Ha, J.K.;Lee, S.S.;Kim, S.W.;Han, In K.;Ushida, K.;Cheng, K.J.
Asian-Australasian Journal of Animal Sciences
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v.14
no.6
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pp.797-802
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2001
Two strains of rumen fungi (Piromyces rhizinflata B157, Orpinomyces joyonii SG4) and three strains of rumen cellulolytic bacteria (Ruminococcus albus B199, Ruminococcus flavefaciens FD1 and Fibrobacter succinogenes S85) were used as mono-cultures or combinationally arranged as co- and sequential-cultures to assess the relative contributions and interactions between rumen fungi and cellulolytic bacteria on rice straw degradation. The rates of dry matter degradation of co-cultures were similar to those of corresponding bacterial mono-cultures. Compared to corresponding sequential-cultures, the degradation of rice straw was reduced in all co-cultures (P<0.01). Regardless of the microbial species, the cellulolytic bacteria seemed to inhibit the degradation of rice straw by rumen fungi. The high efficiency of fungal cellulolysis seems to affect bacterial degradation rates.
Protein productivity by the cellulolytic fungi, Trichoderma viride(MTCC 800), Chaetomium globosum and Aspergillus terreus was compared in co-culture and mixed culture fermentations of cashewnut bran. Co-cultures were more effective in substrate saccharification, which ranged between $85{\sim}88%$ compared to the $62{\sim}67%$ saccharification shown by the monocultures. Maximum saccharification was induced by T. viride and C. globosum co-culture resulting in the highest 34% release of reducing sugars. The maximum 16.4% biomass protein and the highest protein productivity(0.58%) were shown by T. viride and A. terreus co-culture. A. terreus performed better in co-culture in the presence of T. viride rather than with C. globosum. Among the cellulolytic enzymes, FPase(Filter Paper Cellulase) activity was significantly higher in all the co-cultures and in the mixed culture than in their respective monocultures. Mixed culture fermentation involving all the three fungi was not effective in increasing the per cent saccharification or the biomass protein content over the co-cultures.
Cheng, Yan Fen;Jin, Wei;Mao, Sheng Yong;Zhu, Wei-Yun
Asian-Australasian Journal of Animal Sciences
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v.26
no.10
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pp.1416-1423
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2013
The metabolomic profile of the anaerobic fungus Piromyces sp. F1, isolated from the rumen of goats, and how this is affected by the presence of naturally associated methanogens, was analyzed by nuclear magnetic resonance spectroscopy. The major metabolites in the fungal monoculture were formate, lactate, ethanol, acetate, succinate, sugars/amino acids and ${\alpha}$-ketoglutarate, whereas the co-cultures of anaerobic fungi and associated methanogens produced citrate. This is the first report of citrate as a major metabolite of anaerobic fungi. Univariate analysis showed that the mean values of formate, lactate, ethanol, citrate, succinate and acetate in co-cultures were significantly higher than those in the fungal monoculture, while the mean values of glucose and ${\alpha}$-ketoglutarate were significantly reduced in co-cultures. Unsupervised principal components analysis revealed separation of metabolite profiles of the fungal mono-culture and co-cultures. In conclusion, the novel finding of citrate as one of the major metabolites of anaerobic fungi associated with methanogens may suggest a new yet to be identified pathway exists in co-culture. Anaerobic fungal metabolism was shifted by associated methanogens, indicating that anaerobic fungi are important providers of substrates for methanogens in the rumen and thus play a key role in ruminal methanogenesis.
Journal of the Korean Association of Oral and Maxillofacial Surgeons
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v.28
no.2
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pp.114-125
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2002
This study was designed to evaluate the influence of fibroblasts or connective tissue from mouse oral mucosa on differentiation of neonatal mouse calvaria-derived osteoblasts and mineralization of bone nodules. Primary cell cultures from mouse calvarial osteoblasts and 2-4 passaged fibroblasts from oral mucosa were co-cultured in monolayer cultures, devided into 6 experimental group according to cell density or cell confluency. Osteoblasts were also co-cultured with fibroblasts in $Transwell^{(R)}$ culture plate with different co-cultured period according to osteoblast differentiation. The alkaline phosphatase activity were measured in monolayer cultures and cultures using $Transwell^{(R)}$. The mineralized bone nodules were presented by Von Kossa staining and density of mineralized nodules was measured by image analysis. The connective tissues with or without osteoblast seeding were cultured and examined histologically by Von Kossa and Trichrome Goldner staining. The results were as follows; 1. Prolonged maturation of matrix and delayed mineralization of bone nodules were resulted in monolayer cultures. 2. Co-culture of fibroblast with osteoblast using $Transwell^{(R)}$ during osteoblast proliferation stage stimulated proliferation of osteoblasts and increased alkaline phosphatase activity and mineralization of bone nodules. 3. Co-culture of fibroblast with osteoblast using $Transwell^{(R)}$ during matrix mineralization stage decreased and delayed mineralization of bone nodules. 4. In vitro cultured connective tissue with osteoblast seeding resulted in proliferation of osteoblasts and matrix formation with mineralization.
Baicalin is a flavonoid purified from the medicinal plant Scutellaria baicalensis. It has been reported that baicalin exhibits antibacterial, anti-inflammatory and analgesic effects. The present study was undertaken to determine the underlying cellular mechanisms of baicalin action in preosteoclasts. The effects of this flavonoid on preosteoclasts were determined by measuring osteoclast generation and osteoclast activity in macrophage-colony stimulating factor (M-CSF)-dependent bone marrow cells (MDBMCs) and in co-cultures of MDBMCs and osteoblasts. Osteoclast generation was assayed by measuring the number of tartrateresistant acid phosphatase (TRAP) (+) multinucleated cells after culture. Osteoclast activity was assayed by measuring the area of the resorption pit after culture. We found that osteoclast generation was induced by M-CSF and receptor activator of NF-kB ligand (RANKL), and by the 1.25-dihydroxycholecalciferol in our cultures. Baicalin decreased both osteoclast generation and activity in MDBM cultures and co-cultures indicating that it may inhibit bone resorption.
Characteristics of cell growth and poly(3-hydroxybutyrate-co-4-hydroxybutyrate) [P(3HB-co-4HB)] synthesis was investigated through flask and batch cultures of Alcaligenes latus and Comamonas acidovorans. The specific growth rate of C. acidovorans increased with yeast extract concentration and decreased with 1,4-butanediol concentration. Optimum glucose concentration for growth of C. acidovorans was 20 g/L. In one-step flask cultures of C. acidovorans, final dry cell weight and PHA content decreased with the ratio of 1,4-butanediol to glucose, while the 4HB fraction in copolymers gradually increased to 100 $mol\%$ with an initial 1,4-butanediol concentration of 20 g/L as single carbon source. The specific growth rate of A. latus decreased with v-butyrolactone concentration and optimum sucrose concentration for growth was 10 g/L. In batch cultures of A. latus, 4HB fraction increased with initial v-butyrolactone concentration. P(3HB-co-4HB) with 19 $mol\%$ 4HB was obtained when the initial ratio of v-butyloractone (g/L) to sucrose (g/L) was 10 : 10.
E. coli transformants EC3, EC4. and EC6. harboring citron oil degrading pathway genes, were co-cultured in M9 media with citron oil as a sole carbon source at 28$^{\circ}C$. Each co-culture(EC3+EC4, EC3+EC6, EC4+EC6 and EC3+EC4+EC6) showed three to four times higher cell growth than each transformant single culture. Microbial conversion products from the co-cultures were determined by GC-MS. Linalool. 4-terpineol and ${\alpha}$-terpineol were the major common products from co-cultures. Various minor products also were detected and important in flavor characteristics of cultures.
Our research objectives are to determine under what conditions microalgal-based $CO_2$capture from flue gases is economically attractive. Specifically, our objective here was to select microalgae that are temperature, pH and flue gas tolerant. Microalgae were grown under five different temperatures, three different pH and five different flue gas mixtures besides 100% $CO_2$(gas concentrations that the cells were exposed to ranged 5.7-100% $CO_2$, 0-3504ppm SO$_2$, 0-328ppm NO, and 0-126ppm NO$_2$). Our results indicate that the microalgal strains tested exhibit a substantial ability to withstand a wide range of temperature (54 strains tested), pH (20 strains tested) and flue gas composition (24 strains tested) likely to be encountered in cultures used for carbon sequestration from smoke stack gases. Our results indicate that microalgal photosynthesis is a limited but viable strategy for $CO_2$capture from flue gases produced by stationary combustion sources.
Irradiation with high doses of gamma rays induced the reduction of mycelial weight and anaylase activity, and increased relative amylase activity in surface cultures. Biphase in growth curves was shown in aeration-agitation cultures but the behavior of the first phase of growth could be eliminated by replacing the amylasehydrolysed starch substrates, so that enzyme production was shortened ca. 40 hours and relative amylase activity was increased about 3 times higher before onset of autolysis. In the effect of gibberellin on amylase production, the positive stimulation was appeared to only surface culturs of the liquid medium and the negative effect to shake-cultures in a mutant. Trials of various continuous culture were resulted not only the approalch to the value of amylase activity in surface cultures of liquid medium, but also higher productivity than in batch cultures. The culture-degeneration was observed in two-stage continuous culture, but did not appear in continuous elevation culture.
We inoculated different combinations of three starter candidates, Bacillus licheniformis, Staphylococcus succinus, and Tetragenococcus halophilus, into sterilized soybeans to predict their contributions to volatile compound production through soybean fermentation. Simultaneously, we added NaCl to soybean cultures to evaluate its effect on the volatile compounds profile. Cells in soybean cultures (1.5% NaCl) nearly reached their maximum growth in a day of incubation, while cell growth was delayed by increasing NaCl concentrations in soybean cultures. The dominance of B. licheniformis and S. succinus in the mixed cultures of three starter candidates switched to T. halophilus as the NaCl concentration increased from 1.5% to 14% (w/w). Seventeen volatile compounds were detected from the control and starter candidate-inoculated soybean cultures with and without the addition of NaCl. Principal component analysis of these volatile compounds concluded that B. licheniformis and S. succinus made major contributions to producing a specific volatile compound profile from soybean cultures where both species exhibited good growth. 3-Hydroxybutan-2-one, butane-2,3-diol, and 2,3,5,6-tetramethylpyrazine are specific odor notes for B. licheniformis, and 3-methylbutyl acetate and 2-phenylethanol are specific for S. succinus. Octan-3-one and 3-methylbutan-1-ol were shown to be decisive volatile compounds for determining the involvement of S. succinus in the soybean culture containing 7% NaCl. 3-Methylbutyl acetate and 3-methylbutan-1-ol were also produced by T. halophilus during soybean fermentation at an appropriate level of NaCl. Although S. succinus and T. halophilus exhibited growth on the soybean cultures containing 14% NaCl, species-specific volatile compounds determining the directionality of the volatile compounds profile were not produced.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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