To investigate apoptosis in HC11 mammary epithelial cells, we compared the gene expression profiles of actively growing and serum-starved apoptotic cells using a mouse apoptosis gene array and $^{33}P$-labeled cDNA prepared from the RNA of the two cultures. Analysis of the arrays showed that expression of several genes such as clusterin, secreted frizzled related protein mRNA (sFRP-1), CREB-binding protein (CBP), and others was higher in the apoptotic cells whereas expression of certain genes including survivin, cell division cycle 2 homolog A (CDC2), and cyclin A was lower. These expression patterns were confirmed by RT-PCR and/or Northern analyses. We compared the expression of some of these genes in the mouse mammary gland under various physiological conditions. The expression levels of genes (clusterin, CBP, and M6P-R) up-regulated in apoptotic conditions were higher at involution than during lactation. On the other hand, genes (Pin, CDC2) downregulated in apoptotic conditions were relatively highly expressed in virgin and pregnant mice. We conclude that certain genes such as clusterin, sFRP-1, GAS1 and CBP are induced in apoptotic mammary epithelial cells, and others are repressed. Moreover, the apoptosis array is an efficient technique for comparing gene expression profiles in different states of the same cell type.
Ribosomal protein S3 (rpS3) is a multifunctional protein involved in translation, DNA repair, and apoptosis. The relationship between rpS3 and cyclin-dependent kinases (Cdks) involved in cell cycle regulation is not yet known. Here, we show that rpS3 is phosphorylated by Cdk1 in G2/M phase. Co-immunoprecipitation and GST pull-down assays revealed that Cdk1 interacted with rpS3. An in vitro kinase assay showed that Cdk1 phosphorylated rpS3 protein. Phosphorylation of rpS3 increased in nocodazole-arrested mitotic cells; however, treatment with Cdk1 inhibitor or Cdk1 siRNA significantly attenuated this phosphorylation event. The phosphorylation of a mutant form of rpS3, T221A, was significantly reduced compared with wild-type rpS3. Decreased phosphorylation and nuclear accumulation of T221A was much more pronounced in G2/M phase. These results suggest that the phosphorylation of rpS3 by Cdk1 occurs at Thr221 during G2/M phase and, moreover, that this event is important for nuclear accumulation of rpS3.
The signal transduction pathway leading to the activation of the p70s6k plays an important role in the progression of cells from G0/G1 to S phase of the cell cycle but remains incompletely characterized. We investigated the role of the Rho family G protein Rac1 in H2O2-mediated p70s6k activation. Transient expression of a dominant negative mutants of the small GTP-binding proteins Rac1 (Rac1N17) and Cdc42(Cdc42N17) showed reduced levels of slower migration on Western blots of one-dimensional SDS-PAGE in p70s6k and ERK1/2 by PDFG stimulation. (omitted)
The meiotic process from the primordial stage to zygote in female germ cells is mainly adjusted by post-transcriptional regulation of pre-existing maternal mRNA and post-translational modification of proteins. Several key proteins such as the cell cycle regulator, Cdk1/cyclin B, are post-translationally modified for precise control of meiotic progression. The second messenger (cAMP), kinases (PKA, Akt, MAPK, Aurora A, CaMK II, etc), phosphatases (Cdc25, Cdc14), and other proteins (G-protein coupled receptor, phosphodiesterase) are directly or indirectly involved in this process. Many proteins, such as CPEB, maskin, eIF4E, eIF4G, 4E-BP, and 4E-T, post-transcriptionally regulate mRNA via binding to the cap structure at the 5' end of mRNA or its 3' untranslated region (UTR) to generate a closed-loop structure. The 3' UTR of the transcript is also implicated in post-transcriptional regulation through an association with proteins such as CPEB, CPSF, GLD-2, PARN, and Dazl to modulate poly(A) tail length. RNA interfering is a new regulatory mechanism of the amount of mRNA in the mouse oocyte. This review summarizes information about post-transcriptional and post-translational regulation during mouse oocyte meiotic maturation.
ras는 활성화 형태인 GTP bound form과 비활성화 형태인 GDP bound form의 두 형태로 존재하며 두 형태를 매개하는 regulatory protein들에 의해 그 activity가 조절된다. 또한 ras는 GTP와 GDP에 강한 친화성이 있으며 세포내에는 GTP보다 GDP가 더 많이 있어서 평소에는 ras가 GDP와 결합하고 있다가 활성화될때만 GTP와 결합하는 것으로 추정된다. GDP bound ras는 guanine nucloetide exchange protein(GEP)에 의해 활성화된 GTP bound form으로 전환되며 ras의 기능이 발휘된 후에는 GTPase activating protein(GAP)에 의해 비활성화된다. Yeast의 경우 IRA1과 2의 product가 GAP의 역할을 하는 것으로 알려져 있고 CDC25 gene의 product가 GEP의 기능을 담당하는 것으로 알려져 있다. NF1 gene은 Von Recklinghausen Neurofibromatosis Type I 질병을 가진 환자에게서 발견되었는데 부분적으로 sequencing한 결과에 따르면 yeast의 IRA1/2, mammalian GAP gene product와 protein homology가 높은 것으로 나타났다. Yeast의 경우 IRA1/2 gene의 손실이나 mammalian ras gene의 transformation으로 인한 heat shock sensitivity가 NF1 gene(2,3) 혹은 GAP(4)의 expression으로 suppression된 것으로 보아 NF1이 GAP protein으로서 ras를 불활성화 시킨다는 것이 판명되었다. 결론적으로 ras의 활성은 GTP bound 혹은 GDP bound의 양쪽형태를 이동하면서 조절되는데 이 기능은 GAP과 GEP 또는 그의 유사 protein들에 의해 수행되며 이러한 regulatory protein들은 growth factor, cytokine 그리고 protein kinase 같은 signal에 의해 활성화된다고 생각된다. 본 총설에서는 ras protein의 여러가지 성질보다는 ras의 modification과 관련하여 항암제로 사용할 수 있는 ras에 specific한 약품개발의 가능성과 현재 알려진 ras의 inhibitor를 중심으로 논하고자 한다.
Recently, there has been significant progress in understanding the control process of the cell division cycle. To investigate the influence of toxic substances on the cell cycle, the effect of benzo(a)pyrene (BAP) and mitomycine C (MMC) on synchronized HeLa cells was analyzed during the cell cycle. To synchronize the HeLa cells, 10$^{6}$ cells were grown for 1 day and then treated with 1 mM hydroxyurea for 14 h. The arrested cells were then allowed to proceed through their cell cycle by removing the hydroxyurea and resupplying a fresh medium. The arrested cells in the G1/S transition then proceeded to the S phase after 4 h, the G2/M phase after 8h, and the G1 phase after 12 h, subsequent to the resupply of a fresh medium. In the untreated HeLa cells, the p34$^{cdc2}$ kinase activity, measured using a p34$^{cdc2}$ specific peptide, peaked after 8h (G2/M) and then declined after 12 h (G1). However, treatment with 30 $\mu$M BAP delayed the peak of the p34$^{cdc2}$ kinase activity. The amount of p34$^{cdc2}$ remained unchanged in the untreated, BAP-, and MMC-treated cells throughout the cell cycle. The cyclin B level peaked after 8 h in the untreated cells, yet peaked after 10-12 h in the BAP-treated cells. There was no significant change in the cyclin B level in the MMC-treated cells.
In budding yeast, septin plays as a scaffold to recruits protein components and regulates crucial cellular events including bud site selection, bud morphogenesis, Cdc28 activation pathway, and cytokinesis. Phosphorylation of Bni5 isolated as a suppressor for septin defect is essential to Swe1-dependent regulation of bud morphogenesis and mitotic entry. The mechanism by which Bni5 regulates normal septin function is not completely understood. Here, we provide evidence that Bni5 phosphorylation is important for interaction with septin component Cdc11 and for timely delocalization from septin filament at late mitosis. Phosphorylation-deficient bni5-4A was synthetically lethal with $hof1{\Delta}$. bni5-4A cells had defective structure of septin ring and connected cell morphology, indicative of defects in cytokinesis. Two-hybrid analysis revealed that bni5-4A has a defect in direct interaction with Cdc11 and Cdc12. GFP-tagged bni5-4A was normally localized at mother-bud neck of budded cells before middle of mitosis. In contrast, at large-budded telophase cells, bni5-4A-GFP was defective in localization and disappeared from the neck approximately 2 min earlier than that of wild type, as evidenced by time-lapse analysis. Therefore, earlier delocalization of bni5-4A from septin filament is consistent with phosphorylation-dependent interaction with the septin component. These results suggest that timely de localization of Bni5 by phosphorylation is important for septin function and regulation of cytokinesis.
Protein phosphatase 1 (PP1) is a major serine/threonine phosphatase that controls gene expression and cell cycle progression. The active mutant IPP5 ($8-60hIPP5^m$), the latest member of the inhibitory molecules for PP1, has been shown to inhibit the growth of human cervix carcinoma cells (HeLa). In order to elucidate the underlying mechanisms, the present study assessed overexpression of $8-60hIPP5^m$ in HeLa cells. Flow cytometric and biochemical analyses showed that overexpression of $8-60hIPP5^m$ induced G2/M-phase arrest, which was accompanied by the upregulation of cyclin B1 and phosphorylation of G2/M-phase proteins ATM, p53, $p21^{cip1/waf1}$ and Cdc2, suggesting that $8-60hIPP5^m$ induces G2/M arrest through activation of the ATM/p53/$p21^{cip1/waf1}$/Cdc2/cyclin B1 pathways. We further showed that overexpression of $8-60hIPP5^m$ led to delayed nuclear translocation of cyclin B1. $8-60hIPP5^m$ also could translocate to the nucleus in G2/M phase and interact with $pp1{\alpha}$ and Cdc2 as demonstrated by co-precipitation assay. Taken together, our data demonstrate a novel role for $8-60hIPP5^m$ in regulation of cell cycle in HeLa cells, possibly contributing to the development of new therapeutic strategies for cervix carcinoma.
The zebrafish is an emerging vertebrate model organism in reproductive biology. The oocyte maturation of zebrafish is triggered by maturation inducing hormone (MIH, 17α,20β-Dihydroxy-4-pregnen-3-one). In almost all animals, the oocyte maturation is governed by activation of pre-MPF which consists of cyclinB and inactive Cdk1. In the oocyte of Xenopus and mice, the activity of Cdk1 is regulated in two ways, one is the interaction with cyclinB and the other is phosphorylation/dephosphorylation of T14/Y15 residues on the Cdk1 by Wee1 and Cdc25. Unlike Xenopus and mice that have a sufficient amount of pre-MPF, pre-MPF is absent in GV oocyte of most teleost including zebrafish. Therefore, the activation of MPF during zebrafish oocyte maturation might totally depend on de novo synthesis of cyclinB proteins. It is reported that the translation of maternal mRNA is regulated by combination of several RNA binding proteins such as CPEB, Dazl, Pum1/Pum2, and insulin-like growth factor2 mRNA-binding protein 3 in the zebrafish oocytes. However, the definitive mechanism of these proteins to regulate the translation of stored maternal mRNAs remains to be elucidated. Therefore, the investigation of the maturation process of the zebrafish oocyte will provide new information that can help identify the role of translational control in early vertebrate oocyte maturation.
The molecular machinery controlling cell cycle is centered around the regulation of the activity of maturation-promoting factor (MPF), a complex composed of a catalytic Cdc2 and the cyclinB regulatory subunit. Cdc2 kinase is inactivated by phosphorylation of inhibitory kinase, Wee1. It has been known that there are three different Wee1 kinases in the mammalian cell, Wee1A, Wee1B and Myt1. To investigate the regulatory mechanism of Wee1 kinases, the phosphorylation and degradation of Wee1A and Wee1B were checked in the Xenopus oocyte cell cycle. When Wee1 kinases were injected into frog oocyte, Wee1B was more stable than Wee1A. Wee1A and Wee1B kinase were phosphorylated by many kinases such as PKA and Akt. The roles of amino or carboxyl terminal in mouse Wee1A or Wee1B kinase were investigated using chimeric constructs. The degree of protein phosphorylation, degradation and cell cycle progression were different between chimeric constructs. The amino domain of Wee1A was implicated in the protein phosphorylation and degradation while amino domain of Wee1B and carboxyl domain of Wee1A were involved in the activity regulation. These results suggested that the domains of Wee1 kinase have different and significant roles in regulating the Wee1 kinases in the cell cycle progression.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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