The optimum cultural temperature and time for the pullulanase production by Bacillus cereus were $15^{\circ}C$ and 72 hrs, respectively. The addition of casein, nutrient broth and egg albumin to the basal medium, respectively, increased greatly the enzyme production. The enzyme was purified by ammonium sulfate fractionation, CM-cellulose and DEAE-cellulose column chromatographies. The specific activity of the purified enzyme was 29.09 U/mg protein and the yield of enzyme activity was 17.1% The purified enzyme showed a single band on polyacrylamide disc gel electrophoresis and its molecular weight was estimated to be 61,000 by SDSpolyacrylamide disc gel electrophoresis. The isoelectric point for the purified enzyme was pH 7.0. The optimum temperature and pH were $40^{\circ}C$ and 6.5. The purified enzyme was stable below $35^{\circ}C$ and in the pH range of 6.5-11.0. It was greatly inhibited by $Ag^{+}$, $Hg^{2+}$ and $Zn^{2+}$, and its thermal stability was increased by the addition of $Ca^{2+}$ Among various substrates, pullulan was favorably hydrolyzed by the purified enzyme and the hydrolysis product 011 pulluIan was maltotriose.
Detoxified and deallergenized castor bean protein isolate was prepared from defatted castor bean pomace for use in animal feedstuffs and human foods. Succinylation and acetylation of the ${\varepsilon}-amino$ groups of the protein improved markedly the water solubility of the protein at $pH\;7{\sim}8$. The results of the amino acid analysis of the protein isolate revealed that the sulfur-containing amino acids and L-lysine were limiting amino acids and that succinylation and acetylation caused some little loss of the amino acid content. The L-methionine enriched plastein was synthesized from the protein isolate or the acylated protein isolates and DL-methionine ethyl ester by one step process with papain. By this method the extent of incorporation of L-methionine was about 50%. Pepsin hydrolyzed both unmodified and modified protein isolates at the same rate (about 92%). Tryptic hydrolysis, however, was less for the succinylated protein isolates (about 42%) and less for the acetylated protein isolates (about 26%). The protein efficiency ratio of L-methionine enriched protein isolate (about 2.5 weight %) was 90% that of reference casein. The protein efficiency ratio values of succinylated (88%) and acetylated (84%) protein isolate were 55 and 69% of reference casein, respectively.
A cytoplasmic endoprotease, named protease Ci, has been partially purified by classical chromatographic procedures. This enzyme degrades insulin, glucagon and bovine growth hormone to trichloroacetic acid-soluble materials, but shows little or no hydrolysis of bovine serum albumin, casein or globin. It has a molecular weight of about 120,000 as determined by gel filtration on Sephadex G200, and it appears to be consisted of two identical subunits having molecular weight of 54,000 when estimated by polyacrylamide gel electrophoresis in the presence of sodium dodecyl sulfate. Protease Ci has an optimum pH of 7.5, and has an isoelectric point of 5.5. This enzyme is a metalloprotease, since it is inhibited by o-phenanthroline and can be activated by the addition of divalent metal cations, such as $Mn^++$ and $Co^++$. Protease ci is inhibited by p-hydroxymercuribenzoic acid, but not by either of leupeptin or Ep475 which are specific inhibitors of sulfhydryl protease. It is distinct from protease Pi, a perplasmic insulin degrading enzyme, since protease Ci is localized to the cytoplasm. The physiological function of protease Ci is presently unknown.
An alkalophilic microorganism named DK-2386, which produces xylanase, was isolated from soil of Taejo-mountain, Cheonan-si, Chungnam, Korea. The isolated strain was characterized as Gram-positive, with size of 0.4${\times}$2.5 ${\mu}$m, spore forming, anaerobic, catalase positive, possessed with hydrolysis abilities of casein, starch, sodium carboxy methyl cellulose, and xylan, reduction of nitrate to nitrite, resistant against lysozyme, urease positive, and motility positive. The color of culture broth was reddish yellow. The strain DK-2386 was identified as Bacillus agaradhaerens by whole cell fatty-acid composition analysis and 16S rDNA sequence analysis. However, it was not identical to Bacillus agaradhaerens 40952 obtained from the Korean Culture Center of Microorganism in its colour of culture broth. Therefore, we have named the newly isolated strain as Bacillus agaradhaerens DK-2386.
In this study, we compared the levels of methylotrophic bacterial community diversity in the leaf, stem, grain, root and rhizosphere soil sainples of four rice cultivars collected from three regions of Korea. Thirty five pigmented and five non-pigmented isolates showing characteristic growth on methanul were obtained. When phylotypes were defined by performing numerical analysis of 42 characteristics, four distinct clusters were formed. While two clusters, I and IV diverged on the basis of nitrate and nitrite reduction, other two clusters, comprising only pink pigmented colonies, diverged on the basis of cellulase activity. Out of the two reference strains used in the analysis, Methyhbacterium extorquens AM1 diverged from all the clusters and M. fujisawaense KACC 10744 grouped under cluster III. All the isolates were positive for urease, oxidase, catalase and pectinase activity and negative for indole production, MR and VP test, $H_2S$ production, starch, and casein hydrolysis. No clusters were found to possess thermotolerant isolates, as no growth of the isolates was observed at $45^{\circ}C$. Two strains in cluster I were found to possess gelatin hydrolysis and methane utilizing properties respectively. Most of the isolates in all the four clusters utilized monosaccliarides, disaccharide and polyols as carbon source. Six isolates showed considerable nitrogenase activity ranging from 86.2 to $809.9nmol\;C_2H_4\;h^{-1}\;mg^{-1}$ protein.
Kim, Jin-Soo;Kim, Hye-Suk;Lee, Hyun Ji;Park, Sung Hwan;Kim, Ki Hyun;Kang, Sang In;Heu, Min Soo
Korean Journal of Food Science and Technology
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v.46
no.6
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pp.716-722
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2014
Aminopeptidase-active fractions from crude extract of the hepatopancreas of a common squid (Todarodes pacificus) were obtained using acetone (AC; 30-40%) and ammonium sulfate precipitation (AS; 60-70% saturation), anion exchange (AE-II; 0.2 M NaCl) and gel filtration chromatography (GF-I; 30-50 kDa), respectively. The debittering capacity of GF-I fraction based on the aminopeptidase activity (89.2 U/mg), recovery (56.6%) and sensory evaluation (1.0) was better than that of other fractions. Release of amino acids increased as incubation time was increased, and the bitterness of the enzyme reaction mixtures decreased. Incubation with the GF-I fraction for 24 h resulted in the hydrolysis of several peptides, as revealed by reverse-phase HPLC profiles. Peaks 3, 5 and 6 showed the decreased area (%), whereas peaks 1, 2 and 4 showed the increased area. The GF-I fractions were found to be suitable for reducing bitterness in protein hydrolysates by catalyzing the hydrolysis of bitter peptides.
The skc gene encoding streptokinase (SK) with a molecular mass of approximately 47.4 kDa was cloned from Streptococcus equisimilis ATCC 9542 and heterologously overexpressed in Streptomyces lividans TK24 and E. coli using various strong promoters. When the promoter for sprT [Streptomyces griseus trypsin (SGT)] was used in the host S. lividans TK24, a 47.4-kDa protein was detected along with a smaller hydrolyzed protein (44 kDa), suggesting that posttranslational hydrolysis had occurred as has been reported in other expression systems. The casein/plasminogen plate assay revealed that the plasmid construct containing the SGT signal peptide was superior to that containing the SK signal peptide in terms of SK production. Maximal production of SK was calculated to be about 0.25 unit/ml of culture broth, a value that was five times higher than that obtained with other expression systems using ermE and tipA promoters in the same host. When the skc gene was expressed in E. coli BL21(${\Delta}DE3$)pLys under the control of the T7 promoter, a relatively large amount of SK was expressed in soluble form without hydrolysis. SK activity in E. coli/pET28a-$T7_pSK_m$ was more than 2 units/ml of culture broth, even though about half of the expressed protein formed an inactive inclusion body.
The antagonistic microorganisms against Streptococcus sanguis, S. salivarius and S. mutans causing the dental caries of oral diseases were isolated from Korean traditional soy sauce. Twenty five strains were isolated by pairing culture, paper disc culture and dual culture methods. The isolate NG 06 strain was observed with various cultural and physiological test, and $Biolog^{(R)}$ Bacterial Identification System. The strain was identified as Bacillus racemilacticus. The isolate NG 16 strain was confirmed to Gram-positive, rods, endospore production, utilization of melibiose, casein hydrolysis and starch hydrolysis. Also the second strain NG 16 was identified as $\beta$. amyloliquefaciens.
Lee Eun Hye;Kwon Se Ryun;Kim Chun Soo;Chung Joon Ki;Lee Hyung Ho;Kim Ki Hong
Fisheries and Aquatic Sciences
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v.5
no.4
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pp.311-313
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2002
Proteolytic activity of live Uronema manum was analyzed by fluorescence polarization (FP) technique. Protease activity was measured by a decrease in FP value using fluorescein isothiocynate (FITC)-casein as a protein substrate. The results demonstrated an inverse linear relationship between fluorescence polarization (FP) values and live ciliate concentration over the range $1\times10^4\;to\;2\times10^5$ cells/well. However, the FP values of $10-10^3$ live parasites were not different significantly from that of control. Time-dependent decrease in FP value was shown in the wells containing live U. marinum. In the present study, FP assay had the benefit to provide measurements of substrate hydrolysis by live parasites in real-time, and did not require separations, precipitations, or transfers of reaction mixture.
Kim, Yeong-Gi;Bae, Jin-Hye;Lee, Won-Hong;Choe, Jeong-U
한국생물공학회:학술대회논문집
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2000.11a
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pp.167-170
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2000
Proteolytic hydrolysis is one of the main enzymatic reaction of waste activated sludge (WAS) digestion. Pretense excreted from Bacillus stearothermophilus (ATCC 31197) showed optimum temperature of $75^{\circ}C$ for maxium heat stable proteolytic activity against azo casein. The dependency of $Ca^{2+}$, $Zn^{2+}$ on heat stability of proteolytic enzymes were measured with various concentrations. It was shown that $Ca^{2+}$ ion enhanced heat stability of these enzymes. Then thermophilic aerobic digestion (TAD) was performed using B. sterothermophilus with the addition of divalent ions. Performance of TAD process with ATCC 31197 activated by $Ca^{2+}$, $Zn^{2+}$ions in terms of dissolved organic carbon (DOC) concentration, extracellular protein concentration, and scanning electrion microscopy (SEM) analysis. The best result of protein reduction concentration in digestion test was obtained with the addition of 2 mM $Ca^{2+}$ ion.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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