The objective of this study was to evaluate the effects of alpha-linolenic acid (ALA) during in vitro maturation (IVM) on cumulus expansion, nuclear maturation, fertilization capacity and subsequent development in porcine oocytes. The oocytes were incubated with 0, 25, 50, and $100{\mu}M$ ALA. Cumulus expansion was measured at 22 h, and gene expresison and nuclear maturation were analyzed at 44 h after maturation. Then, mature oocytes with ALA were inseminated, and fertilization parameters and embryo development were evaluated. In results, both of cumulus expansion and nuclear maturation were increased in $50{\mu}M$ ALA groups compared to control groups (p<0.05). However, expression of gap junction protein alpha 1 (GJA1, cumulus expansion-related gene), delta-6 desaturase (FADS1, fatty acid metabolism-related gene), and delta-5 desaturase (FADS2) mRNA in cumulus cells were reduced by $50{\mu}M$ ALA treatment (p<0.05). Cleavage rate was enhanced in 25 and $50{\mu}M$ ALA groups (p<0.05), especially, treatment of $50{\mu}M$ ALA promoted early embryo develop to 4 and 8 cell stages (p<0.05). However, blastocyst formation and number of cells in blastocyst were not differ in 25 and $50{\mu}M$ ALA groups. Our findings show that ALA treatment during maturation could improve nuclear maturation, fertilization, and early embryo development through enhancing of cumulus expansion, however, fatty acid metabolism- and cumulus expansion-related genes were down-regulated. Therefore, addition of ALA during IVM of oocytes could improve fertilization and developmental competence, and further studies regarding with the mechanism of ALA metabolism are needed.
Lee, Ji Hye;Yoo, Miyoun;Lee, Sang Mee;Park, Soon-Jae;Kil, Tae Young;Kim, Min Kyu
Journal of Animal Science and Technology
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제63권2호
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pp.272-280
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2021
Cumulus-oocyte complexes (COCs), which contain immature oocytes, are matured in vitro for in vitro embryo production. Oocyte and cumulus cells are then separated using hyaluronidase. To date, there have only been a few reported cases of the toxic effects of hyaluronidase on porcine oocytes. The aim of this study was to compare the effects of bovine testis-derived hyaluronidase and recombinant human hyaluronidase on oocyte denudation and quality. Porcine COCs were matured for 44 h and denuded using different hyaluronidase concentrations and exposure times. Then, oocytes were activated by electrical parthenogenesis. In experiment 1, COCs were denuded using bovine-derived, ovine-derived (Hirax), and human recombinant (ALT-BC4) hyaluronidases for 10 and 20 min. In experiment 2, bovine-derived and human recombinant (ALT-BC4 and ICSI Cumulase®) hyaluronidases were used to denude the COCs for 2 and 20 min. In both experiments the oocytes were all completely denuded, and there was no degeneration. Rate of embryo development was significantly increased in group treated ALT-BC4 for 2 min and not significantly different in other treatment groups. In general it slightly decreased with longer exposure times. These results have confirmed that different sources of hyaluronidase do not have detrimental effects on the quality of porcine oocytes and suggest that the human recombinant hyaluronidase ALT-BC4 is suitable for oocyte denudation with an increased blastocyst rate.
본 연구는 체외 성숙된 난자와 동결 융해 정자를 이용한 돼지의 체외 수정 과정에서 난구 세포의 존재가 정자 침투율, 웅성전핵 형성률 그리고 후기배로의 체외 발육에 미치는 영향을 알아보기 위하여 수행되었다. 돼지 난소로부터 난자-난구세포 복합체를 채취하여 eCG/hCG, 10% 돼지 난포액, epidermal growth factor 등이 첨가된 TCM 199 배양액에서 44시간 배양하여 체외 성숙을 유도하였다. 성숙 배양 후 난구 세포를 제거한 난자와 난구 세포가 부착되어 있는 난자를 돼지 동결 융해정액을 이용하여 5mM caffeine과 10mM calcium chloride를 함유한 mTBM배양액에서 8시간 체외 수정하였다. 체외 수정 후 난자를 고정, 염색하여 정자 침투율과 웅성전핵 형성률을 조사하였고(실험 $1{\sim}3$) 일부 수정란을 North Carolina State University-23 배양액에서 체외 수정 후 156시간 배양하여 후기배로의 발육능을 검토하였다(실험 3). 실험 1에서는 정자 농도를 $7.5{\times}10^5/ml$로 조정하여 나화 난자와 난구 세포 부착난자에서 정자 침투율 및 웅성전핵 형성률을 조사하였다. 실험 2에서는 난구 세포 부착 난자의 체외 수정에 적합한 정자 농도를 구하기 위해 2, 3, 4, 및 $5{\times}10^6/ml$의 농도로 난자를 수정한 후 정자 침투율 및 웅성전핵 형성률을 조사하였다. 실험 3에서는 나화 난자 및 난구 세포 부착 난자를 각각 $7.5{\times}10^5/ml$의 정자 농도로 체외 수정한 후 후기배로의 발육률을 조사하였다. 실험 1의 결과 정자 침투율은 나화 난자에 비해 난구 세포 부착 난자에서 유의적으로 감소되었다(35.2% vs. 77.4%; p<0.01). 실험 2에서 다양한 정자 농도에 의한 정자 침투율과 정상 수정률을 바탕으로 판단했을 때 $4.6{\times}10^6/ml$의 정자 농도가 다른 정자 농도에 비해 난구 세포부착 난자의 체외 수정에 적합한 것으로 나타났다. 체외 수정과정에서 난구 세포 부착된 상태로 수정된 난자는 나화 난자에 비해 유의적으로(p<0.05) 높은 분할률(48.8% vs. 58.9%), 배반포 형성률(11.0% vs. 22.8%)과 배반포 세포수$(22{\pm}2\;vs.\;29{\pm}2)$를 나타내었다. 본 연구의 결과로부터 돼지의 체외 수정과정에서 난구 세포의 존재는 정자 침투를 저해하지만 분할률, 배반포 형성률 및 배반포의 세포수를 증가시키는 것으로 사료된다.
Jin Hai-Feng;Kumar B. Mohana;Cho Sung-Keun;Ock Sun-A;Jeon Byeong-Gyun;Balasubramanian S.;Choe Sang-Yong;Rho Gyu-Jin
Reproductive and Developmental Biology
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제30권2호
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pp.119-124
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2006
The present study compared the developmental potential of cloned porcine embryos with mesenchymal stem cells (MSCs), fetal fibroblasts (FFs) and cumulus cells (CCs) by assessing the cleavage and blastocyst rate, total cell number, inner cell mass (ICM) ratio and apoptosis. MSCs were isolated by ficoll gradients from femur of -6 month old female pig, and maintained for primary cultures. FFs from a female fetus at ${\sim}30$ day of gestation were established, and CCs were obtained from cumulus oocyte complexes (COCs) aspirated from $3{\sim}6$ mm follicles in diameter. Donor cells at $3{\sim}4$ passage were employed for nuclear transfer (NT). COCs were matured and fertilized in vitro(IVF) as control. Cleavage rate was significantly (P<0.05) higher in IVF than in NT embryos with MSCs, FFs and CCs ($82.7{\pm}8.9%\;vs\;70.6{\pm}5.4,\;68.7{\pm}5.1\;and\;63.4{\pm}5.6%$, respectively). However, blastocyst rates in IVF and NT embryos derived from MSCs ($24.5{\pm}2.8\;and\;20.4{\pm}8.3%$) did not differ, but were significantly (P<0.05) higher than NT derived from FFs and CCs ($10.6{\pm}2.7\;and\;9.8{\pm}2.1%$). Total cell number and the ratio of ICM to total cells among blastocysts cloned from MSCs ($35.4{\pm}5.2\;and\;0.40{\pm}0.09%$, respectively) were significantly (P<0.05) higher than those from FFs and CCs ($24.9{\pm}6.2%\;vs\;0.19{\pm}0.16,\;23.6{\pm}5.5\;and\;0.17{\pm}0.16%$, respectively). Proportions of TUNEL positive cells in NT embryos from FFs and CCs ($6.9{\pm}1.5\;and\;7.4{\pm}1.7%$, respectively) were significantly (P<0.05) higher than in MSCs ($4.8{\pm}1.4%$) and IVF ($2.3{\pm}0.9%$). The results demonstrate that MSCs have a greater potential as donor cells than FFs and CCs in achieving enhanced production of cloned porcine embryos.
Quan, Yan Shi;Naruse, Kenji;Choi, Su-Min;Kim, Myung-Youn;Han, Rong-Xun;Park, Chang-Sik;Jin, Dong-Il
Reproductive and Developmental Biology
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제32권4호
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pp.249-253
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2008
Interspecies somatic cell nuclear transfer (iSCNT) is a valuable tool for studying the interactions between an oocyte and somatic nucleus. The object of this study was to investigate the developmental competence of in vitro-matured porcine oocytes after transfer of the somatic cell nuclei of 2 different species (goat and rabbit). Porcine cumulus oocytes were obtained from the follicles of ovaries and matured in TCM-199. The reconstructed embryos were electrically fused with 2 DC pulses of 1.1kV/cm for $30{\mu}s$ 0.3M mannitol medium. The activated cloned embryos were cultured in porcine zygote medium-3 (PZM-3), mSOF or RDH medium for 7 days. The blastocyst formation rate of the embryos reconstructed from goat or rabbit fetal fibroblasts was significantly lower than that of the embryos reconstructed from porcine fetal fibroblast cells. However, a significantly higher number of embryos reconstructed from goat or rabbit fetal fibroblasts cultured in mSOF or RDH, respectively, developed to the morular stage than those cultured in PZM-3. These results suggest that goat and bovine fetal fibroblasts were less efficacious than porcine-porcine cloned embryos and that culture condition could be an important factor in iSCNT. The lower developmental potential of goat-porcine and porcine-bovine cloned embryos may be due to incompatibility between the porcine oocyte cytoplasm and goat and bovine somatic nuclei.
Kim, Jae-Young;Lee, Eun-Ji;Park, Jin-Mo;Lee, Hong-Cheol;Park, Hum-Dai;Kim, Jae-Myeong
한국수정란이식학회지
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제26권2호
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pp.117-122
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2011
In this study, we examined the effectiveness of in vitro fertilization of porcine immature oocytes on the embryo development of blastocysts or hatched blastocysts and the number of cells according to the in vitro fertilization conditions. In the in vitro fertilization of in vitro matured porcine oocytes, there were no significant differences between treatment groups regarding fertilization rate, blastocyst rate, and embryo development of hatched blastocysts according to the storage periods of liquid sperm of 24, 48, and 72 hours. The embryo development rate of hatched blastocysts after the fertilization according to different spermatozoa concentrations ($0.4{\times}10^5$, $1.2{\times}10^5$, and $3.6{\times}10^5$ cells/ml) showed the highest rate in the group with a spermatozoa concentration of $1.2{\times}10^5$ cells/ml; in particular, this rate was significantly higher than that in the $0.4{\times}10^5$ cells/ml group (p<0.05). The total number of blastocysts cells as well as trophectoderms (TE) that developed in each treatment group were also significantly higher in the $1.2{\times}10^5$ cells/ml group than in any other groups (p<0.05). In contrast, the embryo development rate of blastocysts according to different co-incubation periods of sperm and oocyte (1, 3, and 6 hr) was high in the 6-hour group; in particular, the rate was significantly higher than that of the I-hour group (p<0.05). Furthermore, the total number of oocytes cells and TEs that developed was significantly higher in the 6-hour group than any other group (p<0.05). In this study, the most effective treatment conditions for porcine embryo development and high cell number were found to be as follows: a sperm storage period of less than 72 hours, a spermatozoa concentration of $1.2{\times}10^5$ cells/ml, and a 6-hour co-incubation period for sperm and ooocyte.
The objective of this study was to develop an effective in vitro production system capable of obtaining more porcine embryos from immature oocytes These experiments were conducted to examine the effect of sperm factor on the IVF and IVD, and the effect of coculture with somatic cells on the IVD of embryos. Although the concentration of epididymal sperm for IVF did not affect on cleavage rate, but 5 x 105 sperm/mi showed the highest cleavage rate(48.7%) and the developmental potential of IVF oocytes from this concentration was also greatly higher (P$^{\circ}C$-stored sperm for l2hrs and the cleavage rate from fresh sperm was significantly higher (P<0.05) than that from frozen sperm, but the developmental potential after IVF was slightly high from the frozen sperm. The cleavage rate of IVF oocytes cocultured with oviductal epithelial cells and cumulus cells was 76.3% and 72.9%, respectively. There was no difference between two coculture systems but this rate was significantly higher(P<0.05) than that of medium alone(42.0%).
돼지 난포내의 각 구성분들에 대해 10% SDS-PAGE와 IEF를 이용한 이차원 전기영동을 실시하여 세포 및 난포액 구성분의 구조단백질상을 분석하였다. 난자-난구세포 복합체를 호르몬과 15%의 FCS가 포함된 M16 배양액으로 39$^{\circ}C$, 5% CO2 상태에서 35시간 동안 체외배양하였다. 배양 전후의 난자, 투명대 및 난구세포와 난포 크기별로 회수된 난포액들을 각각 분리 회수하여 구조단백질상을 분석하였으며, Silver 염색과 CBB 염색으로 분석이 가능한 각 구성분의 적정 시료량을 조사하였다. 한편 난포 구성분들에 있어서 난자는 분자량이 25와 114kd, 난구세포는 20, 33, 58, 78 및 112kd, 투명대는 65kd, 그리고 난포액은 18, 76, 92, 152 및 187kd 단백질을 세포특이단백질로 가지고 있음이 확인되었다. 특히 난자의 경우 성숙에 따라 구조단백질상의 변화가 확인된 반면, 난구세포에서는 차이가 없었다. 또한 난포액은 난포의 크기에 따라서는 단백질상의 차이가 없었으나 호르몬 처리 여부에 따라서는 이차원 전기영동상에서 몇가지 단백질에서 차이가 확인되었고, 난포세포들도 폐쇄 여부에 따라 단백질 조성에 차이를 보였다. 따라서 본 실험에서는 전기영동에 필요한 시료의 양과 준비 방법을 확립하여 각 난포 구성분들의 단백질상 분석에 대한 기초자료를 확립하였으며, 이상의 결과는 앞으로 진행될 단백질의 생합성 분석이나 면역화학학적 분석에 유용하게 이용될 수 있을 것이다.
This experiment has been done in order to study the correlation between the ultrastructure changes and the atresia phenomenon of the follicles in porcine ovary. The ovaries were assorted according to the presence or absence of corpus luteum. Thereafter, the follicles were classified into normal, pyknotic, necrotic and cystic groups by atretic characteristics on the histological observation, and then their ultrastructures were examined with an electron microscope. The results were as followings. 1. In normal group, granulosa cells represented the ultrastructural characteristics of protein-synthesizing cells. Since the initiation of atresia, the line structure of granulosa cells showed many of the characteristic features of steroid-secreting cells, followed by gradual pyknosis. 2. In necrotic group of the ovary without corpus luteum, the theca interns became hypertrophic and displayed the ultrastructural features of active steroidsecreting cells. But this phenomenon was not seen in the follicles of the ovary with corpus luteum. 3. Degenerative changes of cumulus cells were similar to those of granulosa cells, and the degenerating oocytes showed the degeneration of cellular organelles, cytoplasmic vacuolization and disappearance of microvilli on the surface. The degeneration of granulosa cells tended to procede that of oocytecumulus complex in the follicles of the ovary having no corpus luteum, but this tendency was reversed in the case of presence of corpus luteum. In conclusion, it may be unable to identi(y the initiation of follicular atresia
Developmental potential of cloned embryos is related closely to epigenetic modification of somatic cell genome. The present study was to investigate the effects of applying histone deacetylation inhibitor, trichostatin A (TSA) to activated porcine embryos on subsequent development of porcine parthenogenetic and nuclear transfer embryos. Electrically activated oocytes were treated with 5 nM TSA for different exposure times (0, 1, 2 and 4 hr) and then the activated embryos were cultured for 7 days. The reconstructed embryos were treated with different concentrations of 0, 5, 10 and 25 nM TSA for 1 hr. Also 5 nM TSA was tested with different exposure times of 0, 0.5, 1, 2 and 4 hr. And fetal fibroblast cells were treated with 50 nM TSA for 1, 2 or 4 hr and with 5 nM TSA for 1 hr. Cumulus-free oocytes were enucleated and reconstructed by TSA-treated donor cells and electrically fused and cultured for 6 days. In parthenogenetic activation experiments, 5 nM TSA treatment for 1 hr significantly improved the percentage of blastocyst developmental rates than the other groups. Total cell number of blastocysts in 1 hr group was significantly higher than other groups or control. Similarly, blastocyst developmental rates of porcine NT embryos following 5 nM TSA treatment for 1 hr were highest. And the reconstructed embryos from donor cells treated by 50 nM TSA for 1 hr improved the percentage of blastocyst developmental rates than the control group. In conclusion, TSA treatment could improve the subsequent blastocyst development of porcine parthenogenetic and nuclear transfer embryos.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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