The objective of this study is to determine developmental pattern and cell allocation to the ICM and TE in haploid and diploid of embryos following parthenogenetic activation and in vitro fertilization. The incidence of development to blastocyst was lower in the combined treatments of ethanol stimulation and cytochalasin B as compared to the control. However, the combined ethanol stimulation and cytochalasin B treatment (diploid) accelerated development to the blastocyst as compared to the ethanol treatment alone (haploid). Significantly reduction in the average number of total cells and ICM was observed in the parthenotes alone as compared to fetilized embryos, but those of combined ethanol stimulation and cytochalasin B treatment embryos were significantly increased as compared to ethanol alone embryos. These results suggested that the ploidy affects preimplantation developmental patters and cell allocation to the ICM and TE in the porcine.
This study was conducted to evaluate the effect of cytochalasin B (CB) treatment in the activation medium on the development of somatic cell nuclear transfer (SCNT) rat embryos. Fetal fibroblast cells were isolated from a Day 14.5 fetus, and the oocytes for recipient cytoplasm were recovered from 4-week old Sprague Dawley rats. After enucleation and nuclear injection, the reconstructed oocytes were immediately exposed to activation medium consisting of 10 mM $SrCl_2$ with or without CB for 4 hr, and formation of pseudo-pronucleus (PPN) was checked at 18 hr after activation. Then, they were transferred into day 1 pseudopregnant recipients (Hooded Wistar) or cultured for 5 days to check their developmental competence in vivo or in vitro. The number of PPN was not affected by CB treatment during the activation. However, CB treatment supported pre-implantation development of rat SCNT embryos. Embryos generated by the procedures of SCNT were also capable of implanting, with 1 implantation scar found from a recipient following the transfer of 87 SCNT embryos to four foster mothers. The result of the present study shows that rat SCNT embryo can develop to post-implantation stage following treatment with CB.
The effects of cytochalasin B was studied for the cleavage and development of in vitro matured porcine follicular oocytes. The follicular oocytes were collected from slaughtered pig ovaries and matured for 65 hours. The matured oocytes were activated by 7% ethanol(v/v) in DPBS and the activated oocytes were subjected to cytochalasin B concentrations of 2.5, 5.0 and $7.5\;{\mu}g/mL$ for 3, 5 and 7 hours, and then the treated oocytes were cultured in NCSU23 with 0.4% BSA for 7 days. The cleavage rates were not different significantly in each treatment. However, the oocytes treated with $5.0\;{\mu}g/mL$ for 5 hours yielded a significantly higher morula rate(19.7%) than oocytes treated with $2.5\;{\mu}g/mL$ for 3 and 5 hours(9.4%). The sum rate of $2.5\;{\mu}g/mL$ concentration(10.5%) by hour was also significantly lower than those of 5.0(18.0%) and $7.5\;{\mu}g/mL$ concentration(14.6%). The blastocyst rate in oocytes treated with $5.0\;{\mu}g/mL$ for 3(9.4%) and 5 hours(9.0%) was significantly higher than the rate in oocytes treated with $2.5\;{\mu}g/mL$ for 3 hours(0%). The sum rate of $5.0\;{\mu}g/mL$ concentration also significantly higher than those of 2.5 and $7.5\;{\mu}g/mL$ concentration. The results demonstrated that the treatment of oocytes with cytochalasin B of $5.0\;{\mu}g/mL$ for $3{\sim}5$ hours was the optimal concentration and duration for parthenogenetic activation and blastocyst formation of in vitro matured porcine oocytes.
Objective : The purpose of this study was to evaluate the effect of Cytochalasin B (CCB) on the cytoskeletal stability of mouse oocyte frozen by vitrification. Methods : Mouse oocytes retrieved from cycle stimulated by PMSG and hCG were treated by CCB and then vitrified in EFS-30. These oocytes were placed onto an EM grid and submerged immediately in liquid nitrogen. Thawing of the oocytes was carried out at room temperature for 5 seconds, then the EM grid was placed into 0.75 M, 0.5 M and 0.25 M sucrose at $37^{circ}C$ for 3 minutes, each. These oocytes were fixed in 4% formaldehyde for an hour and then washed in PPB for 15 minutes 3 times, then incubated in PPB containing anti-tubulin monoclonal antibody at $4^{circ}C$ overnight. And then, the oocytes were incubated with FITC-conjugated anti-mouse IgG and propidium iodide (PI) for 45 minutes. Pattern of microtubules and microfilaments of oocytes were evaluated with a confocal microscope. Results: The rate of oocytes containing normal microtubules and microfilaments was significantly decreased after vitrification. The rate of oocyte containing normal microtubules in CCB treated group was higher than those in non-treated group (53.7% vs. 48.9%), but the difference was not significant. The rate of oocyte containing normal microfilaments in CCB treated group was significantly higher than those in non-treated group (64.5% vs. 38.3%, p<0.05). Conclusion: Microfilaments stability could be improved by CCB treatment prior to vitrification. It is suggested that CCB treatment prior to vitrification improve stability of cytoskeleton and then increase success rate in IVF-ET program using vitrification and thawing oocyte.
The nucleotide-oligomerization domain (NOD) proteins are members of the NOD-like receptor (NLR) family, which are intracellular and cytoplasmic receptors. We analyzed the role of NODs for cytokine production by macrophages infected with intracellular pathogen M. leprae, the causative agent of leprosy. Production of pro-inflammatory cytokines such as IL-$1{\beta}$ and TNF-${\alpha}$ was inhibited in the presence of cytochalasin D, an agent blocking phagocytosis, suggesting that intracellular signaling was, partially, required for macrophage activation to M. leprae infection. Next, we investigated the role of NOD1 and NOD2 proteins on NF-${\kappa}B$ activation and cytokine expression. Treatment with M. leprae significantly increased NF-${\kappa}B$ activation and expression of TNF-${\alpha}$ and IL-$1{\beta}$ in NOD1- and NOD2-transfected cells. Interestingly, their activation and expression were inhibited by cytochalasin D, suggesting that stimulation of NOD proteins may be associated with the enhancement of cytokine production in host to M. leprae.
To improve survival rates of vitrified pig oocytes, the treatment of cytoskeletal stabilizer on an appropriate time is one of the possible approaches. However, the exact treatment timing and effect of cytoskeletal stabilizer such as cytochalasin B (CB) is not well known during oocyte vitrification procedures. Thus, the present study was conducted to determine optimal treatment timing of CB during vitrification and warming procedures. In experiment 1, the survival rates of the postwarming pig oocytes were analyzed by fluorescein diacetate (FDA) assays with 4 classifications. In results, post-warming oocytes showed significantly (p<0.05) decreased number of alive oocytes (31.8% vs. 86.4%) compared to fresh control. In detail, the significant difference (p<0.05) was found only in strong fluorescence (18.2% vs. 70.5%) not in intermediate fluorescence groups (13.6% vs. 15.9%). In experiment 2, CB was treated before (CB-Vitri) and after (Vitri-CB) vitrification. In results, group of Vitri-CB showed significantly (p<0.05) higher (91.6%) survival rates compared to group of CB-Vitri (83.7%), significantly (p<0.05) and comparable with group of Vitri Control (88.7%) by morphological inspection. In FDA assay results, group of Vitri-CB showed significantly (p<0.05) higher (44.2%) survival rates compared to groups of CB-Vitri (36.7%) and Vitri Control (35.1%). In conclusion, the increased survival rates of post-warming pig oocyte treated with Vitri-CB method are firstly described here. The main finding of present study is that the CB treatment during recovery could be helpful to refresh the post-warming pig oocyte resulting its improved survival rates.
The objective of this study was to examine the effect of in vitro maturation (IVM) medium, cytochalasin B (CB) treatment during intracytoplasmic sperm injection (ICSI), and electric activation on in vitro development ICSI-derived embryos in pigs. Immature pig oocytes were matured in vitro in medium 199 (M199) or porcine zygote medium (PZM)-3 that were supplemented with porcine follicular fluid, cysteine, pyruvate, EGF, insulin, and hormones for the first 22 h and then further cultured in hormone-free medium for an additional 21~22 h. ICSI embryos were produced by injecting single sperm directly into the cytoplasm of IVM oocytes. The oocytes matured in PZM-3 with 61.6 mM NaCl (low-NaCl PZM-3) tended to decrease (0.05
The purpose of this study is to examined the electrofusion and activation conditions for the production of porcine somatic cell nuclear transfer (SCNT) embryos. In this study, immature oocytes were cultured in TCM-199 with and without hormones for 22 hours. Skin fibroblasts cells of porcine were transferred into the perivitelline space of enucleated in vitro matured oocytes. Cell fusion was performed with two different pulses that each one pulse (DC) of 1.1 kV/cm or 1.5 kV/cm for $30{\mu}sec$. After fusion subsequent activation were divided into three groups; non-treatment (control) and treatment with 2 mM 6-DMAP or $7.5{\mu}g/ml$ cytochalasin B for 4 hours. Transferred embryos were cultured in PZM-3 (Porcine Zygote Medium-3) in $5%\;CO_2$ and 95% air at $39^{\circ}C$ for 7 day. Apoptosis-related genes (Caspase-3, BCL-2, mTOR, and MMP-2) were analyzed by immunofluorescence staining. There was no significant difference between two different electrofusion stimuli in the cleavage rate; $64.9{\pm}4.8%$ in 1.1 kV/cm and $62.7{\pm}4.0%$ in 1.5 kV/cm. However, blastocyst formation rate (%) was significantly different among three different activation groups (no treatment, 2 mM 6-DMAP or $7.5{\mu}g/ml$ cytochalasin B) combined with electrofusion of 1.1 kV/cm. The blastocyst formation rate was $12.6{\pm}2.5$, $20.0{\pm}5.0$, and $34.9{\pm}4.3%$ in control, 2 mM 6-DMAP, and $7.5{\mu}g/ml$ cytochalasin B, respectively. Immunofluorescence data showed that expression levels of caspase-3 in SCNT embryos undeveloped to blastocyst stage were higher than those in the blastocyst stage embryos. Expression levels of Bcl-2 in blastocyst stage embryos were higher than those in the arrested SCNT embryos. These results showed that the combination of an electric pulse (1.1 kV/cm for $30{\mu}sec$) and $7.5{\mu}g/ml$ cytochalasin B treatment was effective for production of the porcine SCNT embryos.
The purpose of this study was to evaluate the effects of Cytochalasin B treatment on the survivability The different concentration and exposed times of CB of porcine embryos frozen by vitrification were observed. The results were summarized as follows ; 1. The survivability rates of the porcine embryos treated CB(60.5%) were significantly higher than non-treated(32.8%)(p<0.1). However the recovered with normal morphology rates(84.2%) were no significantly different than non-treated(81.9%). 2. We observed by different concentration of CB treatment, the group of CB treated with 7.5 $\mu\textrm{g}$/$m\ell$ were significantly showed a higher of normal morphology(44/45; 98%) and viability rate(33/45;73%) than other groups(morphology: 65∼70%, viability: 15∼74%)(p<0.05). While the control was lower as 70% of morphology and 38% of viability. 3. We examined exposed time of in-vitro CB treated embryos, the group of more than 20 minutes exposed were significantly were observed a higher rates of normal morphology and viability(p<0.05). And the group of 13 minutes, 14,000 rpm centrifuged(64%) were significantly higher than non-centrifuged(36%). Survivability of porcine embryos were improved in CB treated group. It suggested that 7.5 $\mu\textrm{g}$/$m\ell$ concentration of CB treatment, 20 minutes exposed times and 13 minutes, 14000 rpm centrifuged prior to vitrification improve normal morphology and survivability rates.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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