This survey was conducted to promote the environment-friendly use and recycling of livestock feces by obtaining information about the current state of livestock feces composts manufactured in Gyeonggi Province. Therefore, some aspects of quality and manufacturing techniques of livestock feces composts (LFCs) were examined especially in relation to the LFCs quality standard (LQS). By surveying the 70 composting plants in Gyeonggi Province, the total commercial production of LFCs in 2008 was estimated to be about $480,000Mg\;year^{-1}$ and they were manufactured mainly by using both mechanical mixer and bottom air blower. LFCs were composed mainly of chicken feces 29.2%, pig+chicken feces 23.1%, pig feces 20.0%, livestock feces+oil cake 12.3%, pig+chicken+cattle feces 10.8% and pig+cattle feces 4.6%. On the basis of the current official standard which was revised on March 2010, 11 composts out of surveyed 76 ones did not meet the LQS due to inadequate content of water (5), OM/N (1), NaCl (2) and Zn (3). The satisfaction rate to LQS by manufacturers was 100% in the composts produced by farmer's cooperative societies, 80.7% by civil factories, and 44.4% by farming guilds, respectively. The OM/N declined by adding chicken feces and oil cake, while Ca content was increased by the addition of chicken feces and NaCl was increased by adding cattle feces.
Kim, Hyeri;Cho, Jin Ho;Song, Minho;Cho, Jae Hyoung;Kim, Sheena;Kim, Eun Sol;Keum, Gi Beom;Kim, Hyeun Bum;Lee, Ju-Hoon
Journal of Microbiology and Biotechnology
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제31권12호
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pp.1701-1708
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2021
Food safety is the most important global health issue due to foodborne pathogens after consumption of contaminated food. Foodborne bacteria such as Escherichia coli, Salmonella enterica, Staphylococcus aureus, Campylobacter spp., Bacillus cereus, Vibrio spp., Yersinia enterocolitica and Clostridium perfringens are leading causes of the majority of foodborne illnesses and deaths. These foodborne pathogens often come from the livestock feces, thus, we analyzed fecal microbial communities of three different livestock species to investigate the prevalence of foodborne pathogens in livestock feces using metagenomics analysis. Our data showed that alpha diversities of microbial communities were different according to livestock species. The microbial diversity of cattle feces was higher than that of chicken or pig feces. Moreover, microbial communities were significantly different among these three livestock species (cattle, chicken, and pig). At the genus level, Staphylococcus and Clostridium were found in all livestock feces, with chicken feces having higher relative abundances of Staphylococcus and Clostridium than cattle and pig feces. Genera Bacillus, Campylobacter, and Vibrio were detected in cattle feces. Chicken samples contained Bacillus, Listeria, and Salmonella with low relative abundance. Other genera such as Corynebacterium, Streptococcus, Neisseria, Helicobacter, Enterobacter, Klebsiella, and Pseudomonas known to be opportunistic pathogens were also detected in cattle, chicken, and pig feces. Results of this study might be useful for controlling the spread of foodborne pathogens in farm environments known to provide natural sources of these microorganisms.
Streptococcus hyointestinalis B19 was isolated from chicken feces collected from local farm in Anseong, Korea. S. hyointestinalis B19 was shown to produce bacteriocin-like compounds exhibiting inhibitory activities against several pathogens including strains of Clostridium perfringens and Listeria monocytogenes. The whole genome of S. hyointestinalis B19 strain was sequenced using PacBio RS II platform. The genome comprised four contigs with a size of 2,217,061 bp. The DNA G + C content was found to be 42.95 mol%. Annotation results revealed 2,266 coding sequences (CDSs), 18 rRNAs, and 61 tRNA genes. Based on genome analysis, we found that the strain B19 possessed various genes associated with bacteriocin synthesis, modification, and transport.
The purpose of this study was to investigate the antibiotic resistance pattern of E. coli and Salmonella spp. isolated from chicken feces. One hundred and forty-seven E. coli isolates showed resistance to tetracycline (95.2%), erythromycin (89.2%), ampicillin (70.1%), streptomycin (59.2%), cephalothin (56.5%), sulfamethoxazole/trimethoprim (53.7%), ciprofloxacin (57.1%), enrofloxacin (59.2%) and norfloxacin (57.1%). The multiple resistance was seen in 144 isolates (97.9%) and the rate of five, six and seven drugs resistance pattern were 20.4%, 18.4% and 16.3%, respectively. Also, the multiple resistance of E. coli to twelve drugs were seen in 1 isolates (0.7%). Fourteen Salmonella spp. showed resistance to ampicillin (50.0%), streptomycin (57.1%), erythromycin (64.3%) and tetracycline (57.1%) and the rate of two and three drugs resistance pattern were 4 isolates (28.6%), respectively. The prevalence of resistant organisms in Korea probably reflects lack of proper antibiotic policy resulting in prolonged and indiscriminate use of antimicrobial agents.
Beef, pork, chicken and milk are considered representative protein sources in the human diet. Since the digestion of protein is important, the role of intestinal microflora is also important. Despite this, the pure effects of meat and milk intake on the microbiome are yet to be fully elucidated. To evaluate the effect of beef, pork, chicken and milk on intestinal microflora, we observed changes in the microbiome in response to different types of dietary animal proteins in vitro. Feces were collected from five 6-week-old pigs. The suspensions were pooled and inoculated into four different media containing beef, pork, chicken, or skim milk powder in distilled water. Changes in microbial communities were analyzed using 16S rRNA sequencing. The feces alone had the highest microbial alpha diversity. Among the treatment groups, beef showed the highest microbial diversity, followed by pork, chicken, and milk. The three dominant phyla were Proteobacteria, Firmicutes, and Bacteroidetes in all the groups. The most abundant genera in beef, pork, and chicken were Rummeliibacillus, Clostridium, and Phascolarctobacterium, whereas milk was enriched with Streptococcus, Lactobacillus, and Enterococcus. Aerobic bacteria decreased while anaerobic and facultative anaerobic bacteria increased in protein-rich nutrients. Functional gene groups were found to be over-represented in protein-rich nutrients. Our results provide baseline information for understanding the roles of dietary animal proteins in reshaping the gut microbiome. Furthermore, growth-promotion by specific species/genus may be used as a cultivation tool for uncultured gut microorganisms.
본 연구는 산화제인 이산화염소 처리가 계분의 악취 저감에 미치는 영향을 평가하기 위해 수행되었다. 실험 1과 2 모두 대조구(증류수 첨가), PC(potassium monopersulfate triple salt, 상업용 살균제 첨가), T2000(2,000 ppm ClO2 첨가), T3000(3,000 ppm ClO2 첨가)로 총 4개의 처리구로 구성되었다. 실험 1과 2 모두 계분을 함유한 가스백을 밀봉하여 수행되었으며 첨가수준은 동일하나 실험 1에서는 배양 10일 동안의 첨가량을 실험 시작 시 한 번에 투여하여 10일 동안 배양하였고, 실험 2에서는 배양 동안 매일 1 mL씩 투여하여 총 14일 동안 배양하였다. 배양 기간 중 가스를 포집하여 총 가스발생량과 악취를 유발하는 NH3와 H2S 가스를 측정하였다. 배양 종료 후에는 가스백을 개봉하여 DM, pH, ammonia-N, VFA, 계분 내 미생물(총 미생물 수, 유산균, 효모, 곰팡이, 대장균군)을 분석하였다. 계분 내 미생물 수는 실험 1에서는 대조구와 비교하여 유의적인 차이를 보이지 않았으나, 실험 2의 T3000 처리구에서 대장균군의 수가 대조구보다 낮게 검출되었으며(P<0.05) 그 외 미생물 수는 대조구와 유의적인 차이가 없었다. 그러나 실험 1과 2에서 이산화염소 처리구가 대조구보다 pH, ammonia-N, VFA, 총 가스발생량, NH3와 H2S 가스의 농도 및 발생량이 유의적으로 낮게 나타났다(P<0.05). 이러한 결과는 이산화염소 처리 시 대장균군의 수는 감소하지 않았으나 대장균군의 비활성화 (실험 1) 또는 대장균군의 감소(실험 2)를 통한 악취 물질 생성 감소 및 산화로 인해 악취가 저감된 것으로 판단된다. 추가적으로, 실험 1과 실험 2의 결과를 종합하였을 때 ammonia-N, VFA, 총 가스발생량, NH3와 H2S 가스는 T2000에서 대조구보다 낮게 검출되었으며 T3000과는 유의적인 차이를 보이지 않은 점으로 판단하건대 T2000의 첨가수준도 악취저감에 효과적이라고 사료된다. 또한, 첨가제를 한번에 투여한 실험 1과 매일 투여한 실험 2는 배양 기간이 다르므로 직접 비교할 수는 없으나 투여방법에 따른 차이는 없는 것으로 추정된다.
To investigate the epidemiological trait of listeriosis, Listeria spp were isolated from poultry meat, products and environmental specimens in chicken slaughterhouse. Also determined were isolation rates by the different enrichment procedures, the biochemical properties of isolates. In a total of 307 samples including poultry meat, liver, feathers, feces, chiller water, scalding water overflow and slaughterhouse floor, Listeria spp were isolated predominantly from scalding water overflow (90.0%), body skin before washing (66.7%), liver (20.0%) and feathers(15.0%) However, few Listeria spp were isolated from body skin after washing and feces. The higher isolation rates were obtained in the secondary enrichment procedure (7.2%) than in the primary enrichment (3.9%); after stored the secondary enrichment cultures for 2 weeks at $4^{\circ}C$, Listeria spp were present in 9.8%. The majority of the isolated Listeria spp were identical to those of the standards strains in biochemical and cultural properties. Overall, Listeria spp were present in 13.4% of the specimens tested, and were in order of prevalence of L innocua(11.1%), L monocytogenes(3.3%), L grayi(0.7%) and L murrayi(0.3%).
This study was performed to screen and select Lactobacillus strains from chicken feces for probiotic use in animals. Of these strains, strain AU had the highest immunostimulatory effect. Therefore, strain A12 was characterized as a potential probiotic. Strain A12 was tentatively identified as Lactobacillus acidophilus A12, using the API 50 CHL kit based on a 99.9% homology. L. acidophilus A12 was highly resistant to artificial gastric juice (pH 2.5) and bile acid (oxgall). Based on results from the API ZYM kit, leucine arylamidase, crystine arylamidase, acid phosphatase, naphthol-AS-BI-phosphohydrolase, ${\alpha}$-galactosidase, ${\beta}$-galactosidase, ${\alpha}$-glucosidase, ${\beta}$-glucosidase, and N-acetyl-${\beta}$-glucosamidase were produced by strain A12. L. acidophilus A12 showed resistance to several antibiotics (nisin, gentamicin, and erythromycin). The amount of interleukin $(IL)-1{\alpha}$ in $20{\times}$ concentrated supernatant from L. acidophilus A12 was approximately 156pg/ml. With regard to antioxidant activity, L. acidophilus A12 supernatant showed 60.6% DPPH radical scavenging activity. These results demonstrate the potential use of L. acidophilus A12 as health-promoting probiotics.
The principal objective of this study was to screen and select acid-tolerant Lactobacillus strains from chicken feces, feeds, and other sources. Fourty six strains evidencing acid tolerance (pH 3.5) were isolated in this study. Among them, nine strains exhibited marked immunostimulatory effects. Therefore, nine candidate strains were characterized for probiotic use. In order to evaluate macrophage activation, NO production was measured using RAW 264.7 cells. In particular, three strains (FC812, FC222, and FC113) evidenced the highest levels of NO production measured at $38.39{\pm}20.01,\;35.06{\pm}27.73$, and $33.88{\pm}15.99{\mu}M$, respectively, at a concentration of $10^{8}CFU/mL$. The majority of strains, with the exception of strain FC322, evidenced marked resistance to artificial gastric juice (pH 2.5 with 1%(w/v) pepsin). Additionally, strains FC222, FC421, FC511, and FC721 were highly resistant to artificial bile acid (0.1%(w/v) oxgall), whereas strains FC113, FC322, FC422, FC621, and FC812 were the least resistant to bile. All nine strains exerted antimicrobial effects against chickenrelated pathogens. Additionally, all nine strains were found to be resistant to several antibiotics. The isolated strains, except for strain FC322, were tentatively identified as Lactobacillus salivarius, using an API 50 CHL kit. These results demonstrate that some probiotic organisms may potentially probiotic properties, and thus may serve as an effective alternative to antibiotics in animal applications.
This study was carried out to investigate the antibiotic resistance pattern of Enterococcus spp. and Staphylococcus aureus (S. aureus) isolated from chicken feces. All isolates showed high resistance to erythromycin (E) and tetracycline (TE). Of the 63 Enterococcus faecalis (E. faecalis) isolates, 73.0% were resistant to E and 98.4% to TE. Of the 44 Enterococcus faecium (E. faecium) isolates, 50.0% were resistant to E and 95.5% to TE. Of the 52 S. aureus isolates, 57.6% were resistant to E and 96.2% to TE. The prevalence of two and three drugs resistance pattern were 28.6% and 17.5% of E. faecalis, 40.9% and 25.0% of E. faecium and 38.5% and 23.1% of S. aureus, respectively. The multiple resistance pattern to six drugs was observed in 1 E. faecalis isolates, and five drugs resistance pattern were seen in 1 E. faecalis, 1 E. faecium and 1 S. aureus isolates. The prevalence of resistant organisms in Korea probably reflects lack of proper antibiotic policy resulting in prolonged and indiscriminate use of antimicrobial agents.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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