm heads were co-incubated with exogenous DNA following the treatment of Triton X-100+NaCl, GFP expression was observed in high percentage (58.8%) of embryos, suggesting that transgenic pigs may efficiently be produced using ICSI.
Objectives : This study aimed to investigate the protective effects of mixed extracts from Scutellaria baicalensis Georgi, Alisma orientale Juzepzuk, and Atractylodes japonica Koidzumi on interleukin (IL)-6-induced damage to tight junction (TJ) integrity in a Caco-2 cell model. Methods : We assessed the TJ integrity of Caco-2 monolayers by measuring the flux of FITC-labeled dextran and transepithelial electrical resistance (TEER). Additionally, we evaluated the expression of TJ proteins, such as ZO-1 and Occludin. Results : Treatment with IL-6 (50 ng/ml) increased TJ permeability and decreased TEER values of Caco-2 monolayers. Pretreatment with HTB (50-200 ㎍/ml) for 1 h significantly alleviated IL-6-induced TJ disruption, as evidenced by reduced TJ permeability and increased TEER values. Furthermore, HTB reversed the IL-6-induced inhibition of TJ protein expression, including ZO-1 and Occludin. Conclusions : These findings indicate that HTB protects barrier function by reversing the IL-6-induced decrease in TJ integrity and the suppression of TJ protein expression.
뇌에서 혈액뇌장벽을 형성하는 내피세포는 치밀이음부를 통해 뇌의 항상성을 유지하고 있다. 치밀이음부의 단백질 중의 하나인 occludin은 뇌혈관장벽(BBB)의 기능을 유지하는 중요한 단백질로 인식되고 있다. 본 실험에서는 소의 뇌에서 배양된 BBB 내피세포에서 활성산소종의 하나인 $H_2O_2$에 의해 일어나는 occludin 단백질의 변화를 관찰하였다. $H_2O_2$에 의해 TEER가 감소하는 것은 occludin의 재분포에 의한 것이었다. 세포독성은 4시간내에서는 1mM $H_2O_2$ 이하에서는 나타나지 않았다. Confocal laser microscope으로 관찰한 결과, $H_2O_2$에 의해 occludin은 치밀이음부에서 중간중간이 사라져 감소해 있었고, 이러한 양상은 $H_2O_2$의 용량과 노출시간에 비례하였다. 그러나 Western blot 결과, occludin의 총량은 증가하였다. 투과전자현미경 관찰을 통해 $H_2O_2$가 세포사이의 결합의 구조에 뚜렷한 변화를 미치지 않는 것을 알 수 있었다. 이를 통해 $H_2O_2$에 의한 BBB 기능소실은 occludin이 치밀이음부에서 부분적으로 사라지는 것에 의하지만, 세포는 기능손상을 복구하기위한 방편으로 이 단백질의 생산을 더욱 증가시키는 것으로 생각된다.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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