In sexing early mammalian embryos, viability of biopsied embryos and accuracy of sexing are both important. We have been previously developed efficient methods for biopsy of mouse embryos and sex identification from a single blastomere by PCR. In this study, squeeze method used for biopsy of mouse embryos was applied to bovine embryos. Compact bovine morulae were obtained by flushing uteri on Day 6 after the onset of standing estrus. A small number of blastomeres could be isolated from bovine morulae by the biopsy method. All 13 biopsied morulae were survived and 10 embryos developed to normal blastocyst after 24 h of culture. Subsequently, sex of the bovien embryos was identified from a few blastomeres by PCR amplifying a Y-specific bovine DNA sequence. Among 13 embryos analyzed, 7 embryos were determined as males and 6 embryos as females. Thus, bovine embryos at morular stage could be successfully biopsied by the squeeze method and sex of the bovine embryos determined from biopsied material by PCR.
The objectives of the present study were improvements in the efficiency of developmental rates to morula and blastocyst stages to produce a large number of genetically identical nuclear transplanted embryos. The oocytes collected from slaughterhouse ovaries were matured 24h in TCM199+10% FBS and exposed to $39^{\circ}C$ or room temperature to allow cytoplasmic maturation and gain activation competence. Donor embryos were treated for 12h with $10{\mu}g/ml$ nocodazole or $0.05{\mu}g/ml$ demicolcine to synchronize the cell cycle stage at 26h after the onset of culture. The blastomeres and recipient oocytes were fused by electrofusion. The cloned embryos were then cultured in various conditions to allow further development. In the treatment of oocyte activation and cell cycle regulation of donor nuclei, the room temperature exposure and nocodazole treatment group had significant effect on the developmental rates to morula/blastocyst(21.7% vs 12.1~16.7%), but had no significant effect on the fusion rates between donor blastomeres and recipient oocytes. The developmental rates of bovine nuclear transplanted embryos appeared to be higher significantly in mTALP medium under 5% $O_2$ condition and in TCM199 with bovine oviduct epithelial cell under 20% $O_2$ condition(22.2%) than other groups. In embryo transfer of nuclear transplanted embryos, there were no significant differences in calving rates between the use of excellent and good grade donor embryos.
Chromosome condensation and swelling of the donor nucleus have been known as the early morphological indicators of chromatin remodelling after injection of a foreign nucleus into an enucleated recipient cytoplasm. The effects of non-preactivation and electrical preactivation of recipient cytoplasm, prior to fusing a donor nucleus, on the profile of nuclear remodelling in the nuclear transplant rabbit embryos were evaluated. The embryos of 16-cell stage were collected and synchronized to G1 phase of 32-cell stage. The recipient cytoplasms were obtained by removing the first polar body and chromosome mass by non-disruptive microsurgical procedure. The separated G1 phase blastomeres of 32-cell stage were injected into non-preactivated recipient cytoplasms. Otherwise, the enucleated recipient cytoplasms were preactivated by electrical stimulation and the separated G1 phase blastomeres of 32-cell stage were injected. After culture until 20h post-hCG injection, the nuclear transplant oocytes were electrofused by electrical stimulation. The nuclei of nuclear transplant embryos fused into non-preactivated and/or preactivated recipient cytoplasm were stained by Hoechst 33342 at 0, 1.5, 2, 4, 6, 8, 10 hrs post-fusion and were observed under an fluorescence microscopy. Accurate measurements of nuclear diameter were revealed with an ocular micrometer at 200$\times$. Upon blastomere fusion into non-preactivated recipient cytoplasm, a prematurely chromosome condensation at 1.5 hrs post-fusion and nuclear swelling at 8 hrs post-fusion were occurred as 91.6% and 86.1%, respectively. But the nuclei of nuclear transplant embryos fused into preactivated recipient cytoplasm, as o, pp.sed to non-preactivated recipient cytoplasm, were not occurred chromosome condensation and extensive nuclear swelling. Nuclear diameter fused into non-preactivated and preactivated recipient cytoplasm at hrs post-fusion was 30.2$\pm$0.74 and 15.2$\pm$1.32${\mu}{\textrm}{m}$, respectively. These results indicated that onset of unclear condensation and swelling which was associated with oocytes activation were critical steps in the process of chromatin swelling. Futhermore, complete reprogramming seemed only possible after remodelling of the donor nucleus by chromosome condensation and nuclear swelling.
The present study was conducted to investigate the influence of embryo cell stage at 18h post-fusion and oocyte preactivation on sebsequent in vitro developmental potential in the nuclear transplant rabbit embryos. The embryos of 16-cell stage were collected and synchronized to G$_1$ phase of 32-cell stage. The recipient cytoplasms were obtained by removing the first polar body and chromosome rnass from the oocytes collected by non-dis-ruptive microsurgery procedure. The separated G$_1$ phase blastomeres of 32-cell stage were injected into non-preactivated recipient cytoplasms. Otherwise, the enucleated recipient cytoplasms were preactivated by electrical stimulation at 18h post-hCG injection and the separated G$_1$ phase blastomeres of 32-cell stage were injected. Mter culture until 20h post-hOG injection, the nuclear transplant oocytes were electrofused by electrical stimulation. The fused nuclear transplant embryos were classified into 3~4-cell, 2-cell and 1-cell stage at 18 hrs post-fusion and cultured until the embryos reached blastocyst stage. The developmental rate to blastocyst stage was significantly (P <0.05) higher in all the reconstituted embryos of 3~4-cell stage(58.0%) than in 2 and icell stage. The developmental rate to blastocyst stage in the embryos of 3~4-cell stage at 18 hrs post-fusion was significantly (P<0.05) higher in the reconstituted without oocyte preactivation(77.8%) than in the oocyte-preactivated embryos (33.3%). These results indicated that the higher rate of in the in vitro development to blastocyst stage might be obtained form the embryos which were reconstituted with nuclear donor of G$_1$ phase and non-preactivated oocyte, and developed more rapidly for 18 hrs post-fusion.
Notch signaling plays fundamental roles in various animal development. It has been suggested that Hr-Notch, a Notch homologue in the ascidian Halocynthia roretzi, is involved in the formation of peripheral neurons by suppressing the neural fates and promoting the epidermal differentiation. However, roles of Notch signaling remain controversial in the formation of nervous system in ascidian embryos. To precisely investigate functions of Notch signaling, we have isolated and characterized Hr-Numb, a Numb homologue which is a negative regulator of Notch signaling, in H. roretzi. Maternal expression of Hr-Numb mRNAs was detected in egg cytoplasm and the transcripts were inherited by the animal blastomeres. Its zygotic expression became evident by the early neurula stage and the transcripts were detected in dorsal neural precursor cells. Suppression of Hr-Numb function by an antisense morpholino oligonucleotide resulted in larvae with defect in brain vesicle and palps formation. Similar results have been obtained by overexpression of the constitutively activated Hr-Notch forms. Therefore, these results suggest that Hr-Numb is involved in Notch signaling during ascidian embryogenesis.
Cryopreservation of mouse embryos biopsied at 4-cell stage was investigated by ultrarapid freezing. Four-cell embryos were obtained from ICR mice on 55h after hCG injection. Zona pellucida of the embryos were partially dissected with a cutting pipet, and then single blastomeres were biopsied from the embryos followed by incubation in $Ca^2$+ and $Mg^2$+-free M16 medium for 30min. Biopsied embryos cultured for lh or 15h were frozen by ultrarapid freezing method using 3M DMSO or 5M glycerol as a cryoprotectant, respectively. The developmental rate of biopsied embryos after ultrarapid freezing and thawing to blastocysts was 81 % in the group of biopsied embryos cultured for lb and 98% in the group of biopsied embryos cultured for 15h, respectively. When biopsied embryos after ultrarapid freezing and thawing were transferred to the uteri of pseudopregnant recipients, normal live young were born. These results suggest that this freezing method can efficiently cryopreserve biopsied mouse embryos.
Chimerism has become an important tool for investigating fundamental aspects of early embryonic development and differentiation in mammals for producing transgenic animals. The objective of this study was to evaluate the developmental capacity of chimeric embryos reconstructed with parthenotes and IVF bovine embryos into empty zona pellucida. The MII oocytes were activated by two treatment groups [Group 1, 5 μM inomycin, 5min, + 10 ㎍/㎖ cycloheximide (CHX)/5 ㎍/㎖ cytochalasin B (CCB), 3 h; Group 2, 5 μM ionomycin, 5 min + 1.9 mM 6-dimetylaminopurine (6-DMAP), 3 h]. (omitted)
This experiment was carried out to produce cloned aniraals by nuclear transplantation in rabbits. The ovulated oocytes were collected from the oviducts between 14 and 15 hours after hGG injection. The denuded oocytes were used as nuclear recipient cytoplasm following enucleation by micromanipulation. The blastomeres separated from the 8-cell embryos were used as nuclear donor. The nucleated oocytes receiving a blastomere in the perivitelline space were electrically fused in the 0.28 M mannitol solution at 1.5 kV /cm, 60$\mu$sec for three times. The nuclear transplant embryos which were used and developed to 2- to 4-cell stage in vitro were transferred into the oviducts of synchronized recipient does. A total of 64 nuclear transplant embryos were transferred to 7 recipient does and produced three offspring(4.7%) from a foster mother 31 days after embryo transfer.
To improve the efficiency of nuclear transplantation in bovine, in this study the development in vitro of nuclear transferred (NT) embryos was compared by different activation regimens of the enucleated oocytes. The effect of developmental stage and culture system of donor nuclei on fusion and development in vitro of NT embryos were also evaluated. Oocytes were collected from Hanwoo ovaries obtained from slaughterhouse and matured in Ham's F-10 supplemented with hormones. After 20~22 h maturation, the oocytes were vortexed to be free from cumulus cells and subsequently their nucleus and the first polar body were removed. Enucleated oocytes were divided into 3 groups for activation; the oocytes of group I were activated with ionomycin for 5 min and subsequently incubated in 6-dimetylarninopurine (DMAP) for 4 h, Those of group II were treated with DMAP for 4 h at 39 h after onset of in vitro maturation (IVM) and those of group III were kept in room temperature ($25^{\circ}C$) for 3 h at 39 h after onset of IVM. After in vitro fertilization (IVF) the embryos for muclear donor were cultured either by group culture (20 embryos /50 ${mu}ell$ drop) or individually (1 embryo /50 ${mu}ell$ drop) for 4 day and 5 day. At day 4 and 5 after IVF, blastomeres were separated in calcium-magnesium free medium, and then classified into small (day 5: $\leq$ 38 ${\mu}{\textrm}{m}$, day 4: $\leq$ 46 ${\mu}{\textrm}{m}$) and large (day 5 : $\geq$ 38 ${\mu}{\textrm}{m}$, day 4 ; $\geq$ 46 ${\mu}{\textrm}{m}$). The separated blastomeres were replaced into enucleated and activated recipient cytoplasm. The blastomere-oocyte complexes were fused by electrically. The NT embryos were cultured in TCM-199 containing 10% FCS in 39$^{\circ}C$, 5% $CO_2$ incubator for 7 day. The results obtained were summarized as follows; There were no differences in fusion and development to blastocyst between groups as group I (68%, 10%), group II (75%, 14%) and group III (73%, 9%), respectively. However, the cell number in blastocyst of NT embryos in group III were significantly fewer than in the other groups (P<0.05). No differences in fusion and development to blastocyst were found between individual or group cultured and between small or large blastomeres of day 4 and day 5 donor embryos. From these results, it was concluded that the combination of ionomycin and DMAP, or treatment of DMAP at 39 h after onset of IVM were useful for the efficient of production of NT bovine embryos, and the individual cultured embryos could be simply used as donor nuclei for NT bovine embryo.
Choi, Won Yun;Sohn, Jie Ohn;Park, Eun A;Lee, Dong Ryul;Lee, Woo Sik;Han, Se Yul;Park, Lee Suk;Cho, Jung Hyun;Kim, Soo Hee;Cha, Kwang Yul;Yoon, Tae Ki
Clinical and Experimental Reproductive Medicine
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v.32
no.1
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pp.55-64
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2005
Objective: Human infertility clinics have been faced the demand for improving clinical results. The purpose of this study was to evaluate the effect of microsurgical removal of damaged blastomeres (DB) in frozen-thawed embryos on the clinical outcomes. Methods: From January 2003 to May 2004, out of 258 thawing ET cycles were divided into three groups: Group-1 (n=46): Intact cleavaged embryos after thawing. Remained cycles with embryos containing DB were randomly divided into two groups. Group-2 (n=102): Drilling zona pellucida (ZP) of frozen-thawed embryos by acidified Tyrode's solution. Group-3 (n=110): Drilling ZP and removal of DB. Embryos after microsurgical manipulation were transferred into the uterus of patients. Results: Clinical profiles and the mean number of transferred embryos among three groups were not different. Pregnancy and implantation rates were similar in three groups. It were 30.4% and 9.3% in Group-1, 29.4% and 7.8% in Group-2, and 26.4% and 7.6% in group-3, respectively. Miscarriage rate in Group-3 (37.9%) was slightly higher than those in Group-1 and Group-2 (14.3% and 23.3%), but it was not statistically significant. Conclusion: Intact cleaving embryos after DB removal showed higher potent of pregnancy and implantation. We could not find any improvement of clinical outcome by removal of DB in frozen-thawed embryos.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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