Methods for the extraction of DNA from water sample were approximated. Four different procedures of DNA extraction were carried out with pellets obtained from centrifugation of 4 liter water samples. The recovery efficiency and purity of DNA extracted by each method from different sources were compared. DNA yield varied with extraction methods, Method I, which involves enzymatic and freeze-thaw lysis steps and phenol and phenol-chloroform purification of extracted nucleic acid, showed a significantly higher yield and purity than the other methods. The use of glass beads in the DNA extraction methods improved the purity of DNA suitable for PCR. Bovine serum albumin in the PCR reaction mixture was useful in reducing inhibitory effects of contaminants. The efficiency of an extraction method was determined by the detection of the aer of Aeromonas hydrophila with PCR. The lower limit of detection of A. hydrophila from seeded tap water was 2 CFU/ml in PCR when method I was used for DNA preparation.
DNA isolation for PCR-based short tandem repeat (STR) analysis is essential to recover high yields of amplifiable DNA from low copy number (LCN) DNA samples. There are different methods developed for DNA extraction from the small bloodstain and gloves, commonly found at crime scenes. In order to obtain STR profiles from LCN DNA samples, DNA extraction protocols, namely the automated $iPrep^{TM}$$ChargeSwitch^{(R)}$ method, the automated $QIAcube^{TM}$ method, the automated $Maxwell^{(R)}$ 16 DNA $IQ^{TM}$ Resin method, and the manual $QIAamp^{(R)}$ DNA Micro Kit method, were evaluated. Extracted DNA was quantified by the $Quantifiler^{TM}$ Human DNA Quantification Kit and DNA profiled by $AmpFISTR^{(R)}$$Identifiler^{(R)}$ Kit. Results were compared based on the amount of DNA obtained and the completeness of the STR profiles produced. The automated $iPrep^{TM}$$ChargeSwitch^{(R)}$ and $QIAcube^{TM}$ methoas produced reproducible DNA of sufficient quantity and quality trom the dried blood spot. This two automated methods showed a quantity and quality comparable to those of the forensic manual standard protocols normally used in our laboratory. In our hands, the automated DNA extraction method is another obvious choice when the forensic case sample available is bloodstain. The findings of this study indicate that the manual simple modified $QIAamp^{(R)}$ DNA Micro Kit method is best method to recover high yields of amplifiable DNA from the numerous potential sources of LCN DNA samples.
In this study, the effects of five extraction methods for raw and processed corns were compared with respect to the integrity, yields and quality of DNA extracted from them and the results were assessed by PCR analysis. From the comparison of five extraction methods, DNA integrity showed a similar pattern. Amounts of genomic DNA obtained from the five extraction methods varies from $0.25{\mu}g\;to\;234{\mu}g$ per 1 g sample. The DNA yield extracted with CTAB method and DNeasy Plant Maxi kit is greater than that obtained from other extraction methods. These results would be applicable for the selection of an adequate extraction method for specific samples.
Oh, Seo Young;Han, Jeong Yeon;Lee, So Ra;Lee, Hoon Taek
Korean Journal of Clinical Laboratory Science
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v.46
no.3
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pp.99-105
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2014
Isolating total DNA from small samples using traditional methods is difficult and inefficient mainly due to loss of DNA during filtration and precipitation. With advances in molecular pathology, DNA extraction from micro-dissected cells has become essential in handling clinical samples. Genomic DNA extraction using small numbers of cells can be very important to successfully PCR amplify DNA from small biopsy specimens. We compared our experimental genomic DNA extraction method (A) with two other commercially available methods: using spin columns (B), and conventional resins (C), and determined the efficacy of DNA extraction from small numbers of cells smeared on a glass slide. Approximately 50, 100, 200, 500 and 1000 cells were isolated from fine needle aspiration biopsy (FNAB) slides aspirated from histologically proven papillary thyroid carcinoma masses. DNA was extracted using the three techniques. After measuring DNA quantity, PCR amplification was performed to detect the ${\beta}$-globin and $BRAF^{V600E}$ gene mutations. DNA extracted by method (A) showed better yield than the other methods in all cell groups. With our method, a suitable amount of genomic DNA to produce amplification was extracted from as few as 50 cells, while more than 100 to 200 cells were required when methods (B) or (C) were applied. Our genomic DNA extraction method provides high quality and improved yields for molecular analysis. It will be especially useful for paucicellular clinical samples which molecular pathologists often confront when handling fine needle aspiration cytology, exfoliative cytology and small biopsy specimens.
Analyses of ancient DNA (aDNA) from archaeological and historical skeletal material are characterized by low quality. Many soil contaminants such as humic acid, fulvic acid, and bone collagen are often co-extracted with aDNA and inhibit amplification by polymerase chain reaction (PCR). In this study, we compared with two methods of DNA extraction by phenolchloroform extraction and silica-bead extraction. In addition, we applied new protocol, ultra sonication based silica-bead extraction method to extract aDNA from some ancient human skeletal remains. This method was more effective by both mitochondrial DNA (mtDNA) and amelogenin gene amplification.
Microgram quantities of DNA per gram soil were recovered with SDS- based and freeze-and thaw procedures. The average DNA fragment size was > 23 Kb. This method generated minimal shearing of extracted DNA. However, the DNA extracts still contained considerable amounts of humic impurities sufficient to inhibit PCR. Several approaches were used to reduce the interferences with the PCR (use of CTAF in extraction step, Elutip-d column purification, addition of BSA to PCR buffer) to accomplish PCR with DNA extract as a template. Most of the DNA extracts were not digested completely by restriction endonuclease, and CTAB-TREATED ane Elutip-d column purified DNA extracts were partially digested. Regarding as restriction enzyme digestion, all PCRs failed to amplify 16S rRNA gene fragments in the DNA extracts. In the case of DNA extracts only where BSA was added to PCR buffer, PCR was successfully conducted whether the DNA extracts were treated with CTAB or purified with columns. However, these two treatments were indispensable for humic impurity-rich DNA extracts to generate the PCR-compatible DNA samples. Direct extraction of DNA, coupled with these procedures to remove and relieve interferences by humic impurities and followed by the PCR, can be rapid and simple method for molecular microbiological study on soil microorganisms.
Lee, Deog-Yong;Seo, Yeon-Soo;Kang, Sang-Gyun;Yoo, Han Sang
Korean Journal of Veterinary Research
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v.47
no.2
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pp.157-162
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2007
Lactic acid bacteria (LAB) has been regarded as a useful microorganism and tried to manipulate plasmid DNA for increasing the usefulness. Although several methods have been developed to isolate plasmid DNA from Escherichia coli (E. coli), these methods were not sufficient to apply to LAB with exception of O'Sullivan's lysis method. So, we evaluated plasmid DNA extraction from LAB using general E. coli preparation methods and tried to improve the extraction yield and DNA purity by modifying O'Sullivan's alkaline lysis method. To improve the extraction yield, salt and carrier were added to precipitant and those were incubated at $-70{^{\circ}C}$. Only incubation at $-70{^{\circ}C}$ was the effective method of those modifications. Purity of plasmid DNA was improved by two times of each centrifugation and phenol/chloroform extraction. However, DNA was damaged by twice extraction with phenol/chloroform. Also, exclusion of ethidium bromide showed negative effect to purity. Additionally, it was recommended that improvement of the extraction yield may be due to centrifugation at high speed for more time and to dissolving complete DNA pellet before addition of 7.5 M ammonium acetate. Extraction using this modification produced higher quality of plasmid DNA.
It designed a study to examine the efficiency of DNA and RNA extraction from archival formalin-fixed, paraffin-embedded tissues using an non-heating and heating method. Archival paraffin blocks of liver, kidney, colon were randomly selected. Each paraffin block was prepared in 20 microtubes. For each paraffin blocks were tested non-heating DNA extraction to 10 microtubes and heating protocol under pH 7.0 and $100^{\circ}C$ to 10 microtubes. Evaluation of the results of DNA extraction was carried out by measuring concentration by UV spectrophotometry and then PCR amplification. DNA extraction content that non-heating method was liver $5{\pm}0.7{\mu}g/mL$, kidney $2{\pm}0.3{\mu}g/mL$, colon $6{\pm}0.4{\mu}g/mL$ and heating method was liver $12{\pm}0.6{\mu}g/mL$, kidney $7{\pm}0.5{\mu}g/mL$, colon $10.{\pm}0.3{\mu}g/mL$. Successful RNA extraction was observed, by ${\beta}$-actin amplification, in 46.7% sections for samples treated by the heating method versus 30.0% using non-heating DNA extraction. The extracted nucleic acid showed better values for samples heated at $100^{\circ}C$. Therefore heating extraction of nucleic acid is reliable, quick and efficiency.
Kim, Soonhee;Hong, Seungbeom;Kemp, Brian M.;Park, Kiwon;Han, Myunsoo
Analytical Science and Technology
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v.21
no.4
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pp.338-343
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2008
Extraction of DNA from skeletal material is of great importance in the identification of human remains, but is particularly difficult because the high amount of microbial DNA was often co-extracted with human bone DNA. We found that a phenol/chloroform extraction, followed by ultrafiltration, and cleanup by via the $QIAquick^{(R)}$ PCR purification kit yields higher amounts of human genomic DNA compared with extraction by the column affinity $method^{(R)}$ alone. Ultrafiltration extraction of human DNA from ten exhumed bone samples yielded $0.041-1.120ng/{\mu}L$ DNA (mean = $0.498ng/{\mu}L$ DNA), and purification using the column affinity resulted in $0.016-0.064ng/{\mu}L$ DNA (mean = $0.034ng/{\mu}L$ DNA). Although the STR genotyping by the column affinity method was partially successful, all DNA samples by the ultrafiltration method produced full profiles from the multiplex PCR. The efficiency of STR genotyping was in accordance with the amounts of the human DNA extracted.
Several challenges arise in DNA extraction and gene amplification for airborne fungal metagenome analysis from a particulate matter (PM) samples. In this study, various conditions were tested to optimize the DNA extraction method from PM samples and polymerase chain reaction (PCR) conditions with primer set and annealing temperature. As a result of comparative evaluation of DNA extraction under various conditions, chemical cell lysis using buffer and proteinase K for 20 minutes and bead beating treatment were followed by using a commercial DNA extraction kit to efficiently extract DNA from the PM filter samples. To optimize the PCR conditions, PCR was performed using 10 primer sets for amplifying the ITS2 gene region. The concentration of the PCR amplicon was relatively high when the annealing temperature was 58℃ with the ITS3tagmix3/ITS4 primer set. Even under these conditions, when the concentration of the PCR product was low, nested PCR was performed using the primary PCR amplicon as the template DNA to amplify the ITS2 gene at a satisfactory concentration. Using the methods optimized in this study, DNA extraction and PCR were performed on 15 filter samples that collected PM2.5 in Seoul, and the ITS2 gene was successfully amplified in all samples. The optimized methods can be used for research on analyzing and interpreting the fungal metagenome of atmospheric PM samples.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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