Oxidation of catecholamines may contribute to the pathogenesis of Parkinson's disease (PD). The effect of the oxidized products of catecholamines on the modification of Cu,Zn-superoxide dismutase (SOD) was investigated. When Cu,Zn-SOD was incubated with the oxidized 3,4-dihydroxyphenylalanine (DOPA) or dopamine, the protein was induced to be aggregated. The deoxyribose assay showed that hydroxyl radicals were generated during the oxidation of catecholamines in the presence of copper ion. Radical scavengers, azide, N-acetylcysteine, and catalase inhibited the oxidized catecholamine-mediated Cu,Zn-SOD aggregation. Therefore, the results indicate that free radicals may play a role in the aggregation of Cu,Zn-SOD. When Cu,Zn-SOD that had been exposed to catecholamines was subsequently analyzed by an amino acid analysis, the glycine and histidine residues were particularly sensitive. These results suggest that the modification of Cu,Zn-SOD by oxidized catecholamines might induce the perturbation of cellular antioxidant systems and led to a deleterious cell condition.
Acrolein is the most reactive aldehydic product of lipid peroxidation and is found to be elevated in the brain when oxidative stress is high. The effects of acrolein on the structure and function of human Cu,Zn-superoxide dismutase (SOD) were examined. When Cu,Zn-SOD was incubated with acrolein, the covalent crosslinking of the protein was increased, and the loss of enzymatic activity was increased in a dose-dependent manner. Reactive oxygen species (ROS) scavengers and copper chelators inhibited the acrolein-mediated Cu,Zn-SOD modification and the formation of carbonyl compound. The present study shows that ROS may play a critical role in acrolein-induced Cu,Zn-SOD modification and inactivation. When Cu,Zn-SOD that has been exposed to acrolein was subsequently analyzed by amino acid analysis, serine, histidine, arginine, threonine and lysine residues were particularly sensitive. It is suggested that the modification and inactivation of Cu,Zn-SOD by acrolein could be produced by more oxidative cell environments.
It has been believed that antioxidant enzymes such as CuZn- and Mn-superoxide dismutase and catalase protect the tissue from damage resulting from the oxygen derived free radicals($O_2\;^-$, $H_2O_2$ and OH ). The purpose of this study was to investigate the relationship between activity of antioxidant enzymes including CuZn- and Mn- superoxide dismutase and catalase and inflammatory periodontal disease and periodontal parameters. For this study, the patients were classified into normal, gingivitis, adult periodontitis and rapidly progressive periodontitis, and then their papillary bleeding index(PBI) and probing depth were checked. Gingival tissues were surgically obtained from the patients during periodontal surgery, extraction, and clinical crown lengthening procedure. The activity of CuZn- and Mn- superoxide dismutase and catalase in the gingival tissues was measured by using UV-spectrophotometer by the same methods as Crapo et al. And Aebi did, respectively. The results were as follows : 1. CuZn- and Mn- and total-superoxide dismutase activity were significantly low in rapidly progressive periodontitis group in comparison to normal group (P<0.05). 2. In comparison of the antioxidant enzyme activity according to papillary bleeding index group(PBI), Mn-superoxide dismutase activity only was significantly lower in PBI 2, 3, and 4 groups than PBI 0 group(P<0.05). 3. Superoxide dismutase activity failed to show any significant difference according to probing depth. But significant]y high catalase activity was shown in deep pocket group (${\ge}7mm$)(P<0.05). In conclusion, these results suggest that the activity of Mn-superoxide dismutase among the antioxidant enzymes may reflect the inflammatory status of gingival tissue and that the decreased activity of superoxide dismutase may be one of responsibe factors for progression of rapidly progressive periodontitis.
The endogenous neurotoxin, 1-methyl-6,7-dihydroxy-1,2,3,4-tetrahydroisoquinoline (salsolinol), has been considered a potential causative factor for the pathogenesis of Parkinson's disease (PD). In the present study, we examined the pattern of human Cu,Zn-superoxide dismutase (SOD) modification elicited by salsolinol. When Cu,Zn-SOD was incubated with salsolinol, some protein fragmentation and some higher molecular weight aggregates were occurred. Salsolinol led to inactivation of Cu,Zn-SOD in a concentration-dependent manner. Free radical scavengers and catalase inhibited the salsolinol-mediated Cu,Zn-SOD modificaiton. Exposure of Cu,Zn-SOD to salsolinol led also to the generation of protein carbonyl compounds. The deoxyribose assay showed that hydroxyl radicals were generated during the oxidation of salsolinol in the presence of Cu,Zn-SOD. Therefore, the results indicate that free radical may play a role in the modification and inactivation of Cu,Zn-SOD by salsolinol.
Kim, Young-Mi;Lim, Jung-Mi;Kim, Byung-Chul;Han, Sanghwa
Molecules and Cells
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v.21
no.1
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pp.161-165
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2006
Dichlorodihydrofluorescein ($DCFH_2$) is a widely used probe for intracellular $H_2O_2$. However, $H_2O_2$ can oxidize $DCFH_2$ only in the presence of a catalyst, whose identity in cells has not been clearly defined. We compared the peroxidase activity of Cu,Zn-superoxide dismutase (CuZnSOD), cytochrome c, horseradish peroxidase (HRP), $Cu^{2+}$, and $Fe^{3+}$ under various conditions to identify an intracellular catalyst. Enormous increase by bicarbonate in the rate of $DCFH_2$ oxidation distinguished CuZnSOD from cytochrome c and HRP. Cyanide inhibited the reaction catalyzed by CuZnSOD but accelerated that by $Cu^{2+}$ and $Fe^{3+}$. Oxidation of $DCFH_2$ by $H_2O_2$ in the presence of a cell lysate was also enhanced by bicarbonate and inhibited by cyanide. Confocal microscopy of $H_2O_2$-treated cells showed enhanced DCF fluorescence in the presence of bicarbonate and attenuated fluorescence for the cells pre-incubated with KCN. Moreover, DCF fluorescence was intensified in CuZnSOD-transfected HaCaT and RAW 264.7 cells. We propose that CuZnSOD is a potential intracellular catalyst for the $H_2O_2$-dependent oxidation of $DCFH_2$.
In cytosolic (raction of adult Paragonimus westermani, superoxide dismutase activity was identified (4.3 units/mg of specific activity) using a xanthine-xanthine oxidase system. The enzyme was purified 150 fold in its activity using the ammonium sulfate precipitation, DEAE-Trisacryl M anion-exchange chromatography and Sephadex G-100 molecular sieve chromatography. The enzyme exhibited the enhanced activity at pH 10.0. The enzyme activity totally disappeared in 1.0mM cyanide while it remained 77.8% even in 10 mM azide. These findings indicated that the ensyme was Cu, Zn-SOD type. Molecular mass of the enzyme was estimated to be 34 kDa by gel filtration and 17 kDa on reducing SDS-polyacrylamide gel electrophoresis which indicated a dimer protein.
Membrane lipid peroxidation processes yield reactive aldehydes that may react with copper,zinc superoxide dismutase (Cu,Zn SOD), one of the key antioxidant enzymes against oxidative stress. We investigated this possibility and found that exposing Cu,Zn SOD to malondialdehyde (MDA) or 4-hydroxynonenal (HNE) caused the loss of dismutase activity, cross-linking of peptides, and an increase in protein oxidation, reflected by the increased level of carbonyl groups. When Cu,Zn SOD that had been exposed to MDA or HNE was subsequently analyzed by amino acid analysis, histidine content was found to be significantly lost. Both MDA-and HNE-treated Cu,Zn SOD were resistant to proteolysis, which may imply that damaged proteins exist in vivo for a longer period of time than the native enzyme. The lipid peroxidation-mediated damage to Cu,Zn SOD may result in the perturbation of cellular antioxidant defense mechanisms, and subsequently lead to a pro-oxidant condition.
The nonenzymatic glycation of copper, zinc-superoxide dismutase (Cu,Zn-SOD) led to inactivation and fragmentation of the enzyme. The glycated Cu,zn-SOD was isolated by boronate affinity chromatography. The formation of 8-hydroxy-2'-deoxyguanosine (8-OH-dG) in calf thymus DNA and the generation of strand breaks in pBhiescript plasmid DNA by a metal-catalyzed oxidation (MCO) system composed of $Fe^{3+}$, $O_2$, and glutathione (GSH) as an electron donor was enhanced more effectively by the glycated CU,Zn-SOD than by the nonglycated enzyme. The capacity of glycated Cu,Zn-SOD to enhance damage to DNA was inhibited by diethylenetriaminepentaacetic acid (DETAPAC), azide, mannitol, and catalase. These results indicated that incubation of glycated CU,Zn-SOD with GSH-MCO may result in a release of $Cu^{2+}$ from the enzyme. The released $Cu^{2+}$ then likely participated in a Fenton-type reaction to produce hydroxyl radicals, which may cause the enhancement of DNA damage.
To investigate the defense mechanism against the abiotic stress, a cDNA clone encoding a CuZn superoxide dismutase (CuZnSOD) protein was isolated from a cDNA library prepared from tabroot mRNAs of Codonopsis lanceolata. The eDNA, designated ClSODCc, is 799 nucleotides long and has an open reading frame of 459 bp with a deduced amino acid sequence of 152 residues. The deduced amino acid sequence of ClSODCc matched to the previously reported CuZnSODs. Consensus amino acid residues (His-45, -47, -62, -70, -79, -119 and Asp-82) were involved in Cu-, Cu/Zn-, and Zn- binding ligands. The deduced amino acid sequence of ClSODCc showed high homologies (82%-86%) regardless of species. Expression of ClSODCc by oxidative stress was increased up to 1 h after treatment and declined gradually. Much earlier and stronger expression of ClSODCc was observed in the cold stress treatment.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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