To compare of serum antibody titers using ELISA and HI, serum samples were collected from 100 breeders and their progeny 550 broilers. The breeders and broilers were vaccinated with infectious bronchitis(IB)- and Newcastle disease(ND)-viruses according to general vaccination program. The antibodies in serum samples against IB and ND viruses were detected by enzyme-linked immunosorbent assay(ELISA) using commercial ELISA kit and hemagglutination inhibition(HI) test. Geometric mean titer(GMT) of ELISA and In titers were monitored from 1-day-old to 35-day-old broilers and compared to those of breeder chickens. The antibody titers of breeders vaccinated with ]B virus showed 47,800, ELISA and 7.2, HI, respectively. Progeny chicks, 1-day-old, vaccinated with IBV showed high antibody titers than those of breed chickens. Those chicks were maintained protective antibody levels until 11-day-old. From 14-day-old, the antibody level decreased below protective levels. In ND, breeders serum antibody titers ELISA and Eiu were 30,200 GMT and 8.7 HI titer, respectively. On 1-day-old chicks, antibody levels was decreased to half in ELISA(16,270) compared with those of breeders, but In titers was 7.4. Progeny broilers, protective antibody level was maintained until 14- day-old by ELISA, but at 11-day-old by HI titers. After then, ND antibody titer was continuously decreased underdefense level. These result indicated that the ELISA method be more sensitive than HI titration to detect serum antibody level for IBV and NDV.
Canine respiratory coronavirus (CRCoV) is a significant pathogen that causes respiratory diseases in dogs, collectively known as a canine infectious respiratory disease. The virus is highly contagious and exhibits high seroprevalence worldwide. Currently, bovine coronavirus (BCoV) enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA) kits are used to detect CRCoV antibodies. However, BCoV-ELISA kits cannot differentiate between infections caused by BCoV and those caused by CRCoV. In this study, we evaluated the hemagglutination inhibition (HI) test for CRCoV by comparing it with the virus neutralization (VN) test. Subsequently, we evaluated the seroprevalence of CRCoV in 383 dog serum samples collected from South Korea utilizing the HI test. The HI test for CRCoV showed a strong correlation with the VN test (R = 0.83, p < 0.001). The analysis of seroprevalence revealed that 52.2% (95% confidence interval [CI], 47.2%-57.1%) of the Korean dog serum samples were positive. The seroprevalence exhibited varied with age, with a positivity rate of 43.9% in dogs under 1 year of age and 66.7% in dogs aged 3 to 5 years (odds ratio, 2.54; 95% CI, 1.43-4.59). In conclusion, the HI test to monitor CRCoV antibody proved to be closely related to the VN test. Furthermore, over half of the dogs in Korea tested positive for CRCoV antibodies. These findings contribute to a better understanding of the sero-epidemiology of CRCoV.
A screening method has been developed for detecting sulfamethazine(SMZ) contamination of meat or feeds by using horseradish peroxidase (HRP) labeled protein A (Prot AHRP)and an indirect competitve enzyme-linked immunosorbent assay(ELISA). The assay is based on competitve binding of guinea pig anti-SMZ with SMZ in smaple and SMZ-gelatin conjugate(SMZ.GEL). Percent binding (B.Bo$\times$100) was calculated from the absorbance in the absence (B0) and presence (B) of SMZ. By the sandard curve prepared by plotting log(SMZ) vs percent binding of each known reference solution, the detection limit was 1.0ppb or less. Cross reacton with sulfadimethoxine, sulfaguaniding, sulfamerazine, sulfamthoxpyridazine, sulfanilamide, sulfisomidine and sufisoxazole were not observed. But sulfamerazine crossreacted in the test. The EC-50 value (concentration causing 50% inhibition of color development compared with blank) of sulfamerazine was 2.0 ppm. Further quality control will make the ELISA system ideal for the detection of SMZ in meat or feeds.
연어과 어류의 이상유영 원인 바이러스 RVS의 ELISA법에 의한 신속 진단 방법을 개발하였다. 주화세포를 이용한 바이러스 배양액 및 감염 무지개송어의 뇌조직 마쇄액을 사용하여 실험하였다. 바이러스 배양액을 이용한 ELISA법의 검출 감도 조사에서 최소 바이러스 감염가 검출 한계치는 $10^{2.6}$$TCID_{50}/100{\mu}l$ 이었다. 또한, 인공감염어의 뇌조직 마쇄액 내의 RVS 항원도 검출 되었다. 본 방법은 현장에서의 RVS 감염어 조사에 효과적으로 사용되어질 수 있는 방법으로 생각 되어진다.
Rabies virus (RABV)-specific antibodies in animals and humans are measured using standard methods such as fluorescent antibody virus neutralization (FAVN) tests and rapid fluorescent focus inhibition tests, which are based on cell culture systems. An alternative assay that is safe and easy to perform is required for rapid sero-surveillance following mass vaccination of animals. Two purified monoclonal antibodies (4G36 and B2H17) against RABV were selected as capture and detection antibodies, respectively. A genetically modified RABV, the ERAGS strain, was propagated and concentrated by polyethylene glycol precipitation. Optimal conditions for the RABV antigen, antibodies, and serum dilution for a blocking enzymelinked immune sorbent assay (B-ELISA) were established. We evaluated the sensitivity, specificity, and accuracy of the B-ELISA using serum samples from 138 dogs, 71 raccoon dogs, and 25 cats. The B-ELISA showed a diagnostic sensitivity of 95.8-96.3%, specificity of 91.3-100%, and accuracy of 96.0-97.2% compared to the FAVN test. These results suggest that the B-ELISA is useful for sero-surveillance of RABV in dogs, raccoon dogs, and cats.
Japanese encephalitis (JE) is an important zoonosis caused by the mosquito-transmitted JE virus (JEV), which is a causative agent of reproductive failure in pregnant sows. Detection of JEV antibodies in swine is performed by hemagglutination inhibition (HI), virus neutralization (VN), and the plaque reduction neutralization test (PRNT). The most stringent PRNT is the 90% endpoint PRNT ($PRNT_{90}$). These conventional assays are difficult to carry out in diagnostic laboratories with insufficient instruments or cell culture systems. An alternative assay that is easily conducted and time efficient is required. In this study, we improved the indirect enzyme-linked immunosorbent assay (I-ELISA) with clarified antigen for the detection of JEV antibodies. The I-ELISA results obtained from 175 swine serum samples were compared with HI, VN, and $PRNT_{90}$ results. The sensitivity of I-ELISA was 91.8%, 95.0%, and 94.7% compared with HI, VN, and $PRNT_{90}$ results, respectively. The specificity of I-ELISA was 92.2%, 94.7%, and 94.7% compared with HI, VN, and $PRNT_{90}$ results, respectively. Moreover, the I-ELISA results were significantly correlated with the HI (r = 0.93), VN (r = 0.95), and $PRNT_{90}$ (r = 0.92) results. These results suggest that the improved I-ELISA is useful for serosurveillance of JEV in swine.
간흡충 특이 단세포군항체인 CsHyb 0605-23과 반응하는 간흡충 항원의 특성을 밝히기 위하여 간흡충의 성충 조항원을 당지질 당질 단백으로 각각 분리한 후 각각 항원으로 사용하여 단세포 군항체와 효소떤역흡착검사법을 실시하였다. 그 결과. 오직 당질분획만이 단세포군항체와 반응하였다. 당질항원을 sodiumperiodate를 사용하여 약하게 산화시키자 단세포군항체와의 반응도가 떨어졌다. 따라서 이 단세포군항체에 반응하는 간흡충의 항원 및 항원결정기는 당질로 생각된다.
Chymotrypsin, trypsin, pancreatin, 그리고 Aspergillus oryzae 유래 단백질분해효소의 in vitro처리에 의하여 유청단백질(WPI)의 가수분해물(WPH)중 ${\alpha}-LA$ 유래의 항원성변화를 조사하기 위하여 토끼 항 ${\alpha}-LA$ 항혈청을 이용한 competitive inhibition ELISA(cELISA)와 heterologous PCA를 실시하였다. cELISA에 의하여 WPH의 monovalent항원성을 분석한 결과, pepsin전처리는 chymotrypsin, trypsin 그러고 pancreatin 가수분해물의 항원성을 더욱 감소시키는 효과가 있었으며, 열 전처리는 Asp. oryzae 유래효소 및 trypsin 가수분해물의 항원성을 더욱 감소시켰다 전체적으로 ${\alpha}-LA$유래의 monovalent 항원성은 효소처리에 의하여 $10^{-2.5}-10^{-5.5}$배 또는 그 이하로 저하되었으며, 특히 열 및 pepsin 전처리후 trypsin으로 가수분해한 경우(TDP)의 항원성은 거의 상실되었다. WPH의 가수분해도와 ${\alpha}-LA$유래의 monovalent 항원성 감소는 그다지 일치하지 않았다. Guinea pig를 이용한 PCA test에 의하여 ${\alpha}-LA$유래의 polyvalent 항원성을 분석한 결과 WPI 및 ${\alpha}-LA$는 양성으로 높게 나타났으나, WPH는 전처리유무에 관계없이 모두 음성으로 나타났다. 이는 WPI의 가수분해로 생성된 ${\alpha}-LA$유래의 peptide가 특이항체와 결합은 가능하나 생체내에서 알레르기를 유발하지 않음을 뜻하였다. 따라서, 유청단백질을 효소로 가수분해하면 유청단백질중 ${\alpha}-LA$의 allergenicity는 쉬 파괴됨을 알 수 있었다.
세계적으로 가장 출현빈도가 높은 혈청형인 마사추셋형 IBV를 발육란에서 증식시킨 다음 요막강액을 채취, 바이러스를 농축 정제하여 항원으로 사용하고 야외 IBV감염계군에서 채취한 혈청중 HI반응에 의해 양성 및 음성혈청을 선발, 표준혈청으로 사용하여 ELISA를 시도한 결과 다음과 같은 성적을 얻었다. 1. 정제항원은 ELISA plate의 well당 40ng 단백량으로 coating하였을 때 높은 P/N치를 나타냈고 혈구응집항원은 well당 1.2~2.5 HA unit로 coating하였을 때 정제항원과 유사한 결과를 보였다. 2. 항원의 coating시 온도와 시간은 37$^{\circ}C$, 1시간이나 4$^{\circ}C$에 12~16시간 처리하였을 때 P/N에서 유의성 있는 차이를 보이지 않았으며 항원을 건조시켜 4$^{\circ}C$에 1개월 보관하여도 항원성의 변화를 인정할 수 없었다. 3 제품이 다른 3종류의 plate에서 항원 coating의 차이를 비교한 결과 제품간에 항원 coating의 균일도와 농도에 있어서 뚜렷한 차이가 인정되었다. 4. 음성혈청희석배수 1:50에서도 비특이 반응은 인정되지 않았으며 가경혈청은 1:100희석했을 때 높은 P/N치를 보여서 screen용 희석배수로 적당하였다. 5. Substrate처리한 후 발색 정도는 15분 이후에는 일정하여 30분까지 변화가 없었으며 이때 발색정지제를 처리하였을 때 치리직후부터 4시간까지도 흡광도에 있어서 유의성 있는 차이가 인정되지 않았다. 6. 74개의 혈청에 대해 ELISA에 의한 P/N치와 HI항체가와의 상관관계는 r=0.42였으며 HI가 2$^{6}$이상, P/N치 1.4이상을 기준으로 하였을 때 양성 case의 일치율은 98.7%였다. 1. 백신접종 시험계군에서 ELISA와 HI test에 의한 항체 소장 비교에서는 10주째를 제외하고는 양 test에서 유사한 추이를 보였다.
A model system for the immnunochemical detection of Escherichia coli O157:H7 using a combined immunomagnetic separation (IMS) and test-strip liposome immunoassay (LIA) procedure was developed. Immunomagnetic beads coated with anti-E. coli O157 IgG antibodies were used to separate the E. coli O157 (including the H7 serotype) from culture. Immunoliposomes, whose surface was conjugated to goat anti-E. coli O157:H7 IgG and which encapsulated the marker dye, sulforhodamine B, were used as a detection label. The test strip, onto which antibodies to goat IgG were immobilized, was the immunosensor capturing immunoliposomes that did not bind to E. coli O157:H7 on the immunomagnetic bead-E. coli O157:H7 complexes. In experiments, pure cell culture suspensions of $10^5 E.$ coli O157:H7 organisms per ml produced a measurable signal inhibition, whereas a weak yet detectable signal inhibition occurred with $10^3CFU/ml$. The inhibition signals increased, when the incubation time for IMS was extended to 90 min and higher IgG-tag density (0.4mol%) was used on the liposomes. With 0.2 and 0.4mol% IgG-tagged liposomes, the IMS-LIA procedure showed more improved signal inhibitions than those of a direct (no IMS) LIA. The combined assay, which measures the instantaneous signal from immunoliposomes, can be completed within 90 min, making it significantly faster than conventional plating methods and enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA). Accordingly, it is quite feasible to use the combined immunoassay format of IMS and dye-loaded immunoliposomes for the detection of E. coli O157:H7.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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