Park, Jeong-Won;Jung, Yong-Won;Jung, Young-Hwan;Seo, Jeong-Sun;Lee, Young-Hoon
Bulletin of the Korean Chemical Society
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v.25
no.11
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pp.1667-1670
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2004
In DNA microarray produced by DNA-deposition technology, DNA-immobilization and -hybridization yields on a solid support are most important factors for its accuracy and sensitivity. We have developed a dendrimeric support using silylated aldehyde slides and polyamidoamine (PAMAM) dendrimers. An oligonucleotide array was prepared through a crosslinking between the dendrimeric support and an oligonucleotide. Both DNAimmobilization and -hybridization yields on the solid support increased by the modification with the dendrimers. The increase of the immobilization and hybridization efficiency seems to result from a threedimensional arrangement of the attached oligonucleotide. Therefore, our dendrimeric support may provide a simple and efficient solution to the preparation of DNA microarrays with high-density DNA-deposition and high hybridization efficiency.
Kim, Min-Seong;Shin, Kyu-Chul;Lee, Hyung-Gu;Han, Myung-Soo;Min, Byung-Re;Choi, Yong-Keel
Korean Journal of Food Science and Technology
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v.35
no.3
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pp.470-474
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2003
DNA sequence information on small-subunit rRNA gene (16S rDNA) obtained from food-poisoning bacterial culture was used to investigate the presence of bacterial pathogens in food. By reverse dot blot detection method, presence of food-poisoning bacteria could be confirmed on hybridization of digoxigenin-labeled 16S rDNA Polymerase Chain Reaction (PCR) primer product and biotin-labeled specific oligonucleotide probe. Escherichia coli, Bacillus cereus. and Salmonella sp. were used as the representative food-poisoning bacterial microorganisms. An oligonucleotide probe, based on the variable region of 16S rRNA gene, was used as the specific probe. These tools may be more useful than classic biochemical method for rapid identification of contaminated food.
Proceedings of the Microbiological Society of Korea Conference
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2002.10a
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pp.22-26
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2002
There are a number of ways in which environmental microbiology and microbial ecology will benefit from DNA micro array technology. These include community genome arrays, SSU rDNA arrays, environmental functional gene arrays, population biology arrays, and there are clearly more different applications of microarray technology that can be applied to relevant problems in environmental microbiology. Two types of the applications, bacterial identification chip and functional gene detection chip, will be presented. For the bacterial identification chip, a new approach employing random genome fragments that eliminates the disadvantages of traditional DNA-DNA hybridization is proposed to identify and type bacteria based on genomic DNA-DNA similarity. Bacterial genomes are fragmented randomly, and representative fragments are spotted on a glass slide and then hybridized to test genomes. Resulting hybridization profiles are used in statistical procedures to identify test strains. Second, the direct binding version of microarray with a different array design and hybridization scheme is proposed to quantify target genes in environmental samples. Reference DNA was employed to normalize variations in spot size and hybridization. The approach for designing quantitative microarrays and the inferred equation from this study provide a simple and convenient way to estimate the target gene concentration from the hybridization signal ratio.
In order to cloning of the nif genes of Enterobacter agglomerans NFB-264, the digested total DNA of the strain was ligated to pBR 322 and transformed into E. coli. Through the negative selection and colony hybridization, the transformants were obtained. The recombinant plasmids, pNEL 10 and pNES 20 were extracted from these transformants. It was known from Southern hybridization that pNEL 10 contained the 12 Mdal foreign DNA fragment hybridized with nif Q-X probe and pNES 20 included the 5 Mdal foreign DNA fragment hybridized with nif NE and nif YK probe.
This research aims to develop DNA chip array without an indicator. We fabricated microelectrode array by photolithography technology. Several DNA probes were immobilized on an electrode. Then, indicator-free target DNA was hybridized by an electrical force and measured electrochemically. Cyclic-voltammograms (CVs) showed a difference between DNA probe and mismatched DNA in an anodic peak. Immobilization of probe DNA and hybridization of target DNA could be confirmed by fluorescent. This indicator-free DNA chip microarray resulted in the sequence-specific detection of the target DNA quantitatively ranging from $10^{-18}\;M\;to\;10^{-5}$ M in the buffer solution. This indicator-free DNA chip resulted in a sequence-specific detection of the target DNA.
We have developed SH (shear horizontal) surface acoustic wave (SAW) sensors for detection of the immobilization and hybridization of DNA (deoxyribonucleic acid) on the gold coated delay line of transverse SAW devices. The experiments of DNA immobilization and hybridization were performed with 15-mer oligonucleotides (probe and complementary target DNA). The sensor consists of twin SAW delay line oscillators operating at 100 MHz fabricated on $36^{\circ}$ rotated Y-cut $LiTaO_3$ piezoelectric single crystals. The relative change in the frequency of the two oscillators was monitored to detect the hybridization between target DNA and immobilized probe DNA in pH 7.4 PBS (phosphate buffered saline) solution. The measurement results showed a good response of the sensor to the mass loading effects of the DNA immobilization and hybridization with the sensitivity up to $1.55{\cal}ng/{\cal}ml/Hz$.
Objectives The present study was designed to systematically characterize the denaturation and the renaturation of double stranded DNA (dsDNA), which is suitable for DNA hybridization. Methods A series of physical and chemical denaturation methods were implemented on well-defined 86-bp dsDNA fragment. The degree of each denaturation was measured and the most suitable denaturation method was determined. DNA renaturation tendency was also investigated for the suggested denaturation method. Results Heating, beads mill, and sonication bath did not show any denaturation for 30 minutes. However probe sonication fully denatured DNA in 5 minutes. 1 mol/L sodium hydroxide (alkaline treatment) and 60% dimethyl sulfoxide (DMSO) treatment fully denatured DNA in 2-5 minutes. Conclusions Among all the physical methods applied, the direct probe sonication was the most effective way to denature the DNA fragments. Among chemical methods, 60% DMSO was the most adequate denaturation method since it does not cause full renaturation during DNA hybridization.
DNA computing based DNA sequence Is operated through the biology experiment. Biology experiment used as operator causes illegal reactions through shifted hybridization, mismatched hybridization, undesired hybridization of the DNA sequence. So, it is essential to design DNA sequence to minimize the potential errors. This paper proposes method of the DNA sequence generation based evolutionary operation processor. Genetic algorithm was used for evolutionary operation and extra hardware, namely genetic algorithm processor was implemented for solving repeated evolutionary process that causes much computation time. To show efficiency of the Proposed processor, excellent result is confirmed by comparing between fitness of the DNA sequence formed randomly and DNA sequence formed by genetic algorithm processor. Proposed genetic algorithm processor can reduce the time and expense for preparing DNA sequence that is essential in DNA computing. Also it can apply design of the oligomer for development of the DNA chip or oligo chip.
Proceedings of the Korean Institute of Electrical and Electronic Material Engineers Conference
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2006.06a
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pp.410-411
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2006
High throughput analysis using a DNA chip microarray is powerful tool in the post genome era. Less labor-intensive and lower cost-performance is required. Thus, this paper aims to develop the multi-channel type label-free DNA chip and detect SNP (Single nucleotide polymorphisms). At first, we fabricated a high integrated type DNA chip array by lithography technology. Various probe DNAs were immobilized on the microelectrode array. We succeeded to discriminate of DNA hybridization between target DNA and mismatched DNA on microarray after immobilization of a various probe DNA and hybridization of label-free target DNA on. the electrodes simultaneously. This method is based on redox of an electrochemical ligand.
E. coli has long been widely used as a host system for the manufacture of recombinant proteins intended for human therapeutic use. When considering the impurities to be eliminated during the downstream process, residual host cell DNA is a major safety concern. The presence of residual E. coli host cell DNA in the final products is typically determined using a conventional slot blot hybridization assay or total DNA Threshold assay. However, both the former and latter methods are time consuming, expensive, and relatively insensitive. This study thus attempted to develop a more sensitive real-time PCR assay for the specific detection of residual E. coli DNA. This novel method was then compared with the slot blot hybridization assay and total DNA Threshold assay in order to determine its effectiveness and overall capabilities. The novel approach involved the selection of a specific primer pair for amplification of the E. coli 16S rRNA gene in an effort to improve sensitivity, whereas the E. coli host cell DNA quantification took place through the use of SYBR Green I. The detection limit of the real-time PCR assay, under these optimized conditions, was calculated to be 0.042 pg genomic DNA, which was much higher than those of both the slot blot hybridization assay and total DNA Threshold assay, where the detection limits were 2.42 and 3.73 pg genomic DNA, respectively. Hence, the real-time PCR assay can be said to be more reproducible, more accurate, and more precise than either the slot blot hybridization assay or total DNA Threshold assay. The real-time PCR assay may thus be a promising new tool for the quantitative detection and clearance validation of residual E. coli host cell DNA during the manufacturingprocess for recombinant therapeutics.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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