Kim, Sung Hak;Choi, Ji Young;Sihn, Choon-Ryoul;Suh, Eun Jung;Kim, Sun Young;Choi, Kang Duk;Jeon, Iksoo;Han, Jae Yong;Kim, Tae-Yoon;Kim, Sang Hoon
Molecules and Cells
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제19권2호
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pp.185-190
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2005
The chicken oviduct is a dynamic organ that produces secretory proteins such as ovalbumin and its cells undergo cell proliferation and differentiation. There has been no study of the cellular mechanism involved in cell death in the chicken oviduct. Therefore, this study has focused on the study of apoptosis in primary oviduct cells. Because ceramide is known to activate apoptosis in tumor cells and is produced in the oviduct, we used an exogenous ceramide analog to induce cell death. The viability of ceramide-treated chicken oviduct cells decreased in a dose-dependent manner and apoptotic cells were detected by staining with annexin V. The expression of apoptosis-related genes was assessed by RT-PCR and bcl-2 mRNA was found to decrease after exposure to ceramide while Bcl-x mRNA increased 12 h post-treatment. In addition, caspase-3 was expressed strongly in the early stages of apoptosis, while caspase-1 and -9 transcripts increased at later times. We conclude that ceramide induces apoptosis in oviduct-derived primary cells via a caspase- and bcl-2-dependent pathway.
Yang, Hyeon;Lee, Bo Ram;Lee, Hwi-Cheul;Jung, Sun Keun;Kim, Ji-Youn;No, Jingu;Shanmugam, Sureshkumar;Jo, Yong Jin;Lee, Haesun;Hwang, Seongsoo;Byun, Sung June
Animal Bioscience
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제34권8호
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pp.1321-1330
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2021
Objective: Transgenic hens hold a great promise to produce various valuable proteins. Through virus transduction into stage X embryo, the transgene expression under the control of constructed chicken ovalbumin promoters has been successfully achieved. However, a validation system that can evaluate differently developed ovalbumin promoters in in vitro, remains to be developed. Methods: In the present study, chicken oviduct epithelial cells (cOECs) were isolated from oviduct tissue and shortly cultured with keratinocyte complete medium supplemented with chicken serum. The isolated cells were characterized with immunofluorescence, western blot, and flow cytometry using oviduct-specific marker. Chicken mutated ovalbumin promoter (Mut-4.4-kb-pOV) was validated in these cells using luciferase reporter analysis. Results: The isolated cOECs revealed that the oviduct-specific marker, ovalbumin protein, was clearly detected by immunofluorescence, western blot, and flow cytometry analysis revealed that approximately 79.40% of the cells contained this protein. Also, luciferase reporter analysis showed that the constructed Mut-4.4-kb-pOV exhibited 7.1-fold (p<0.001) higher activity in the cOECs. Conclusion: Collectively, these results demonstrate the efficient isolation and characterization of cOECs and validate the activity of the constructed ovalbumin promoter in the cultured cOECs. The in vitro validation of the recombinant promoter activity in cOECs can facilitate the production of efficient transgenic chickens for potential use as bioreactors.
Jang, Tae Young;Koo, Bon Chul;Kwon, Mo Sun;Roh, Ji Yeol;Kim, Teoan;Park, Young Sik
Reproductive and Developmental Biology
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제37권3호
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pp.91-96
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2013
Transgenic chickens have been spotlighted as an highly potent bioreactor for their fecundity, short generation time, and eggs associated with mass production of protein. In this study, we generated transgenic chickens exhibiting oviduct specific expression of human growth hormone fused to human transferrin for oral administration. Gene of the modified growth hormone located at downstream ovalbumin promoter (~3.6 kb) was introduced to stage X blastodermal cell employing retrovirus vector system. Several transgenic chickens were successfully generated. However, genomic analyses showed unexpected deletion within the transgene. The modification of the transgene seemed to occur during germ cell formation because the deletion was detected only from the sperm DNA of the G0 founder animal. There was no evidence of deletion in the somatic cell DNA samples of the same chicken. Consequently, same pattern of the deletion was confirmed in both somatic and germ cells of the G1 progeny.
Beta-catenin (CTNNB1, catenin (cadherin-associated protein), beta 1) is involved in various biological processes, including embryogenesis, tumorigenesis, angiogenesis and progression of metastasis. CTNNB1, as a multifunctional and oncogenic protein, has important roles in adhesion between Sertoli cells through an N-cadherin-dependent manner and in various cancer types through its over-activation. In addition, CTNNB1 can interact with estrogen/estrogen receptor alpha complex, which regulates the transcription of WNT (wingless-type MMTV integration site family)/CTNNB1 target genes. Recently, we investigated the functional roles and expression pattern of CTNNB1 during the morphological changes of embryonic gonads of chickens and the estrogen-dependent regulation of CTNNB1 in oviduct development and potential functions as a biomarker of CTNNB1 in human epithelial ovarian cancer using the chicken as a biological research model. Therefore, in this review, we provide a new insight of potential role of CTNNB1 in the development of the female reproductive tract during early embryogenesis and ovarian carcinogenesis of laying hen models.
Seo, Hee-Won;Kim, Sun-Young;Shin, Sang-Su;Kim, Tae-Min;Lee, Young-Mok;Lee, Bo-Ram;Kim, Tae-Wan;Lim, Jeong-Mook;Han, Jae-Yong
한국가금학회:학술대회논문집
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한국가금학회 2006년도 제23차 정기총회 및 학술발표회
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pp.80-81
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2006
닭의 유전자 지도가 밝혀지고 그와 관련한 생물학적 연구들이 활발히 이루어지면서 닭을 생체 반응기나 질병 모델 동물로 이용하기 위한 연구가 많이 진행되고 있다. 이 중 닭을 생체 반응기로 이용하기 위해서는 많은 양의 단백질을 생산하는 난관에 대한 연구가 필수적이다. In vivo와 in vitro에서 난관 특이적 프로모터에 의한 외래 유전자의 발현에 대한 연구를 하였고 유전자를 전이하는 방법으로는 렌티 바이러스 시스템을 이용하였으며, 프로모터는 난관 특이적 프로모터인 오브알부민 프로모터 (5‘ 조절 부분의 1.4kb)와 RSV 프로모터를 이용하였다. 리포터 유전자로는 형광발현 단백질 (enhanced green fluorescence protein, EGFP)을 이용해서 마우스 배아 섬유아세포, 닭 배아 섬유아세포, 난관 상피 세포에서 발현을 유도해서 조직 특이적 발현 여부를 확인하였다. 그 결과 RSV 프로모터는 모든 세포에서 발현하였으나, 오브알부민 프로모터에 의한 리포터 유전자의 발현은 난관 상피 세포에서는 특이적으로 발현하였다. 이와 같은 연구는 산란계를 이용해서 난관으로부터 효율적인 생리 활성 물질을 생산하기 위한 가능성을 보여주었다.
계란의 난각은 닭의 자궁에서 형성되는 복잡하고 고도화된 다층 석회화 구조이다. 본 연구는 닭의 산란연령에 따른 자궁내막조직의 변화 양상과 난각 형성에 관여하는 주요 유전자들의 발현 양상을 고찰하였다. 난각 형성과 관련하여 난각 단백질과 관련한 OCX-32, OCX-36, OC-17, OC-116 유전자와 난각 이온과 관련한 CALB1, SPP1, SCNN1G, ATP2A2, CA2, CALM1 유전자를 분석대상으로 하였다. 자궁내막조직의 현미경적 관찰 결과, 연령이 증가함에 따라, 자궁 섬모상피세포의 탈락 및 세포의 위축과 섬유화 진행양상이 심화되었다. 그러나 연령 증가에 따른 혈중 이온성분의 농도차이는 없었다. 자궁내막 상피세포의 텔로미어 함량 분석 결과, 산란연령이 증가함에 따라 텔로미어 함유율이 감소됨을 확인하였다. 대부분의 난각 형성 관련 유전자의 발현량은 산란연령에 따라 유의한 변화를 나타내었다. 일부 난각 단백질 관련 유전자의 발현량은 산란연령이 증가함에 따라 증가양상을 보였으나, 이들 유전자들 간의 상호 관련성은 유의한 관계를 보이지 않았다. 난각 형성 이온 관련 유전자인 ATP2A2, SCNN1G, CA2, CALM1 유전자 간에는 상호 밀접한 관련이 있는 것으로 나타났다. 또한 난각 단백질 관련 OCX-32 및 OCX-36 유전자는 대부분의 이온 관련 유전자들과 높은 정의 상관을 보였다. 따라서 OCX-32, OCX-36, CALB-1, ATP2A2, SCNN1G, CA2 및 CALM1유전자들이 난각 형성에 상호 협력하거나 또는 독립적으로 작용한다. 결론적으로 산란연령이 증가함에 따라 자궁내막세포의 손상이 일어나지만, 그럼에도 불구하고 정상적인 난각을 형성할 수 있는 이유는 난각 단백질 및 난각 형성 이온 관련 일부 유전자들이 발현을 조절하여 난각 형성의 항상성 유지하기 때문인 것으로 사료된다.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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