Defects in DNA double-strand break (DSB) repair signaling permit cancer cells to accumulate genomic alterations that confer their aggressive phenotype. Nevertheless, tumors depend on residual DNA repair abilities to survive the DNA damage induced by genotoxic stress. This is why only isolated DNA repair signaling is inactivated in cancer cells. DNA DSB repair signaling contributes to general mechanism for various types of lesions in diverse cell cycle phases. DNA DSB repair genes are frequently mutated and amplified in cancer; however, limited data exist regarding the overall genomic prospect and functional result of these modifications. We list the DNA repair genes and related E3 ligases. Mutation and expression frequencies of these genes were analyzed in COSMIC and TCGA. The 11 genes with a high frequency of mutation differed between cancers, and mutations in many DNA DSB repair E3 ligase genes were related to a higher total mutation burden. DNA DSB repair E3 ligase genes are involved in tumor suppressive or oncogenic functions, such as RNF168 and FBXW7, by assisting the functionality of these genomic alterations. DNA damage response-related E3 ligases, such as RNF168, FBXW7, and HERC2, were generated with more than 10% mutation in several cancer cells. This study provides a broad list of candidate genes as potential biomarkers for genomic instability and novel therapeutic targets in cancer. As a DSB related proteins considerably appear the possibilities for targeting DNA repair defective tumors or hyperactive DNA repair tumors. Based on recent research, we describe the relationship between unstable DSB repairs and DSB-related E3 ligases.
Background: Previous studies have suggested that Morinda citrifolia (Noni) has potential to reduce cancer risk. Objective: The purpose of this study was to investigate the effect of Noni, cisplatin, and their combination on DNA repair genes in the SiHa cervical cancer cell line. Materials and Methods: SiHa cells were cultured and treated with 10% Noni, $10{\mu}g/dl$ cisplatin or their combination for 24 hours. Post culturing, the cells were pelleted, RNA extracted, and processed for investigating DNA repair genes by real time PCR. Results: The expression of nucleotide excision repair genes ERCC1, ERCC2, and ERCC4 and base excision repair gene XRCC1 was increased 4 fold, 8.9 fold, 4 fold, and 5.5 fold, respectively, on treatment with Noni as compared to untreated controls (p<0.05). In contrast, expression was found to be decreased 22 fold, 13 fold, 16 fold, and 23 fold on treatment with cisplatin (p<0.05). However, the combination of Noni and cisplatin led to an increase of 2 fold, 1.6 fold, 3 fold, 1.2 fold, respectively (p<0.05). Conclusions: Noni enhanced the expression of DNA repair genes by itself and in combination with cisplatin. However, high expression of DNA repair genes at mRNA level only signifies efficient DNA transcription of the above mentioned genes; further investigations are needed to evaluate the DNA repair protein expression.
DNA repair means a collection of processes that a cell identifies and corrects damage to genome sequence. The DNA repair processes are important because a genome would not be able to maintain its essential cellular functions without the processes. In this research, we make some gene regulatory networks of DNA repair in S. cerevisiae to know how each gene interacts with others. Two approaches are adapted to make the networks; Bayesian Network and ARACNE. After construction of gene regulatory networks based on the two approaches, the two networks are compared to each other to predict which genes have important roles in the DNA repair processes by finding conserved interactions and looking for hubs. In addition, each interaction between genes in the networks is validated with interaction information in S. cerevisiae genome database to support the meaning of predicted interactions in the networks.
Journal of the Korean Association of Oral and Maxillofacial Surgeons
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v.34
no.5
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pp.509-517
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2008
DNA damage accumulates in cells as a result of exposure to exogenous agents such as benzopyrene, cigarette smoke, ultraviolet light, X-ray, and endogenous chemicals including reactive oxygen species produced from normal metabolic byproducts. DNA damage can also occur during aberrant DNA processing reactions such as DNA replication, recombination, and repair. The major of DNA damage affects the primary structure of the double helix; that is, the bases are chemically modified. These modification can disrupt the molecules'regular helical structure by introducing non-native chemical bonds or bulky adducts that do not fit in the standard double helix. DNA repair genes and proteins scan the global genome to detect and remove DNA damage and damage to single nucleotides. Direct reversal of DNA damage, base excision repair, double strand break. DNA repair are known relevant DNA repair mechanisms. Four different mechanisms are distinguished within excision repair: direct reversal, base excision repair, nucleotide excision repair, and mismatch repair. Genetic variation in DNA repair genes can modulate DNA repair capacity and alter cancer risk. The instability of a cell to properly regulate its proliferation in the presence of DNA damage increase risk of gene mutation and carcinogenesis. This article aimed to review mechanism of excision repair and to understand the relationship between genetic variation of excision repair genes and head and neck cancer.
Proceedings of the Microbiological Society of Korea Conference
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2004.05a
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pp.47-50
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2004
The defenses against free radical damage include specialized repair enzymes that correct oxidative damages in DNA, and detoxification systems such as superoxide dismutases. These defenses may be coordinated genetically as global responses. We hypothesized that the expression of the SOD and the DNA repair genes would inhibit DNA damage under oxidative stress. Therefore, the protection of E. coli mutants deficient in SOD and DNA repair genes $(sod^-\;xth^-\;and\;nfo^-)$ was demonstrated by transforming the mutant strain with a plasmid pYK9 which encoded Photobacterium leiognathi CuZnSOD and human AP endonuclease. The results show that survival rates were increased in $sod^+\;xth^-\;nfo^+$ cells compared to $sod^-\;xth^-\;ap^+,\;sod^-\;xth^-\;ap^-,\;and\;sod^+\;xth^-\;ap^-$ cells under oxidative stress generated from 0.1 mM Paraquat or 3 mM $H_2O_2$. The data suggested that, at least, SOD and DNA repair enzymes may have collaborate protection and repair of the damaged DNA. Additionally, both enzymes are required for protection against free radicals.
Lin, Tao;Sun, Ling;Lee, Jae Eun;Kim, So Yeon;Jin, Dong Il
Journal of Animal Science and Technology
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v.63
no.5
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pp.984-997
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2021
This study sought to evaluate DNA damage and repair in porcine postovulatory aged oocytes. The DNA damage response, which was assessed by H2A.X expression, increased in porcine aged oocytes over time. However, the aged oocytes exhibited a significant decrease in the expression of RAD51, which reflects the DNA damage repair capacity. Further experiments suggested that the DNA repair ability was suppressed by the downregulation of genes involved in the homologous recombination (HR) and nonhomologous end-joining (NHEJ) pathways. The expression levels of the cell cycle checkpoint genes, CHEK1 and CHEK2, were upregulated in porcine aged oocytes in response to induced DNA damage. Immunofluorescence results revealed that the expression level of H3K79me2 was significantly lower in porcine aged oocytes than in control oocytes. In addition, embryo quality was significantly reduced in aged oocytes, as assessed by measuring the cell proliferation capacity. Our results provide evidence that DNA damage is increased and the DNA repair ability is suppressed in porcine aged oocytes. These findings increase our understanding of the events that occur during postovulatory oocyte aging.
The regulation of DNA repair genes expression was investigated using fused genes, in which the promoter of repair genes was hybridized with the lacZ structural gene. The activities of beta-galactosidase expressed from the fused gense were highly increased when the host cells were exposed to methylating agents, such as methyl methansulfonate (MMS), N-methyl-N'-nitro-nitrosoguanidine (MNNG) and methyl nitrosourea (MNU). On the other hand, the enzyme activities from the fused genes were not induced when the cells were treated with ethylating or nonalkylating agents, such as ethyl methansulfonate (EMS), 4-nitroquinoline-1-oxide (4NQO), Bleomycin, and Benzo(a)pyrene (BP).
Kim, Seung-Yeon;Kim, Ga-Yeon;You, Hyeong-Ju;Kang, Man-Jong
Animal Bioscience
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v.35
no.1
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pp.126-137
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2022
Objective: Efficient gene editing technology is critical for successful knock-in in domestic animals. RAD51 recombinase (RAD51) gene plays an important role in strand invasion during homologous recombination (HR) in mammals, and is regulated by checkpoint kinase 1 (CHK1) and CHK2 genes, which are upstream elements of RAD51 recombinase (RAD51). In addition, mismatch repair (MMR) system is inextricably linked to HR-related pathways and regulates HR via heteroduplex rejection. Thus, the aim of this study was to investigate whether clustered regularly interspaced short palindromic repeats/CRISPR-associated 9 (CRISPR/Cas9)-mediated knock-in efficiency of human lactoferrin (hLF) knock-in vector in the bovine β-casein gene locus can be increased by suppressing DNA MMR-related genes (MSH2, MSH3, MSH6, MLH1, and PMS2) and overexpressing DNA double-strand break (DSB) repair-related genes (RAD51, CHK1, CHK2). Methods: Bovine mammary epithelial (MAC-T) cells were transfected with a knock-in vector, RAD51, CHK1, or CHK2 overexpression vector and CRISPR/sgRNA expression vector to target the bovine β-casein gene locus, followed by treatment of the cells with CdCl2 for 24 hours. After 3 days of CdCl2 treatment, the knock-in efficiency was confirmed by polymerase chain reaction (PCR). The mRNA expression levels of DNA MMR-related and DNA DSB repair-related genes were assessed by quantitative real-time PCR (RT-qPCR). Results: Treatment with CdCl2 decreased the mRNA expression of RAD51 and MMRrelated genes but did not increase the knock-in efficiency in MAC-T cells. Also, the overexpression of DNA DSB repair-related genes in MAC-T cells did not significantly affect the mRNA expression of MMR-related genes and failed to increase the knock-in efficiency. Conclusion: Treatment with CdCl2 inhibited the mRNA levels of RAD51 and DNA MMR-related genes in MAC-T cells. However, the function of MMR pathway in relation to HR may differ in various cell types or species.
Purpose: The purpose of this study was to evaluate the relationship between radiation-induced activation of DNA repair genes and radiation induced apoptosis in A431 cell line. Materials and Methods: Five and 25 Gys of gamma radiation were given to A431 cells by a Cs-137 cell irradiator. Apoptosis was evaluated by flow cytometry using annexin V-fluorescein isothiocyanate and propidium iodide staining. The expression of DNA repair genes was evaluated by both Northern and Western blot analyses. Results: The number of apoptotic cells increased with the increased radiation dose. It increased most significantly at 12 hours after irradiation. Expression of p53, p21, and hRAD50 reached the highest level at 12 hours after 5 Gy irradiation. In response to 25 Gy irradiation, hRAD50 and p21 were expressed maximally at 12 hours, but p53 and GADD45 genes showed the highest expression level after 12 hours. Conclusion: Induction of apoptosis and DNA repair by ionizing radiation were closely correlated. The peak time of inducing apoptosis and DNA repair was 12 hours in this study model. hRAD50, a recently discovered DNA repair gene, was also associated with radiation-induced apoptosis.
In a previous study, a relatively high dose of gamma radiation (1 kGy) did not fully induce typical SOS genes such as sulA, recA, recN, and din in Salmonella Typhimurium (S. Typhimurium) (Lim et al. 2008, Gene expression profiles following high-dose exposure to gamma radiation in Salmonella enterica serovar Typhimuium. J. Radiat. Ind. 3:111-119). In this study, we examined changes in the transcriptional repertoire of S. Typhimurium after a dose of 10 Gy using DNA microarrays. It was found that more than half (~65%) of the 26 up-regulated genes belong to the SOS regulon: ten genes are typical SOS genes, and seven genes are Salmonella prophage genes, which are known to be activated by LexA cleavage. Among 29 down-regulated genes, the function of five genes with the most decreased expression is associated with carbohydrate transport and energy production. This suggests that upon exposure to gamma radiation cells may cease growing by reducing the metabolic activity, and repair DNA damage using a DNA repair system such as the SOS response system. The difference in expression of the SOS genes between a high (1 kGy) and low (10 Gy) dose of radiation shows the possibility that cells may opt for one of multiple regulatory circuits in response to the specific gamma radiation dose.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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