Ceramide has been involved in celt death and acted as a lipid mediator of stress responses. Elevation of ceramide level was reported to occur in oxidative stress and lead to cell death in many cell types. This study was undertaken to elucidate a protective role of ginsenoside Rgl in cell death induced by oxidative stress. When LLC-PK1 cells were treated with $H_2O_2$ at a concentration of $400{\mu}M$ for 5 hr, cell death was observed and a released LDH activity indicative of cytotoxicity was Increased. $H_2O_2$ exposure to LLC-PK1 cells was shown to elevate the content of total ceramide by approximately 200% compared to control cells. Ceramide level was hypothesized to be a key to a reversal of cell death to survival. Ginsenoside Rgl at the concentrations ranging from 12.5 to $250{\mu}M$ protected LLC-PK1 cells from cell death induced by $H_2O_2\;at\;400{\mu}M$ for 5 hr, and decreased the ceramide level relative to $H_2O_2$. Ginsenoside Rgl inhibited neutral human ceramidase by 71% of controls, while sphingomyelinase was not inhibited. These results suggest that ginsenoside Rgl show the protection against cell death via the modulation of ceramide metabolism, and ceramide may be a promising therapeutic target for human diseases related to cell death.
The measurement of cell death constant in Anabaena flos-aquae was tested by the Live/Dead BacLight Viability kit(Molecular Probes Co., Seatle, WA). When the Live/Dead BacLight Viability kit was applied to Anabaena flos-aquae, the cells with intact cell membranes(live cells) stained fluorescent green, while the cell with damaged membranes(dead cells) stained fluorescent red and the background remained virtually nonfluorescent. The rations of live : dead cells in the cell suspension were controlled artifically and Live/Dead BacLight Viability kit was applied to them. The ratios of green:red fluorescent cells in the cell suspension were the same as those of live : dead cells controlled artifically. It was also approved by the fluorescence emission. The cell death constant was measured in the P-limited Anabaena flos-aquae chemostal culture in the N-fixing and $KNO_3-supplied$ conditions. The culture in N-fixing chemostat had a dead cell proportion of 1.2% at the growth rate of 0.7/day and increased to 2.6% at the growth rate of 0.3/day. The cell death constant of N-fixing culture was 0.008/day.There was a same trend in the $KNO_3-supplied$ chemostat culture. The proportion of dead cell was 1.6% of dead cell proportion at the growth rate of 0.7/day and increased to 4.3% at the growth rate of 0.3/day.
Journal of the Korean Association of Oral and Maxillofacial Surgeons
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제33권6호
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pp.617-624
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2007
Insulin-like growth factor(IGF) is the most abundant growth factor in bone matrix. Recent studies have shown that it can sensitize apoptotic cell death of osteoblasts. Thus, this study investigated whether IGF-II aggravates irradiation-induced cell death of osteoblasts. Cultured MC3T3 osteoblasts were irradiated and IGF-II was added at the concentration of 50 ng/ml immediately after the irradiation. Cell viability was measured by MTT assay. Changes in cell death and cell cycle were analyzed by flow cytometry. The expression of proapoptotic gene bax and antiapoptotic gene bcl-2 was quantified by real time RT-PCR and Western blot. A dose of 30 Gy caused G2/M arrest and increased cell death through both necrosis and apoptosis, while irradiation from 4 to 10 Gy little affected cell cycle and death. IGF-II treatment reduced cell viability without stimulating cell proliferation and changing cell cycle. Combined treatment of IGF-II with irradiation decreased cell viability and proliferation and increased cell death along with G2/M arrest. These effects were not different from those of irradiation only. At transcriptional and protein levels, IGF-II treatment did not affect bax and bcl-2 expression, whereas irradiation increased the expression ofbax without changes in bcl-2. IGF-II in combination with irradiation showed similar findings. These results suggest that IGF-II could modulate apoptotic cell death through mechanisms other than an imbalance between bax and bcl-2 gene expression, although its effect was overridden by irradiation.
The placenta is a temporary fetomaternal organ capable of supporting fetal growth and development during pregnancy. In particular, abnormal development and dysfunction of the placenta due to cha nges in the proliferation, differentiation, cell death, and invasion of trophoblasts induce several gynecological diseases as well as abnormal fetal development. Autophagy is a catalytic process that maintains cellular structures by recycling building blocks derived from damaged microorganelles or proteins resulting from digestion in lysosomes. Additionally, autophagy is necessary to maintain homeostasis during cellular growth, development, and differentiation, and to protect cells from nutritional deficiencies or factors related to metabolism inhibition. Induced autophagy by various environmental factors has a dual role: it facilitates cellular survival in normal conditions, but the cascade of cellular death is accelerated by over-activated autophagy. Therefore, cellular death by autophagy has been known as programmed cell death type II. Autophagy causes or inhibits cellular death via the other mechanism, apoptosis, which is programmed cell death type I. Recently, it has been reported that autophagy increases in placenta-related obstetrical diseases such as preeclampsia and intrauterine growth retardation, although the mechanisms are still unclear. In particular, abnormal autophagic mechanisms prevent trophoblast invasion and inhibit trophoblast functions. Therefore, the objectives of this review are to examine the characteristics and functions of autophagy and to investigate the role of autophagy in the placenta and the trophoblast as a regulator of cell death.
Pyrrolidinedithiocarbamate (PDTC) and N-Acetylcysteine (NAC) are metal and nonmetal-chelating antioxidant which can induce rat and human smooth muscle cell death. When the smooth muscle cells from mouse aorta (MASMC) that we successfully cultured recently was exposed to PDTC and NAC in a normal serum state, the cells were induced to death by these compounds. However, PDTC did not induce the cell death in a serum depleted medium. This data suggests that certain factors in the serum may mediate the cytotoxic effect of PDTC. The metal chelator, Ca-EDTA blocked PDTC-induced cell death, but Cu-, Fe-, and Zn-EDTA did not block the PDTC-induced cell death. This data indicated that copper, iron, and zinc in the serum may lead to the cytotoxic effect of PDTC. Investigation of the intracellular zinc level in PDTC-induced smooth muscle cell death using the zinc probe dye N-(6-methoxy-8-quinolyl)-p-toluenesulfonamide shows that only the muscle-containing layers of the arteries have higher level of zinc. As expected, PDTC increased the intracellular fluorescence level of the zinc. In agreement with these results, the addition of an exogenous metal, zinc, induced the vascular aortic smooth muscle cell death which led to an increased intracellular zinc level. We concluded that PDTC induced mouse aortic smooth muscle cell death required not only zinc level but also intracellular copper and iron level. The mechanism of this antioxidant to induce vascular smooth muscle cell death may provide a new strategy to prevent their proliferation in arteriosclerotic lesions.
The molecular mechanism of ischemia/reperfusion injury remains unclear. Reactive oxygen species (ROS) are implicated in cell death caused by ischemia/reperfusion in vivo or hypoxia in vitro. Poly (ADP-ribose) polymerase (PARP) activation has been reported to be involved in hydrogen peroxide-induced cell death in renal epithelial cells. This study was therefore undertaken to evaluate the role of P ARP activation in chemical hypoxia in opossum kidney (OK) cells. Chemical hypoxia was induced by incubating cells with antimycin A, an inhibitor of mitochondrial electron transport. Exposure of OK cells to chemical hypoxia resulted in a time-dependent cell death. In OK cells subjected to chemical hypoxia, the generation of ROS was increased, and this increase was prevented by the $H_2O_2$ scavenger catalase. Chemical hypoxia increased P ARP activity and chemical hypoxia-induced cell death was prevented by the inhibitor of PARP activation 3-aminobenzamide. Catalase prevented OK cell death induced by chemical hypoxia. $H_2O_2$ caused PARP activation and $H_2O_2-induced$ cell death was prevented by 3-aminobenzamide. Taken together, these results indicate that chemical hypoxia-induced cell injury is mediated by PARP activation through H202 generation in renal epithelial cells.
Effect of the depletion or oxidation of GSH on mitomycin c (MMC)-induced mitochondrial damage and cell death was assessed in small cell lung cancer (SCLC) cells. MMC induced cell death and the decrease in the GSH contents in SCLC cells, which were inhibited by z-LEHD.fmk (a cell permeable inhibitor of caspase-9), z-DQMD.fmk (a cell permeable inhibitor of caspase-3) and thiol compound, N-acetylcysteine. MMC caused nuclear damage, release of cytochrome c and activation of caspase-3, which were reduced by N-acetylcysteine. The depletion of GSH due to L-butionine-sulfoximine enhanced the MMC-induced cell death and formation of reactive oxygen species in SCLC cells, whereas the oxidation of GSH due to diamide or $NH_2Cl$ did not affect cytotoxicity of MMC. The results show that MMC may cause cell death in SCLC cells by inducing mitochondrial dysfunction, leading to activation of caspase-9 and -3. The MMC-induced change in the mitochondrial membrane permeability, followed by cell death, in SCLC cells may be significantly enhanced by the depletion of GSH. In contrast, the oxidation of GSH may not affect cytotoxicity of MMC.
The effects of ethanol fractions of three different rice grain extracts, Jakwangchalbyeo, Hwasunchalbyeo, and Ilpumbyeo, on apoptotic cell death in the rat hepatoma H4IIE cell line were investigated using the MTT [3-(4,5-dimethylthiazol-2-yl)-2,5-diphenyltetrazolium bromide] cell viability assay. One hundred mg/mL Jakwangchalbyeo extract significantly reduced cell viability to 69.5, 57.2, and 46.1% within 24, 48, and 72 hr, respectively. Fluorescence-activated cell sorting (FACS) analyses were also performed to characterize the cell death pattern caused by treatment with the rice grain extracts. Apoptotic cell death was clearly observed with time after treatment with the Jakwangchalbyeo extract. In Western blotting analysis, degradation of the 116 kDa poly-ADP-ribose polymerase (PARP) molecule was observed with concomitant formation of an 89 kDa product 24, 48, and 72 hr after treating cells with the Jakwangchalbyeo extract. This indicates that an apoptotic process caused cell death in these cells. In conclusion, red-pericarp Jakwangchalbyeo extract induced apoptotic cell death in H4IIE cells to a larger extent than the other rice extracts.
Kim, In-Ki;Park, So-Jung;Park, Jhang-Ho;Lee, Seung-Ho;Hong, Sung-Eun;Reed, John C.
BMB Reports
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제45권8호
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pp.482-487
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2012
To identify the novel inhibitors of endoplasmic reticulum stress-induced cell death, we performed a high throughput assay with a chemical library containing a total of 3,280 bioactive small molecules. Cyclosporine A and bromocriptine were identified as potent inhibitors of thapsigargiin-induced cell death (cut-off at $4{\sigma}$ standard score). However, U74389G, the potent inhibitor of lipid peroxidation had lower activity in inhibiting cell death. The inhibition effect of cyclosporine A and bromocriptine was specific for only thapsigargin-induced cell death. The mechanism of inhibition by these compounds was identified as modification of the expression of glucose regulated protein-78 (GRP-78/Bip) and inhibition of phosphorylation of p38 mitogen activated protein kinase (MAPK). However, these compounds did not inhibit the same events triggered by tunicamycin, which was in agreement with the cell survival data. We suggest that the induction of protective unfolded protein response by these compounds confers resistance to cell death. In summary, we identified compounds that may provide insights on cell death mechanisms stimulated by ER stress.
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