Nimopidine, one of dihydropyridine derivatives, has been widely used to pharmacologically identify L-type Ca currents. In this study, it was tested if nimodipine is a selective blocker for L-type Ca currents in sensory neurons and heterologous system. In mouse dorsal root ganglion neurons (DRG), low concentrations of nimodipine $(<10\;{\mu}M),$ mainly targeting L-type Ca currents, blocked high-voltage-activated calcium channel currents by ${\sim}38%.$ Interestingly, high concentrations of nimodipine $(>10\;{\mu}M)$ further reduced the 'residual' currents in DRG neurons from ${\alpha}_{1E}$ knock-out mice, after blocking L-, N- and P/Q-type Ca currents with $10\;{\mu}M$ nimodipine, $1\;{\mu}M\;{\omega}-conotoxin$ GVIA and 200 nM ${\omega-agatoxin$ IVA, indicating inhibitory effects of nimodipine on R-type Ca currents. Nimodipine $(>10\;{\mu}M)$ also produced the inhibition of both low-voltage-activated calcium channel currents in DRG neurons and ${\alpha}_{1B}\;and\;{\alpha}_{1E}$ subunit based Ca channel currents in heterologous system. These results suggest that higher nimodipine $(>10\;{\mu}M)$ is not necessarily selective for L-type Ca currents. While care should be taken in using nimodipine for pharmacologically defining L-type Ca currents from native macroscopic Ca currents, nimodipine $(>10\;{\mu}M)$ could be a useful pharmacological tool for characterizing R-type Ca currents when combined with toxins blocking other types of Ca channels.
The immunocytochemical method was used to identify the existence of voltage-dependent $Ca^{2+}$-channels in mouse follicular oocytes. Three types of voltage-dependent $Ca^{2+}$-channels were shown to exist in the follicular oocytes for the first time, the P/Q-type $Ca^{2+}$-channel, the N-type $Ca^{2+}$-channel, and the L-type $Ca^{2+}$-channel. Among proven $Ca^{2+}$-channels distributions of the P/Q-type $Ca^{2+}$-channel and L-type $Ca^{2+}$-channel showed localized staining (clustered pattern) on the oolemma. The distribution of the P/Q-type $Ca^{2+}$-channel showed all localized staining, and the range of localized staining was from 1 to 8 in staining intensity. As the staining intensity increased from 1 to 8, the number of localized staining decreased. The L-type $Ca^{2+}$-channel are homogeneously stained (29.4%-54.2%), while some of them (around 28.7%-44.1%) showed localized staining on the oolemma. However, the rest of them showed no staining at all (17.1%- 26.5%). On the contrary, the N-type $Ca^{2+}$-channel showed mostly homogeneous staining, while nonstaining oocytes were around 33.8%. The rest showed localized staining (10%). However, staining intensity was much weaker than those of the P/Q-type and L-type $Ca^{2+}$-channel. In fact, the N-type $Ca^{2+}$-channel has been known to exist only in neurons (from ectoderm origin), but it is unknown how the N-type $Ca^{2+}$-channel exists in the follicular oocytes (from mesoderm origin). Further studies are needed to examine the expression of $Ca^{2+}$-channels during the developmental stages of the oocytes.
Ca-type and Na-type bentonites show the great difference of some physicochemical properties. Na exchanged bentonite is mainly used for the foundry and construction materials in domestic utilization. This study tries to identify in detail the differences of some physicochemical properties and thermal properties between Ca-type and Na-type bentonites. Also the adsorption behavior and interlayer expansion for the HDTMA (Hexadecyltrimethylammonium) exchanged and CP (Cetylprydinium) exchanged Ca-type and Na-type bentonites were compared. Na-type bentonite shows the strong alkaline property, high viscosity and swelling compared to Ca-type bentonite. However, two types are very similar for the cation exchange capacity and MB (Methylene Blue) adsorption. The decomposition of adsorbed and interlayer water of Na-type bentonite is caused in the lower temperature than Ca-type bentonite. And Ca-type bentonite shows the decomposition of structural water in the lower temperature than Na-type bentonite. The interlayer expansion of montmorillonite resulted to the intercalation of HDTMA and CP into bentonite is so strongly caused from 12~15 $\AA$ to $40\AA$ (basal spacing). HDTMA-bentonite is almost expanded to $37~38\AA$ when 200% CEC equivalent amount of HDTMA is added, and CP-bentonite is fullly expanded to 40 $\AA$ in the 140% CEC equivalent amount of CP It means that CP causes the stronger interlayer expansion of montmorillonite and easier adsorption than HDTMA. Adsorption behaviors of CP into bentonite is so stable and continuously sorbed in the proportion to the treatment of amount until 200% of the CEC equivalents. CP-bentonite shows the same adsorption behavior regardless of Ca-type or Na-type montmorillonite.
Objective: In muscle and neuronal cells, calcium channels have been classified by electrophysiological and pharmacological properties into (1) voltage-dependent $Ca^{2+}$-channel (1) P/Q-type $Ca^{2+}$-channel (2) N-type $Ca^{2+}$-channel (3) L-type $Ca^{2+}$-channel (4) T-type $Ca^{2+}$-channel (5) R-type $Ca^{2+}$-channel. The present study was done in order to investigate whether there is any difference in $Ca^{2+}$-channel distribution between activated and normally fertilized embryos. Methods: The immunocytochemical method was used to identify the existence of voltage-dependent $Ca^{2+}$-channels in parthenogenetically activated 2-cell embryos by ethanol and $SrCl_2$ treatment. These 2-cell embryos were obtained by exposure to 6% ethanol for 6 min and to 10 mM $SrCl_2$ for 2h. Results: P/Q-type $Ca^{2+}$-channels and L-type $Ca^{2+}$-channels have been identified. Whereas, three type of $Ca^{2+}$-channel P/Q-type, N-type, L-type have been identified in 2-cell embryos fertilized in vivo. Conclusion: Activation by ethanol was faster than those by $SrCl_2$. However, there was difference in DAB staining of the embryos between ethanol and $SrCl_2$ treatment (87.7% and 54.1 %). Intensity of staining was also different between ethanol- and $SrCl_2$-treated group. However, it has not been known why there was some difference in DAB staining and staining intensity in the present study.
In order to compare species-specific calcium metabolism, we collected 127 species belonging to 40 different families grown on various habitats including saline, limestone, wetland during the 1996 vegetation period, and analyzed their inorganic ion contents. Plants investigated were divided into 5 groups according to their physiological properties: 1) Chenopodiaceae, Aizoaceae, Caryophyllaceae, Portulacaceae and Phytolaccaceae of Centrospermales and Polygonaceae (Polygonales had a little water-soluble $Ca^{2+}$ but contained high contents of insoluble $Ca^{2+}$ particularly as Ca-oxalate (Chenopodiaceae type), 2) Some plant species such as Rosaceae produced oxalate in amounts insufficient to precipitate all incoming $Ca^{2+}$ and thus contained a surplus of dissolved $Ca^{2+}$ (Rosaceae type), 3) The contents of water-soluble $Ca^{2+}$ in plant species of Crassulaceae. Plantaginaceae, Asclepiadaceae, and Zygophyllaceae were equal to or greater than those of K ($K/Ca{\leq}1$; Crassulaceae type), and 4) K/Ca ratios of Compositae were significantly fluctuated depending on species and soil $Ca^{2+}$ level of their habitats (Compositae type). 5) Certain monocots (Gramineae, Cyperaceae, Juncaceae), in contrast to the dicotyledonous plant families mentioned above, showed a very distinct type of calcium metabolism, that is, the K/Ca ratios of 8~10 were maintained indifferently in the species and their habitat types (Graminae type). These results plants within the same taxon have similar physiological aspects as weel as morphological attributes. To understand calcium metabolism of certain plant species, therefore, it is desirable to approach on the basis of physiological concept (calciotroph or calciophobe) rather than the ecological one (calcicole or calcifuge).
Under some pathological conditions as bile flow obstruction or liver diseases with the enterohepatic circulation being disrupted, regurgitation of bile acids into the systemic circulation occurs and the plasma level of bile acids increases. Bile acids in circulation may affect the nervous system. We examined this possibility by studying the effects of bile acids on gating of neuronal (N)-type $Ca^{2+}$ channel that is essential for neurotransmitter release at synapses of the peripheral and central nervous system. N-type $Ca^{2+}$ channel currents were recorded from bullfrog sympathetic neuron under a cell-attached mode using 100 mM $Ba^{2+}$ as a charge carrier. Cholic acid (CA, $10^{-6}M$) that is relatively hydrophilic thus less cytotoxic was included in the pipette solution. CA suppressed the open probability of N-type $Ca^{2+}$ channel, which appeared to be due to an increase in (no activity) sweeps. For example, the proportion of sweep in the presence of CA was ~40% at +40 mV as compared with ~8% in the control recorded without CA. Other single channel properties including slope conductance, single channel current amplitude, open and shut times were not significantly affected by CA being present. The results suggest that CA could modulate N-type $Ca^{2+}$ channel gating at a concentration as low as $10^{-6}M$. Bile acids have been shown to activate nonselective cation conductance and depolarize the cell membrane. Under pathological conditions with increased circulating bile acids, CA suppression of N-type $Ca^{2+}$ channel function may be beneficial against overexcitation of the synapses.
Although extracellular $Ca^{2+}$ entry through the voltage-dependent $Ca^{2+}$ channels plays an important role in the spontaneous phasic contractions of the pregnant rat myometrium, the role of the T-type $Ca^{2+}$ channels has yet to be fully identified. The aim of this study was to investigate the role of the T-type $Ca^{2+}$ channel in the spontaneous phasic contractions of the rat myometrium. Spontaneous phasic contractions and $[Ca^{2+}]_i$ were measured simultaneously in the longitudinal strips of female Sprague-Dawley rats late in their pregnancy (on day 18 ${\sim}$ 20 of gestation: term=22 days). The expression of T-type $Ca^{2+}$ channel mRNAs or protein levels was measured. Cumulative addition of low concentrations (< 1 ${\mu}M$) of nifedipine, a L-type $Ca^{2+}$ channel blocker, produced a decrease in the amplitude of the spontaneous $Ca^{2+}$ transients and contractions with no significant change in frequency. The mRNAs and proteins encoding two subunits (${\alpha}$ 1G, ${\alpha}$ 1H) of the T-type $Ca^{2+}$ channels were expressed in longitudinal muscle layer of rat myometrium. Cumulative addition of mibefradil, NNC 55-0396 or nickel induced a concentration-dependent inhibition of the amplitude and frequency of the spontaneous $Ca^{2+}$ transients and contractions. Mibefradil, NNC 55-0396 or nickel also attenuated the slope of rising phase of spontaneous $Ca^{2+}$ transients consistent with the reduction of the frequency. It is concluded that T-type $Ca^{2+}$ channels are expressed in the pregnant rat myometrium and may play a key role for the regulation of the frequency of spontaneous phasic contractions.
Eum, Jin Hee;Park, Miseon;Yoon, Jung Ah;Yoon, Sook Young
Development and Reproduction
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v.24
no.4
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pp.297-306
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2020
Repetitive changes in the intracellular calcium concentration ([Ca2+]i) triggers egg activation, including cortical granule exocytosis, resumption of second meiosis, block to polyspermy, and initiating embryonic development. [Ca2+]i oscillations that continue for several hours, are required for the early events of egg activation and possibly connected to further development to the blastocyst stage. The sources of Ca2+ ion elevation during [Ca2+]i oscillations are Ca2+ release from endoplasmic reticulum through inositol 1,4,5 tri-phosphate receptor and Ca2+ ion influx through Ca2+ channel on the plasma membrane. Ca2+ channels have been characterized into voltage-dependent Ca2+ channels (VDCCs), ligand-gated Ca2+ channel, and leak-channel. VDCCs expressed on muscle cell or neuron is specified into L, T, N, P, Q, and R type VDCs by their activation threshold or their sensitivity to peptide toxins isolated from cone snails and spiders. The present study was aimed to investigate the localization pattern of N and P/Q type voltage-dependent calcium channels in mouse eggs and the role in fertilization. [Ca2+]i oscillation was observed in a Ca2+ contained medium with sperm factor or adenophostin A injection but disappeared in Ca2+ free medium. Ca2+ influx was decreased by Lat A. N-VDCC specific inhibitor, ω-Conotoxin CVIIA induced abnormal [Ca2+]i oscillation profiles in SrCl2 treatment. N or P/Q type VDC were distributed on the plasma membrane in cortical cluster form, not in the cytoplasm. Ca2+ influx is essential for [Ca2+]i oscillation during mammalian fertilization. This Ca2+ influx might be controlled through the N or P/Q type VDCCs. Abnormal VDCCs expression of eggs could be tested in fertilization failure or low fertilization eggs in subfertility women.
Kim, Young-Hwan;Ahn, Duck-Sun;Kim, Myeong Ok;Joeng, Ji-Hyun;Chung, Seungsoo
Molecules and Cells
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v.37
no.11
/
pp.804-811
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2014
The protease-activated receptor (PAR)-2 is highly expressed in endothelial cells and vascular smooth muscle cells. It plays a crucial role in regulating blood pressure via the modulation of peripheral vascular tone. Although several mechanisms have been suggested to explain PAR-2-induced hypotension, the precise mechanism remains to be elucidated. To investigate this possibility, we investigated the effects of PAR-2 activation on N-type $Ca^{2+}$ currents ($I_{Ca-N}$) in isolated neurons of the celiac ganglion (CG), which is involved in the sympathetic regulation of mesenteric artery vascular tone. PAR-2 agonists irreversibly diminished voltage-gated $Ca^{2+}$ currents ($I_{Ca}$), measured using the patch-clamp method, in rat CG neurons, whereas thrombin had little effect on $I_{Ca}$. This PAR-2-induced inhibition was almost completely prevented by ${\omega}$-CgTx, a potent N-type $Ca^{2+}$ channel blocker, suggesting the involvement of N-type $Ca^{2+}$ channels in PAR-2-induced inhibition. In addition, PAR-2 agonists inhibited $I_{Ca-N}$ in a voltage-independent manner in rat CG neurons. Moreover, PAR-2 agonists reduced action potential (AP) firing frequency as measured using the current-clamp method in rat CG neurons. This inhibition of AP firing induced by PAR-2 agonists was almost completely prevented by ${\omega}$-CgTx, indicating that PAR-2 activation may regulate the membrane excitability of peripheral sympathetic neurons through modulation of N-type $Ca^{2+}$ channels. In conclusion, the present findings demonstrate that the activation of PAR-2 suppresses peripheral sympathetic outflow by modulating N-type $Ca^{2+}$ channel activity, which appears to be involved in PAR-2-induced hypotension, in peripheral sympathetic nerve terminals.
In previous reports we have shown that ginsenosides inhibit high threshold voltage-dependent $Ca^{2+}$ channels in neuronal cells. However, these studies did not show whether ginsenosides-induced inhibition of $Ca^{2+}$ currents discriminates among the various $Ca^{2+}$ channel subtypes, although it is known that there are at least five different $Ca^{2+}$ channel subtypes in neuronal cells. In this study we investigated the effect of ginsenosides on high threshold voltage-dependent $Ca^{2+}$ channel subtypes using their selective $Ca^{2+}$ channel blockers nimodipine (L-type), $\omega$-conotoxin GVIA (N-type), or $\omega$-agatoxin IVA (P-type) in bovine chromaffin cells. We could observe that ginsenosides inhibited high threshold voltage-dependent $Ca^{2+}$ currents in a dose-dependent manner. The $IC_{50}$/ was about 120 $\mu$g/ml. Nimodipine had no effect on ginsenosides response. However, the effect of ginsenosides on $Ca^{2+}$ currents was reduced by $\omega$-conotoxin GVIA, $\omega$-agatoxin IVA, and mixture of nimodipine, $\omega$-contoxin GVIA, and $\omega$-agatoxin IVA. These data suggest that ginsenosides are negatively coupled to three types of calcium channels in bovine chromaffin cell, including an $\omega$-conotoxin GVIA-sensitive (N-type) channel, an $\omega$-agatoxin IVA-sensitive (P-type) channel and nimodipine/$\omega$-conotoxin GVIA/$\omega$-agatoxin IVA-resistant (presumptive Q-type) channel.Q-type) channel.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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