많은 생체 친화적인 센서들 중에서 avidin-biotin system은 높은 상호 특이적인 친화성으로 인하여 많은 생물학적인 응용 연구에 이용되어 왔다. 효과적인 avidin-biotin 바이오센서 개발을 위해 avidin-biotin 간의 상호 반응성을 증대시키기 위해서는 높은 표면적을 가지는 전극이 필요하다. 본 연구에서는 이러한 목적을 위해 gold nanorods electrode를 사용하였다. 전기화학적인 특성은 cyclic voltammetry (CV)와 electrochemical impedance spectroscopy (EIS)를 가지고 redox couple $[Fe(CN)_6]^{3-/4-}$를 사용하여 다양한 biotin의 농도에 따라 분석되었다. 결론적으로 nanorod의 전극은 1 ng/mL보다 낮은 biotin의 농도도 감지할 수 있음을 보였다.
The biotin-avidin complex, as a model recognition system, has been constructed through N-hydroxysuccinimide(NHS) reaction on a variety of substrates such as a smooth Au film, electrochemically roughened Au electrode and chemically modified mica. Stepwise self-assembled monolayers (SAMs) of biotin-avidin system were characterized by surface-enhanced resonance Raman scattering (SERRS) spectroscopy, atomic force microscopy (AFM) and surface plasmon resonance (SPR). A strong SERRS signal of rhodamine tags labeled in avidin from the SAMs on a roughened gold electrode indicated the successful complex formation of stepwise biotin-avidin recognition system. AFM images showed the circular shaped avidin aggregates (hexamer) with ca. $60{\AA}$ thick on the substrate, corresponding to one layer of avidin. The surface coverage and concentration of avidin molecules were estimated to be 90% and $7.5{\times}10^{-12}mol/cm^2$, respectively. SPR technique allowed one to monitor the surface reaction of the specific recognition with high sensitivity and precision.
Purpose: In tissue engineering, it is important that the scaffolds have high affinity with cells for making efficient use of cells. The authors studied the binding affinity of human adipose stem cells(ASCs) to micronized acellular dermal matrix(alloderm) using biotin and avidin linkages.Methods: Human ASCs were harvested from adipose tissue obtained by abdominoplasty. ASCs($1{\times}10^4$, $5{\times}10^4$, $1{\times}10^5$, $5{\times}10^5$, $1{\times}10^6$, $5{\times}10^6$ cells) were attached to micronized alloderm(1mg) in three groups; 1) control group in which no ASCs and alloderm was treated; 2) serum group in which alloderm was exposed to fetal bovine serum; and 3) biotin group in which biotinylated cells were attached to biotinylated alloderm. The binding affinities were determined 1 day after making ASC-alloderm complexes. The proliferation rates were determined by XTT assays in 4, 7, 14, and 21 days and scanning electron microscopic examination was performed in 7 and 21 days after culture of ASC-alloderm complexes.Results: The binding affinities of the biotin group were significantly increased in all cell concentrations. Maximum binding affinity was observed at $5{\times}10^4/mg$ of micronized dermal matrix in biotin group. The viabilities were lowest in biotin group in contrast to binding affinity, but the difference was not significant. SEM showed well attachment of cells to micronized dermal matrix in all groups. Conclusion: The use of avidin/biotin facilitated human ASCs attaching to micronized acellular dermal matrix. This attachment would not disturb adipose stem cells viabilities. The present study suggests that avidin/ biotin can be used as making efficient use of cells in adipose tissue engineering.
A sensitive enzyme immunoassay for serum TSH has been developed utilizing the tight binding between biotin and avidin, and three layered protein polystyrene beads as solid phase. To increase binding capacity of TSH and sensitivity of the assay, the polystyrene beads were coated sequentially with mouse immunoglobulin as first layer, rabbit antimouse immunoglobulin as second layer and monoclonal anti-TSH as third layer. A serum sample was incubated simultaneously with a monoclonal anti-TSH immobilized polystyrene beads and a second monoclonal anti-TSH covalently attached to biotin. After washing, the antibody bound serum TSH-anti-TSH-biotin complex is reacted with horseradish peroxidase (HRP)-labeled avidin. Following second wash, the bound HRP activity was measured calorimetrically. Reproducible results were obtained within 4 hours for serum TSH in the range between $0{\mu}\textrm{IU}$ml and ${50}{\mu}\textrm{IU}$ml with detection limit of $0.1{\mu}\textrm{IU}$ per test.
Avidin의 금속표변에 대한 강한 결합력과 avidin-biotin의 강한 결합력을 이용하여 금속 표면 위에 라포좀과 같은 유기 분자막의 다층 형성 과정을 수정진동자를 이용하여 분석하였다. 금속 표변위에 적층되는 유기 분자막에 대한 정보를 수 집하고 그 가능성을 검토하여 바이오 센서에서 감도를 향상 시킬 수 있는 새로운 방법을 제시하고자 하였다.
Enzyme multilayers composed of avidin and biotin-labeled enzymes were prepared on the surface of electrode, through a strong affinity between avidin and biotin (binding constant: ca $10^{15} M^{-1}$). The enzyme multilayers were useful for the improvement of the performance characteristies of enzyme sensors. The output current of the enzyme sensors depended linearly on the number of enzyme layers deposited. Thus, lactate oxidase (LOx) and alcohol oxidase (AlOx) were deposited after being modified with biotin for constructing enzyme sensors sensitive to L-lactate and ethanol respectively. It was also possible to deposit two different kinds of enzymes successively in a single multilayer. The glucose oxidase (GOx) and ascorbate oxidase (AsOx) were built into a multilayer structure on a Platinum electrode. The GOx, AsOx multilayer-modified electrode was useful for the elimination of ascorbic acid interference of the glucose sensor.
Biotin-S-S-Phosphine was designed and synthesized as a potential tool for a proteomic study of O-GlcNAcmodified proteins. This reagent features a disulfide linker between a triarylphosphine moiety, which allows selective conjugation to azide-containing proteins, and a biotin moiety that can allow easy isolation through its strong affinity toward avidin-coated solid beads. The disulfide linkage within this reagent can allow the easy release of the bound molecules of interest, which is difficult to achieve when a biotin:avidin pair is used alone, by reducing the disulfide bond of the reagent with DTT. Preliminary in vitro biological assays with azidelabeled and unlabeled cell lysates and a pure protein Nup62 showed that the Biotin-S-S-Phosphine reagent is highly reactive toward the free thiol groups of proteins. When a molecular tool with a disulfide linker is applied to the enrichment of the molecules of interest from other species, it is important to block the free-thiols of the sample using exhaustive alkylation prior to the Staudinger ligation reactions to restore the bioorthogonal nature of this reaction.
오제스키병바이러스 또는 돼지콜레라바이러스에 인공 또는 자연감염된 돼지 10두를 실험동물로 공시하였으며, 감염돈의 편도선, 비장, 대뇌 및 연층(buffy coat)의 냉동 및 파라핀절편에서, avidin-biotin-peroxidase complex(ABC)를 이용하여 이들 바이러스를 면역조직화학적으로 검출하였다. 오제스키병바이러스 항원은 임파구와 대식세포의 핵내 또는 세포질에서 검출되었으며, 돼지콜레라바이러스 항원은 이들 세포의 세포질에서 검출되었고, ABC법은 양성반응 부위에서 갈색의 색소 침착을 일으켰다. 오제스키병바이러스 양성세포는 편도선과 대뇌에서 가장 빈번히 검출되었음에 반해 돼지콜레라바이러스는 비장에서 가장 빈번하였다. 그리고 연충에서도 이들 두가지 바이러스항원이 모두 검출되었다. ABC법은 이을 바이러스의 면역조직화학적 검출에 있어 특이성이 높고 배경의 비특이염색성이 낮아, 바이러스 분리동정을 거치지않고 이들 질병을 확진할 수 있는 진단수단으로 활용될 수 있을 것으로 생각된다.
In this study, we report a new method for the high contrast imaging of biomolecular interactions at roller printed protein surfaces using thermotropic liquid crystals (LCs). Avidin was roller printed and covalently immobilized onto the obliquely deposited gold surface that was decorated with carboxylic acid-terminated self-assembled monolayers (SAMs). The optical response of LCs on the roller printed film of avidin contrasted sharply with that on the obliquely deposited gold surface. The binding of biotin-peroxidase to the roller printed avidin was then investigated on the obliquely deposited gold substrate. LCs exhibited a non-uniform and random orientation on the roller printed area decorated with the complex of avidin and biotin-peroxidase, while LCs displayed a uniform and planar orientation on the area without roller printed proteins. The orientational transition of LCs from uniform to non-uniform state was triggered by the erasion of nanometer-scale topographies on the roller printed surface after the binding of biotin-peroxidase to the surface-immobilized avidin. The specific binding events of protein-receptor interactions were also confirmed by atomic force microscopy and ellipsometry. These results demonstrate that the roller printing of proteins on obliquely deposited gold substrates could provide a high contrast signal for imaging biomolecular interactions using LC-based sensors.
Biosensor based on rugate PSi interferometer for the detection of avidin has been described. Rugate PSi fabricated by applying a computer-generated pseudo-sinusoidal current waveform has been prepared for the application as a label-free biosensor based on porous silicon interferometer. The fabrication, optical characterization, and surface derivatization of a rugate PSi has been described. The method to fabricate biotinderivatized rugate PSi has been investigated. The surface and cross sectional morphology of rugate PSi are obtained with SEM. FT-IR spectroscopy is used to characterize the oxidation and functionalization reaction of rugate PSi sample. Binding of the avidin into the biotin-derivatized rugate PSi induces a change in refractive index. A red-shift of reflectivity by 18 nm in the reflectivity spectrum is observed, when the biotin-modified rugate PSi was exposed to a flow of avidin.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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