Chun, Jung Nyeo;Song, In Sung;Kang, Dong-Hoon;Song, Hye Jin;Kim, Hye In;Suh, Ja Won;Lee, Kong Ju;Kim, Jaesang;Won, Sang
Molecules and Cells
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v.26
no.2
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pp.175-180
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2008
$I{\kappa}B$ kinase (IKK), the pivotal kinase in signal-dependent activation of nuclear factor-${\kappa}B$ (NF-${\kappa}B$), is composed of multiple protein components, including IKK ${\alpha}/{\beta}/{\gamma}$ core subunits. To investigate the regulation of the IKK complex, we immunoaffinity purified the IKK complex, and by MALDI-TOF mass spectrometry identified a splice variant of zinc finger protein 268 (ZNF268) as a novel IKKinteracting protein. Both the full-length and the spliced form of the ZNF268 protein were detected in a variety of mammalian tissues and cell lines. The genes were cloned and expressed by in vitro transcription/translation. Several deletion derivatives, such as KRAB domain (KRAB) on its own, the KRAB/spacer/4-zinc fingers (zF4), and the spacer/4-zinc fingers (zS4), were ectopically expressed in mammalian cells and exhibited had different subcellular locations. The KRAB-containing mutants were restricted to the nucleus, while zS4 was localized in the cytosol. TNF-${\alpha}$-induced NF-${\kappa}B$ activation was examined using these mutants and only zS4 was found to stimulate activation. Collectively, the results indicate that a spliced form of ZNF268 lacking the KRAB domain is located in the cytosol, where it seems to play a role in TNF-${\alpha}$-induced NF-${\kappa}B$ activation by interacting with the IKK complex.
Kim, Hye-Kyung;Lee, Sang-Kyu;Han, Mu-Ho;Jeon, Yong-Hee;Lee, Gi-Hwan;Lee, Youn-Hyung;Bhoo, Seong-Hee;Hahn, Tae-Ryong;Jeon, Jong-Seong
Applied Biological Chemistry
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v.48
no.4
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pp.339-344
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2005
Rice blast, which is caused by the fungus Magnaporthe grisea, is one of the most destructive diseases of rice. To identify genes involving in the signal transduction pathways that mediate rice blast resistance, we screened over 2,000 mutant lines of a highly resistant variety RIL260 that were generated by using a DEB (1, 3-Butadiene diepoxide) treatment method. In the mutant population, the frequency of albino plants was 6.7%, indicating that this population has a high frequency of mutations in the genome. The primary screening identified 29 mutant plants that exhibit a complete or partial loss of the resistance to rice blast. Among them, M5465, the most susceptible line, was subsequently examined by DNA gel-blot experiments using DNA molecular markers of Pi5(t) that has been previously identified as a durable resistance locus in RIL260. The result revealed that a large deletion and rearrangement of genomic DNA occurred in the Pi5(t) locus. The results suggest that DEB can be used as an efficient mutagen to induce large scale mutations in the rice genome. The isolated mutants should be useful for elucidating the Pi5(t)-mediated signaling pathways of rice blast resistance.
When a homothallic ascomycete Aspergillus nidulans is exposed to visible light, cleistothecial development is inhibited. The light response of development in A. nidulans implies the existence of delicate regulation process including reception and translocation of light signaling and determination of development. Previously, mutants that could develop cleistothecia even in the presence of relatively intensive visible light were isolated and several complementation groups were identified. A gene that was able to complement the silA98 mutation, which was responsible for preferred cleistothecia development under visible light, was isolated from AMA-NotI genomic library. The silA gene retained in the 4.3 kb recovered genomic library DNA has an open reading frame (ORF) consisted of 2,388 bp nucleotides, interrupted by 3 introns and consequently encoding 795 amino acids. The putative SilA carries a ${Zn_2}{Cys_6}$ binuclear cluster motif at N terminus and shows high amino acid sequence similarity to Aro80p of Saccharomyces cerevisiae. Deletion mutants of silA showed a strong induction of sexual development under visible light, indicating that SilA is involved in the negative regulation of sexual development in response to the light.
In filamentous fungi, velvet complex associated with the veA gene plays pivotal roles in development and secondary metabolism. In a model fungus Aspergillus nidulans, many proteins that can interact with VeA, including two methyltransferases VipB and VipC, have been isolated and characterized. In this study, we isolated homologs of the vipB and vipC genes in the human opportunistic pathogenic fungus Aspergillus fumigatus and named AfuvipB and AfuvipC. The AfuvipB gene, annotated as Afu3g14920 in the Aspergillus Genome Database (AspGD) database, consists of 1,510 bp interrupted with 10 introns yielding 336 amino acid-long putative methyltransferase protein. Similarly, AfuvipC, which is Afu8g01930, has 10 introns and encodes a polypeptide with 339 amino acids having a methyltransferase domain in the middle of the protein. To characterize the function of the genes in A. fumigatus, knock-out mutants were generated and the phenotypes were observed. Deletion of AfuvipB gene caused no obvious phenotypic change on point inoculation but showed smaller colony than wild-type when the mutant was subjected to culture on single spore-driven culture condition. However, AfuvipC deletion mutant demonstrated no phenotypic difference from wild type both in point inoculation and streaking cultures. These results indicate that the two methyltransfereases might have a redundant role and could be dispensable in normal culture conditions.
Kim, Yong-hwan;Kim, Sang-hyun;Cha, In-ho;Kim, Kyoung-shook;Lee, Young-choon
Korean Journal of Veterinary Research
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v.37
no.3
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pp.541-546
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1997
There are two conserved regions with a significantly high amino acid sequence homology among the A subunits of STX, SLTs and ricin. To produce an inactive Verotoxin-2 (VT-2), two different mutants, pE167D and pDE5A, were constructed by site-directed mutagenesis, respectively, on the basis of the previous reports that two regions lie within the active-site clefts of the A subunits of ricin and STX family. The cytotoxicity ($10^3$$CD_{50}/ml$) of VT-2 holotoxin with E167D mutation was reduced by $10^3$-fold compared with wild-type level. In addition, VT-2 with DE5A ($Trp_{202}GlyArgIleSer_{206}$) deletion mutation showed a significantly low cytotoxicity ($10^1$$CD_{50}/ml$), resulting in $10^5$- and $10^2$-fold reductions, respectively, compared with the wild-type and E167D mutatant. SDS-PAGE for protein samples showed a 33-kDa band corresponding to the A subunit of VT-2. These results indicate that reduction in cytotoxic activity was affected not by amount of VT-2 protein produced but by mutation.
KO mice provide an excellent tool to determine roles of specific genes in biomedical filed. Traditionally, knockout mice were generated by homologous recombination in embryonic stem cells. Recently, engineered nucleases, such as zinc finger nuclease, transcription activator-like effector nuclease and clustered regularly interspaced short palindromic repeats (CRISPR), were used to produce knockout mice. This new technology is useful because of high efficiency and ability to generate biallelic mutation in founder mice. Until now, most of knockout mice produced using engineered nucleases were C57BL/6 strain. In the present study we used CRISPR-Cas9 system to generate knockout mice in FVB strain. We designed and synthesized single guide RNA (sgRNA) of CRISPR system for targeting gene, Abtb2. Mouse zygote were obtained from superovulated FVB female mice at 8-10 weeks of age. The sgRNA was injected into pronuclear of the mouse zygote with recombinant Cas9 protein. The microinjected zygotes were cultured for an additional day and only cleaved embryos were selected. The selected embryos were surgically transferred to oviduct of surrogate mother and offsprings were obtained. Genomic DNA were isolated from the offsprings and the target sequence was amplified using PCR. In T7E1 assay, 46.7% among the offsprings were founded as mutants. The PCR products were purified and sequences were analyzed. Most of the mutations were founded as deletion of few sequences at the target site, however, not identical among the each offspring. In conclusion, we found that CRISPR system is very efficient to generate knockout mice in FVB strain.
The coding sequence of hepatitis B viral core antigen (HBcAg) (subtype adr) contains two in-phase initiation codons, one for precore and the other for core antigen gene. To study the expression of core antigen and the role of precore region, the coding sequence of HBcAg with or without precore (pre-C) region were subcloned into yeast expression vector containing phosphoglycerate kinase (PGK) promoter. To study the role of upstream region in the expression of the core antigen, a series of 5' deletion mutants were also subcloned into the vector. After transformation into various host strains, the expression of HBcAg were analysed by radio-immunoassat. Under optimal condition of core antigen gene expression in yeast, the highest amount of antigen was detected in the cell line SHY4 containing pGKHBc plasmid composed of the yeast PGK gene promoter, terminator and C-gene. Regardless of the presence of precore region, core antigen was not detected in the medium but in cell extract. These results suggest that precore region cannot affect the secretion of core antigen in Saccharomyces cerevisiae.
We examined the intracellular localization of NS5 protein of Dendrolimus punctatus cytoplasmic polyhedrosis virus (DpCPV) by expressing NS5-GFP fusion protein and proteins from deletion mutants of NS5 in baculovirus recombinant infected insect Spodoptera frugiperda (Sf-9) cells. It was found that the NS5 protein was present at the plasma membrane of the cells, and that the N-terminal portion of the protein played a key role in the localization. A transmembrane region was identified to be present in the N-terminal portion of the protein, and the detailed transmembrane domain (SQIHMVWVKSGLVFF, 57-71aa) of N-terminal portion of NS5 was further determined, which was accorded with the predicted results, these findings suggested that NS5 might have an important function in viral life cycle.
An esterase gene, estA1, was cloned from Alteromonas sp. 39-G1 isolated from the Beaufort Sea. The gene is composed of 1,140 nucleotides and codes for a 41,190 Da protein containing 379 amino acids. As a result of a BLAST search, the protein sequence of esterase EstA1 was found to be identical to Alteromonas sp. esterase (GenBank: PHS53692). As far as we know, no research on this enzyme has yet been conducted. Phylogenetic analysis showed that esterase EstA1 was a member of the bacterial lipolytic enzyme family IV (hormone sensitive lipases). Two deletion mutants (Δ20 and Δ54) of the esterase EstA1 were produced in Escherichia coli BL21 (DE3) cells with part of the N-terminal of the protein removed and His-tag attached to the C-terminal. These enzymes exhibited the highest activity toward p-nitrophenyl (pNP) acetate (C2) and had little or no activity towards pNP-esters with acyl chains longer than C6. Their optimum temperature and pH of the catalytic activity were 45℃ and pH 8.0, respectively. As the NaCl concentration increased, their enzyme activities continued to increase and the highest enzyme activities were measured in 5 M NaCl. These enzymes were found to be stable for up to 8 h in the concentration of 3-5 M NaCl. Moreover, they have been found to be stable for various metal ions, detergents and organic solvents. These salt-tolerant and chemical-resistant properties suggest that the enzyme esterase EstA1 is both academically and industrially useful.
Kim, Ho-Sang;Lee, Jae-Kwon;Yang, In-Ho;Ahn, Jeong-Keun;Oh, Yoon-I;Kim, Chul-Joong;Kim, Young-Sang;Lee, Chong-Kil
Archives of Pharmacal Research
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v.25
no.3
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pp.364-369
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2002
Hepatitis C virus (HCV) is remarkably efficient at establishing chronic infection. One of the reasons for this appears to be the suppression of the accessory cell function of professional antigen presenting cells. In the present study, the immunosuppressive activity of HCV protein was examined on dendritic cells (DCs) generated from mouse bone marrow progenitor cells in vitro. We found that the DCs forced to express HCV protein have defective allostimulatory ability. DCs expressing HCV protein were phenotypically indistinguishable from normal DCs. However, they were unable to produce IL-12 effectively when stimulated with lipopolysaccharide. The functional domain of the HCV protein essential for immunosuppression was determined using a series of ${NH_2}-and$ C-terminal deletion mutants of HCV core protein. We found that amino acid residues residing between the 21 st and the 40th residues from the ${NH_2}-terminus$ of HCV core protein are required for immunosuppression. These findings suggest that HCV core protein suppresses the elicitation of protective Th1 responses by the inhibition of IL-12 production by DCs.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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