In this study, a novel member of BTB-kelch proteins, named KBTBD7, was cloned from a human embryonic heart cDNA library. The cDNA of KBTBD7 is 3,008 bp long and encodes a protein product of 684 amino acids (77.2 kD). This protein is highly conserved in evolution across different species. Western blot analysis indicates that a 77 kD protein specific for KBTBD7 is wildly expressed in all embryonic tissues examined. In COS-7 cells, KBTBD7 proteins are localized to the cytoplasm. KBTBD7 is a transcription activator when fused to GAL4 DNA-binding domain. Deletion analysis indicates that the BTB domain and kelch repeat motif are main regions for transcriptional activation. Overexpression of KBTBD7 in MCF-7 cells activates the transcriptional activities of activator protein-1 (AP-1) and serum response element (SRE), which can be relieved by siRNA. These results suggest that KBTBD7 proteins may act as a new transcriptional activator in mitogen-activated protein kinase (MAPK) signaling.
Background: Peste des petits ruminants (PPR) is an infectious disease caused by the peste des petits ruminants virus (PPRV) that mainly produces respiratory symptoms in affected animals, resulting in great losses in the world's agriculture industry every year. Single-domain variable heavy chain (VHH) antibody fragments, also referred to as nanobodies, have high expression yields and other advantages including ease of purification and high solubility. Objectives: The purpose of this study is to obtain a single-domain antibody with good reactivity and high specificity against PPRV. Methods: A VHH cDNA library was established by immunizing camels with PPRV vaccine, and the capacity and diversity of the library were examined. Four PPRV VHHs were selected, and the biological activity and antigen-binding capacity of the four VHHs were identified by western blot, indirect immunofluorescence, and enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA) analyses. ELISA was used to identify whether the four VHHs were specific for PPRV, and VHH neutralization tests were carried out. ELISA and western blot analyses were used to identify which PPRV protein was targeted by VHH2. Results: The PPRV cDNA library was constructed successfully. The library capacity was greater than 2.0 × 106 cfu/mL, and the inserted fragment size was approximately 400 bp to 2000 bp. The average length of the cDNA library fragment was about 1000 bp, and the recombination rate was approximately 100%. Four single-domain antibody sequences were selected, and proteins expressed in the supernatant were obtained. The four VHHs were shown to have biological activity, close affinity to PPRV, and no cross-reaction with common sheep diseases. All four VHHs had neutralization activity, and VHH2 was specific to the PPRV M protein. Conclusions: The results of this preliminary research of PPRV VHHs showed that four screened VHH antibodies could be useful in future applications. This study provided new materials for inclusion in PPRV research.
Treatment with anticancer drugs changes the expression of multiple genes related to cell proliferation, migration, and drug resistance. These changes in gene expression may be connected to regulatory networks for each other. This study showed that doxorubicin treatment induces the expression of oncogenic FosB and decreases the expression of oncogenic SETDB1 in A549 and H1299 human lung cancer cells, which are different in tumor suppressor p53 status. However, a small difference was detected in the quantitative expression of those proteins in the two kinds of cells. To examine the potential regulation of SETDB1 and FosB by p53, we predicted putative p53 binding sites on the genomic DNA of SETDB1 and FosB using a TF motif binding search program. These putative p53 binding sites were identified as 18 sites in the promoter regions of SETDB1 and 21 sites in the genomic DNA of FosB. A luciferase assay confirmed that p53 negatively regulated the promoter activities of SETDB1 and FosB. Furthermore, the results of RT-PCR, western blot, qPCR, and immunostaining experiments indicated that the transfection of exogenous p53 decreases the expression of SETDB1 and FosB in H1299 cells. This indicates that p53 negatively regulates the expression of SETDB1 and FosB at the transcriptional level. Collectively, the downregulation of SETDB1 and FosB by p53 may provide functional networks for apoptosis and for the survival of cancer cells during anticancer drug treatment.
Bacteriophage T7 gene 2.5 protein, a single-stranded DNA binding protein, has been implicated in T7 DNA replication, recombination, and repair. Purified gene 2.5 protein has been shown to interact with the phage encoded gene 5 protein (DNA polymerase) and gene 4 proteins (helicase and primase) and stimulates their activities. Genetic analysis of T7 phage defective in gene 2.5 shows that the gene 2.5 protein is essential for T7 DNA replication and growth. T7 phage that contain null mutants of gene 2.5 were constructed by homologous recombination. These mutant phage $(T7\Delta2.5)$ cannot grow in Escherichia coli. After infection of E. coli with $T7\Delta2.5$, host DNA synthesis is shut off, and $T7\Delta2.5$ DNA synthesis is reduced to less than $1\%$ of wild-type phage DNA synthesis (Kim and Richardson, 1993, Proc. Natl. Aca. Sci. USA, 90, 10173-10177). A truncated gene 2.5 protein $(GP2.5-\Delta21C)$ deleted the 21 carboxyl terminal amino acids was constructed by in vitro mutagenesis. $GP2.5-\Delta21C$ cannot substitute for wild-type gene 2.5 protein in vivo; the phage are not viable and exhibit less than $1\%$ of the DNA synthesis observed in wild-type phage-infected cells. $GP2.5-\Delta21C$ has been purified to apparent homogeneity from cells overexpressing its cloned gene. Purified $GP2.5-\Delta21C$ does not physically into「act with T1 gene 4 protein as measured by affinity chromatography and immunoblot analysis. The mutant protein cannot stimulate T7 gene 4 protein activity on RNA-primed DNA synthesis and primer synthesis. These results suggest that C-terminal domain of gene 2.5 protein is essential for protein-protein interactions.
Kim, Hyun-Kyung;Kang, Mi Ae;Kim, Mi-Sook;Shin, Young-Joo;Chi, Sung-Gil;Jeong, Jae-Hoon
Molecules and Cells
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v.41
no.4
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pp.362-372
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2018
High mobility group box 2 (HMGB2) is an abundant, chromatin-associated, non-histone protein involved in transcription, chromatin remodeling, and recombination. Recently, the HMGB2 gene was found to be significantly downregulated during senescence and shown to regulate the expression of senescent-associated secretory proteins. Here, we demonstrate that HMGB2 transcription is repressed by p21 during radiation-induced senescence through the ATM-p53-p21 DNA damage signaling cascade. The loss of p21 abolished the downregulation of HMGB2 caused by ionizing radiation, and the conditional induction of p21 was sufficient to repress the transcription of HMGB2. We also showed that the p21 protein binds to the HMGB2 promoter region, leading to sequestration of RNA polymerase and transcription factors E2F1, Sp1, and p300. In contrast, NF-Y, a CCAAT box-binding protein complex, is required for the expression of HMGB2, but NF-Y binding to the HMGB2 promoter was unaffected by either radiation or p21 induction. A proximity ligation assay results confirmed that the chromosome binding of E2F1 and Sp1 was inhibited by p21 induction. As HMGB2 have been shown to regulate premature senescence by IR, targeting the p21-mediated repression of HMGB2 could be a strategy to overcome the detrimental effects of radiation-induced senescence.
Previously, we identified that the overexpression of IEX-1 induces apoptosis in ovarian cancer cells. Herein we report a new binding partner of IEX-1, CATHEPSIN B, as a lysosomal enzyme which contributes to the various apoptotic signaling in tumor cells. To investigate how IEX-1 regulates cellular survival and death event, we performed yeast two-hybrid screening of rat ovarian cDNA library using IEX-1 as the bait and found CATHEPSIN B. In the present study, CATHEPSIN B and IEX-1 proteins were overexpressed in 293T cells and their specific association was determined by immunoprecipitation and immunoblot analysis. In addition, the endogenous interaction between CATHEPSIN B and IEX-1 was confirmed in HeLa cells. The current finding of lysosomal CATHEPSIN B as the IEX-1-binding partner implies that IEX-1 may involve in lysosome-mediated apoptotic signaling pathways.
To investigate the effect of the third intracellular loop (i3 loop) peptide of human $\beta$$_2$-adrenergic receptor on receptor agonist binding, we expressed third intracellular loop region of human $\beta$$_2$-adrenergic receptor as glutathione S-transferase fusion protein in E. coli. DNA fragment of the receptor gene which encodes amino acid 221-274 of human $\beta$$_2$-adrenergic receptor was amplified by polymerase chain reaction and subcloned into the bacterial fusion protein expression vector pGEX-CS and expressed as a form of glutathione-S-transferase (GST) fusion protein in E. coli DH5$\alpha$. The receptor fusion protein was identified by SDS-PAGE and Western blot using monoclonal anti-GST antibody. The fusion protein expressed in this study was purified to an apparent homogeneity by glutathione Sepharose CL-4B affinity chromatography. The purified i3 loop fusion proteins at a concentration of 10 $\mu\textrm{g}$/ι caused right shift of the isoproterenol competition curve of [$^3$H]Dihydroalprenolol binding to hamster lung $\beta$$_2$-adrenergic receptor indicating lowered affinity of isoproterenol to $\beta$$_2$-adrenergic receptor possibly due to the uncoupling of receptor and G protein in the presence of the fusion protein. The uncoupling of receptor and G protein suggests that i3 loop region plays a critical role on $\beta$$_2$-adrenergic receptor G protein coupling.
Jeong, Young Hee;Lee, Sang Mi;Kim, Hye-Min;Park, Hyo Young;Yoon, Duhak;Moon, Seung Ju;Hosoda, Akemi;Kim, Dong-Ho;Saeki, Shigeru;Kang, Man-Jong
Asian-Australasian Journal of Animal Sciences
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v.21
no.11
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pp.1551-1558
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2008
The mammalian cellular retinoic acid-binding proteins, CRABP-I and CRABP-II, bind retinoic acid which acts as an inducer of differentiation in several biological systems. To investigate a possible role for CRABP-II in bovine adipogenesis, we have cloned bovine CRABP-II cDNA and the coding region for CRABP-I. The predicted amino acid sequences of CRABP-II were highly conserved among several animal species (human, mouse, and rat at 97%, 93%, and 93%, respectively). The expression pattern of bovine CRABP-II was examined in greater details by applying RT-PCR to various bovine tissues. CRABP-II mRNA was expressed in most adipose-containing tissues. Moreover, the expression of CRABP-I and -II mRNA dramatically increased during the differentiation of adipocytes from bovine intramuscular fibroblast-like cells. The effects of retinoic acid on adipocyte differentiation of bovine intramuscular fibroblast-like cells were concentration-dependent. Retinoic acid activated the formation of lipid droplets at a level of 1 nM, whereas inhibition was observed at a level of $1{\mu}M$. CRABP-I gene was up-regulated and CRABP-II gene down-regulated by retinoic acid during adipocyte differentiation. These results suggest that CRABPs may play an important role in the regulation of intracellular retinoic acid concentrations during adipogenesis.
Cyclic AMP receptor protein (CRP) is involved in the transcriptional regulation of more than 100 genes in E. coli. CRP dimer is converted into active form via the sequential conformation change of cAMP binding pocket, hinge region and HTH DNA binding motif by binding of cAMP. The temperature gradient gel electrophoresis (TGGE) was applied to CRP protein to know whether it was an efficient technique to study the conformational transitions and the thermal stability. TGGE showed the unfolding process of wild-type and S83G CRP proteins with the temperature gradient set from 29 to 71$^{\circ}C$ on nondenaturing polyacrylamide gel. Melting temperature (Tm) was 57$\pm$1 and 55$\pm$1$^{\circ}C$ for wild-type and S83G CRP, respectively in acidic buffer[89.8 mM Glycine and 24 mM Boric acid (pH 5.8)].
Kim, Jin-Ik;Kaufman, Randal J.;Back, Sung Hoon;Moon, Ja-Young
Molecules and Cells
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v.42
no.11
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pp.783-793
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2019
When endoplasmic reticulum (ER) functions are perturbed, the ER induces several signaling pathways called unfolded protein response to reestablish ER homeostasis through three ER transmembrane proteins: inositol-requiring enzyme 1 (IRE1), PKR-like ER kinase (PERK), and activating transcription factor 6 (ATF6). Although it is important to measure the activity of ATF6 that can indicate the status of the ER, no specific cell-based reporter assay is currently available. Here, we report a new cell-based method for monitoring ER stress based on the cleavage of $ATF6{\alpha}$ by sequential actions of proteases at the Golgi apparatus during ER stress. A new expressing vector was constructed by using fusion gene of GAL4 DNA binding domain (GAL4DBD) and activation domain derived from herpes simplex virus VP16 protein (VP16AD) followed by a human $ATF6{\alpha}$ N-terminal deletion variant. During ER stress, the GAL4DBD-VP16AD(GV)-$hATF6{\alpha}$ deletion variant was cleaved to liberate active transcription activator encompassing GV-$hATF6{\alpha}$ fragment which could translocate into the nucleus. The translocated GV-$hATF6{\alpha}$ fragment strongly induced the expression of firefly luciferase in HeLa Luciferase Reporter cell line containing a stably integrated 5X GAL4 site-luciferase gene. The established double stable reporter cell line HLR-GV-$hATF6{\alpha}$(333) represents an innovative tool to investigate regulated intramembrane proteolysis of $ATF6{\alpha}$. It can substitute active pATF6(N) binding motif-based reporter cell lines.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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