Proteolytic enzymes responsible for post-mortem degradation of the fish tissues have been studied in regard with screening the proteases distributed in the fish body by reacting with the specific synthesized substrates. Activities of cathepsin L, B, H, G, and D like enzymes were detected in the muscle crude protease from the both kind of fish, dark fleshed fish (anchovy, Engraulis japonica, and gizzard-shad, Clupanodo punctatus) and white fleshed fish (seabass, Lateolabrax japonicus, and sole, Pleuronichthys cornutus), however, those of chymotrypsin, trypsin, pepsin, and peptidase like enzymes were observed 3n the viscera crude pretense from the fish. Proteolytic activities of the muscle crude protease at pH 6.0 were similar to those of the viscera crude protease at pH 8.0, but, those of the viscera crude protease at pH 8.0 were about 2 times higher than those at pH 6.0. The muscle and viscera crude protease from anchovy showed the strongest proteolytic activity among the four fish crude proteases and the proteolytic activity of the viscera crude protease was approximately 100 times higher than that of the muscle crude protease, which suggest that viscera proteases were more contributed on the development of post-mortem changes than muscle proteases. With the degradation patterns on SDS-polyacrylamide gel electrophoresis against yellowtail myofibrillar proteins, the muscle and viscera crude protease of the four fishes were primary responsible for the degradation of myosin heavy chain, and myosin light chain and actin, respectively.
The spr D gene encoding Strptomyces griseus protease D(SGPD); a chymotrypsin-like proteae, was cloned from Strptomyces griseus IFO13350 and sequence. Most of the amino-acid sequence deduced from the nucleotide sequence is idential to that Strptomyces griseus IMRU3499 except that one amino acid has been deleted and Trp 369 has been substituted into Cys369 in the SGPD from S. griseus IFO13350 without affecting the protease activity. The spr D gene was overexpressed in Streptomyce liv-idans TK24 as a heterologous host. Various media with different compositions were also used to max-imize the productivity of SGPD inthe heterologous host. The SGPD productivity was best when the transformant S. lividans TK24 was cultivated in R2YE medium. The relative chymotrypsin activity of the culture broth measured with an artificial chromogenic substrate, N-scuccinyl-ala-ala-pro-phe-p-nitroanilide, was 16 units/ml. A high level of SGPD was also produced in YEME and SAAM medial but it was relatively lower that in R2YE medium and negligible amounts of SGPD were produced in GYE, GAE and Benedict media. The growth of S. lividans reacted the maximum level of cell mass at days 3 and 4 of the culture, but SGPD production started in the stationary phase of cell growth and kept increase in till the 10$^{th}$ day of culture in R2YE and YEME medium, but in GYE media the productivity reached maximum level at 8days of cultivation. The introduction of the spr D gene into S. lividans TK24 triggered biosyntheis of the pigmented antibiotic , actinorhodin, which implies some protease may paly a very improtant role in secondary-metabolite formation in sStreptomyces.
The fibrinolytic activities of soluble proteins extracted from seeds of Coix lacryma-jobi L., Carthamus tinctorius L. and Malva venicillata L. were studied. Fibrinolytic activity of extract from C. lacryma-jobi L. showed 1.3 times higher than plasmin used as positive control. The fibrinolytic enzyme was confirmed and extracted directly from seed of C. lacryma-jobi L. by a fibrin zymography. The protein was composed of a single polypeptide and its apparent molecular weight was found to be 7.8 kDa, as judged by SDS-polyacrylamide gel electrophoresis. The effect of temperature for the proteolytic enzyme activity were stabilized above $50^{\circ}C$ and then dramatically decreased. Also, the enzyme activity was clearly inhibited by APMSF, PMSF and TPCK, suggesting that it is a member of the chymotrypsin-like serine pretense. In addition, effects of gamma-irradiated on seed of each plants were revealed that 8 Gy and 64 Gy were higher than others. This result shown that gamma-irradiation of seeds were capable to increase the fibrinolytic activity. All these results suggest the pretense is a fibrinolytic enzyme belong to a family of chymotrypsin-like serine pretense.
Trypsin-like enzyme was purified from shrimp hepatopancreas through Q-Sepharose ionic exchange, benzamidine Sepharose-6B affinity, and Superdex 75 gel chromatography. Purity of trypsin-like enzyme was increased 69-fold with $44\%$ yield. The enzyme consisted of a single polypeptide chain with a molecular weight (M.W.) of 32 kDa judged by sodium dodecylsulfate polyacrylamide gel electrophoresis (SDS-PAGE). The enzyme was completely inactivated by serine enzyme inhibitors such as soybean trypsin inhibitor (SBTI), tosyl-Llysine chloromethyl ketone (TLCK), and leupeptin. However, the enzyme was not affected by tosyl-L-phenylalanine chloromethyl ketone (TPCK) which is a chymotrypsin specific inhibitor. The enzyme had no activity against benzoyl-tyrosine ethyl ester (BTEE) which is a chymotrypsin specific substrate. The enzyme showed high activity on the carboxyl terminal of Phe, Tyr. Glu, Arg, and Asp. However. no activity was detected against the carboxyl terminal of Pro, Trp, Cys, Gly, Val, and Ala.
The sprA and sprB gene encoding chymotrypsin-like proteases Streptomyces griseus protease A (SGPA) and Streptomyces griseus protease B (SGPB) and the sprT gene that encodes Streptomyces griseus trypsin (SGT) were cloned from Streptomyces griseus ATCC10137 and overexpressed in Streptomyces lividans TK24 as a heterologous host. The chymotrypsin activity of tole culture broth measured with the artificial chromogenic substrate , N-succinyl-ala-ala-pro-phe-p-nitroanilide, was 10, 14 and 14 units/mg in the transformants haboring the sprA, sprB and sprD genes, respectively. The growth of S. lividans reached the maximum cell mass after 4 days of culture, yet SGPA and SGPD production started in the stationary phase of cell growth and kept increasing for up to 10 days of culture in an R2YE medium. The trypsin activity of the culture broth measured with the artificial chromogenic substrate , N-${\alpha}$-benzoyl-DL- arginine-p-nitroanilide , was 16 units/mg and SGT production started in the stationary phase of cell growth and kept increasing for up to 10 days of culture in an R2YE medium. The introduction of the sprA gene into S, lividans TK24 triggered the biosynthesis of pigmented antibiotics, actinorhodin and undecylprodigiosin, and induced significant morphological changes in the colonies in Benedict, R2YE, and R1R2 media. In addition, the introduction of the sprT gene also induced morphological changes in the colony shape without affecting the antibiotic production, thereby implying that certain proteases would appear to play very important and specific roles in secondary-metabolites formation and morphological differentiation in Streptomyces.
In this study we purified a fibrinolytic enzyme from Cordyceps militaris using a combination of ion-exchange chromatography on a DEAE Sephadex A-50 column, gel filtration chromatography on a Sephadex G-75 column, and FPLC on a HiLoad 16/60 Superdex 75 column. This purification protocol resulted in a 191.8-fold purification of the enzyme and a final yield of 12.9 %. The molecular mass of the purified enzyme was estimated to be 52 kDa by SDS-PAGE, fibrin-zymography, and gel filtration chromatography. The first 19 amino acid residues of the N-terminal sequence were ALTTQSNV THGLATISLRQ, which is similar to the subtilisin-like serine protease PR1J from Metarhizium anisopliae var. anisopliase. This enzyme is a neutral protease with an optimal reaction pH and temperature of 7.4 and $37^{\circ}C$, respectively. Results for the fibrinolysis pattern showed that the enzyme rapidly hydrolyzed the fibrin $\alpha$-chain followed by the $\gamma$-$\gamma$ chains. It also hydrolyzed the $\beta$-chain, but more slowly. The A$\alpha$, B$\beta$, and $\gamma$ chains of fibrinogen were also cleaved very rapidly. We found that enzyme activity was inhibited by $Cu^{2+}$ and $Co^{2+}$, but enhanced by the additions of $Ca^{2+}$ and $Mg^{2+}$ ions. Furthermore, fibrinolytic enzyme activity was potently inhibited by PMSF and APMSF. This enzyme exhibited a high specificity for the chymotrypsin substrate S-2586 indicating it's a chymotrypsin-like serine protease. The data we present suggest that the fibrinolytic enzyme derived from the edible and medicinal mushroom Cordyceps militaris has fibrin binding activity, which allows for the local activation of the fibrin degradation pathway.
Distribution of the proteolytic activities of crude pretense extracted from the viscera of ten kinds of fish was examined. Their proteolytic activities on proteinous substrates (azocasein, hemoglobin, and casein) from the viscera of anchovy, bastard flatfish, mackerel and red sea bream were higher than those of other fishes, and the crude pretenses were further fractoinated with acetone or ammonium sulfate. Optimum concentrations for pretenses fractionation were $0\~55\%$ for acetone and $30\~70\%$ for ammonium sulfate. The fractionated viscera pretense of mackerel showed the highest proteolytic activity among four kinds of fishes. Activities of cathepsin D- and pepsin-like enzymes at pH 3.0, cathepsin L-, B-, H- and G-like enzyme at pH 6,0, and Hypsin- and chymotrypsin- like enzymes (pH 8.0) were detected in the fractionated viscera pretense, whereas activities of cathepsin L- and chymoeypsin-like enzyme were observed in commercial pretenses. Proteolytic activities of Alcalase, Protamex, and Aroase AP-10 for azocasein were slightly higher than the fractionated viscera pretenses, but their amidolytic activities at pH 6.0 and 8.0 toward synthetic substrates were lower than counterpart. The fractionated pretenses from fish viscera would be utilized as commercial pretenses.
Kim, Dong-Young;Kim, Dong-Ryoung;Ha, Sung-Chul;Neratur K.Lokanath;Hwang, Hye-Yeon;Kim, Kyeong-Kyu
Proceedings of the Korea Crystallographic Association Conference
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2002.11a
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pp.24-24
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2002
HtrA (high temperature requirement A), a periplasmic heat shock protein, is known to have molecular chaperone function at low temperatures and proteolytic activity at elevated temperatures. To investigate the mechanism of functional switch to pretense, we have determined the crystal structure of the N-terminal protease domain (PD) of HtrA from Thermotoga maritima. HtrA PD shares the same fold with chymotrypsin-like serine professes. However, crystal structure suggests that HtrA PD is not an active pretense at current state since its active site is not formed properly and blocked by an additional helical lid. On the surface of the lid, HtrA PD has hydrophobic patches that could be potential substrate binding sites for molecular chaperone activity. Present structure suggests that the activation of the proteolytic function of HtrA PD at elevated temperatures might occur by the conformational change.
Lactococcus lactis NK34, isolated from jeotgal (Korean traditional fermented fish), produces bacteriocin against bovine mastitis pathogens such as Staphylococcus aureus 7, S. aureus 8, Staphylococcus chromogenes 10, S. chromogenes 19, Staphylococcus hominis 9, Streptococcus uberis E290, Enterococcus faecium E372, Streptococcus agalactiae ATCC 13813, Pseudonocardia autotrophia KCTC 9455, and Staphylococcus simulans 78. Lacticin NK34 was inactivated by protease XIV but not by protease IX, protease XIII, proteinase K, $\acute{a}$-chymotrypsin, trypsin, and pepsin. Also, lacticin NK34 was stable over a pH range of 2 to 9 for 4 hr and withstood exposure to temperatures of 30-$100^{\circ}C$ for 30 min. Lacticin NK34 showed bactericidal effects against S. simulans 78. This bacteriocin was purified using ammonium sulfate precipitation, ion exchange chromatography, ultrafiltration, and hydrophobic chromatography. Tricin-SDS-PAGE of purified bacteriocin gave the same molecular weight (3.5 kDa) as nisin. The gene encoding this bacteriocin was amplified by PCR using nisin gene-specific primers. It showed similar sequences to this nisin Z gene. These results indicate that lacticin NK34 is a nisin-like bacteriocin, and could be used as an antimicrobial alternative for livestock.
Among 68 strains of lactic acid bacteria (LAB) isolated from Dongchimi, a strain K11 was selected due to its bactericidal activity against Escherichia coli O157 The strain K11 was identified as Lactobacillus plantarum, based on physiological and biochemical characteristics. In the late exponential phase, La. plantarum K11 showed maximum bacteriocin activity (12,800 BU/mL) and maintained until the early stationary phase. The bacteriocin activity was completely inactivated by all the proteolytic enzymes such as pepsin, protease, proteinase K, papain, chymotrypsin, and trypsin, but the activity was not affected by catalase, a-amylase, lysozyme, and lipase, suggesting proteinaceous nature of the bacteriocin. Additionally, this activity was not affected in the pH range from 3.0 to 9.0 and under storage conditions like 30 days at -20,4, or $25^{\circ}C$. Although the bacteriocin activity was absolutely lost after 15 min treatment at 121, it was relatively stable at $70^{\circ}C$ for 60 min or $100^{\circ}C$ for 30 min. The activity was disappeared by treatment with acetone, benzene, ethanol, or methanol, but it was not affected by treatment with chloroform or hexane. The antibacterial activity of the bacteriocin was good against some LAB including Lactobacillus spp., Enterococcus spp., and Streptococcus spp., but not against food-borne pathogens such as Bacillus spp., Listeria spp., and Staphylococcus spp. as well as yeasts and molds. Especially, some intestinal bacteria such as Enterobacter aerogenes and E. coli were significantly affected by the bacteriocin of La, plantarum K11. Furthermore, the addition of 640 BU/mL resulted in the complete clearance of E. coli O157 after 10 hr.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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