Transformation of ginseng plants was achieved by biolistic system with cotyledon explants and callus using phosphinothricin acetyl-transferase (PAT) gene resisting to a herbicide of Bialaphos. The binary vector for transformation was constructed with disarmed Ti-plasmid and with double 355 promoter. The introduced NPT II and PAT genes of the transgenic ginseng plants were successfully identified by the PCR, and the survival test on the medium with basta. The transgenic ginseng plants were propagated using repetitive secondary embryogenesis. The transgenic ginseng plantlets had normal structures of roots and shoots, and dormant buds for new year sprouting. We transferred the transgenic plants to greenhouse and observed the continuing growth until a new year.
Environmental stresses are estimated to have reduced global crop yields of wheat by 5.5%. However, traditional approaches for the transfer of resistance to these stresses in wheat plants have yielded limited results. In this regard, genetic transformation has undoubtedly opened up new avenues to overcome crop losses due to various abiotic stresses. Particle bombardment has been successfully employed for obtaining transgenic wheat. However, most of these procedures employ immature embryos, which are not available throughout the year. Therefore, the present investigation utilized mature seeds as the starting material and used the calli raised from three Moroccan durum wheat varieties as the target tissue for genetic transformation by the biolistic approach. The pANIC-5E plasmid containing the SINA gene for drought and salinity tolerance was used for genetic transformation. To enhance the regeneration capacity and transformation efficiency of the tested genotypes, the study compared the effect of copper supplementation in the induction medium (up to 5 μM) with the standard MS medium. The results show that the genotypes displayed different sensitivities to CuSO4, indicating that the transformation efficiency was highly genotype-dependent. The integration of transgenes in the T0 transformants was demonstrated by polymerase chain reaction (PCR) analysis of the obtained resistant plantlets with primers specific to the SINA gene. Among the three genotypes studied, 'Isly' showed the highest efficiency of 9.75%, followed by 'Amria' with 1.25% and 'Chaoui' with 1%.
Genetic transformation was carried out by using biolistic gun method. The hypocotyl derived embryogenic calli (explants) of cotton (Gossypium hirsutum L.) cv. Cocker-312 were transformed with a recombinant pGreen II plasmid, in which both, bar (selection marker) and GUS (${\beta}$-glucuronidase) reporter genes were incorporated. Explants were arranged on osmoticum-containing medium (0.5M mannitol) 4 hours prior to and 16 hours after bombardment that was resulted into an increase about >80% for GUS stable expression. 3 days after bombardment, GUS assay was performed, which exhibited, $18.36{\pm}1.00$ calli showed blue spots. The transformed embryogenic calli were cultured on selection medium (@ 6 mg/L basta) for 3 months. The putative transgenic plants were developed via selective somatic embryogenesis (@1.50 mg/L basta); maximum $27.58{\pm}1.25$ somatic embryos were obtained while $17.47{\pm}1.00$ embryos developed into plantlets (@ 0.75mg/L basta). In five independent experiments, up to 7.24% transformation efficiency was recorded. The presence of the transgenes was analyzed by using PCR and southern hybridization analysis. The transgenic plants were developed with in 6-7 months, but mostly transformants were abnormal in morphology.
Tall fescue is an open-pollinated, perennial, cool season grass species widely used for forage and turf. Tremendous progress has been made in genetic transformation of tall fescue in the past decade. Methods for generating transgenic tall fescue plants have been developed based on biolistic transformation and Agrobacterium-mediated transformation. Potentially useful agronomic genes have been tested to environmental stress tolerance, herbicide tolerance and improve forage quality in tall fescue plants. We review progress in biotechnological improvement of tall fescue and discuss future molecular breeding of this species.
The high expression level of industrial and metabolically important proteins in plants can be achieved by plastid transformation. The CaIA vector, a Capsicum-specific vector harboring aadA (spectinomycin resistance), is a selectable marker controlled by the PsbA promoter, and the terminator is flanked by the trnA and trnI regions of the inverted repeat (IR) region of the plastid. The CaIA vector can introduce foreign genes into the IR region of the plastid genome. The biolistic method was used for chloroplast transformation in Scoparia dulcis with leaf explants followed by antibiotic selection on regeneration medium. Transplastomes were successfully screened, and the transformation efficiency of 3 transgenic lines from 25 bombarded leaf explants was determined. Transplastomic lines were evaluated by PCR and Southern blotting for the confirmation of aadA insertion and its integration into the chloroplast genome. Seeds collected from transplastomes were analyzed on spectinomycin medium with wild types to determine genetic stability. The increased chloroplast transformation efficiency (3 transplastomic lines from 25 bombarded explants) would be useful for expressing therapeutically and industrially important genes in Scoparia dulcis L.
Transient uidA expression was used to optimize parameters required for biolistic transformation of suspension cells of Easter lily, Lilium longiflourm. Maximum uidA expression occurred following bombardment with gold particles as compared to tungsten. A 3hr pre-treatment of suspension cells with 0.125M osmoticum resulted in a 1.5X increase in uidA expression. A helium pressure of 1550 psi combined with a particle travelling distance of 6cm resulted in maximum uidA expression as compared to either 1100, 1200, or 1800 psi. Transient transformation resulted in up to 493 uidA expressing cells/Petri plate. For stable transformation suspension cells of Lilium longiflorum, were co-bombarded with plasmid DNA containing cucumber mosaic virus (CMV) replicase under the rice actin (Act1) promoter and either the bar or PAT genes under the cauliflower mosaic virus (CaMV 355) promoter. Ten regenerated plants contained the transgene as analyzed by PCR, and two of the ten plants were confirmed to contain the transgene by Southern hybridization. The two transgenic plants were independent transformants, one containing the bar gene and the other both the CMV replicase and bar genes. Plants were sprayed at the rosette stage and found to be resistant to 1000 mg/L of phosphinothricin (Trade name-Ignite) indicating expression of the bar gene throughout the leaves when bar was under control of the CaMV 35S promoter.
Wheat is one of the world's top three crops and is an important staple crop, accounting for 20% of the nutrient calories consumed by the world's population. However, due to its complex heterogeneous hexaploid chromosomes and vast genome of approximately 16 Gb, compared to those of other crops, molecular biology and biotechnology studies on wheat are lacking. In recent years, wheat genome analysis has been performed using the latest next-generation sequencing technology so that useful genes can be easily obtained, and wheat biotechnology research is accelerating in various fields. In this review, wheat transformation, an indispensable technique for developing new functional biotech wheat by revealing the function of wheat genes, is described in detail. In addition, the latest research results for overcoming plant diseases, abiotic stresses, and wheat-related diseases that are difficult to solve by classical breeding through wheat transformation and biotechnology are described.
Process of particle bombardment for efficient transformation of Cymbidium virescence rhizome microcross sections was investigated using Biolistic particle delivery system with pBI121 harboring the ${\beta}-glucuronidase$(GUS) and the neomycin phosphotransferaseII(nptII). The best result was obtained from the combination of $1.11{\;}{\mu}m$ tungsten particles coated with pBl121, $77.33kg/cm^2$ helium pressure, 6.35 mm gap distance, and 7.0 cm target distance. Transient expression of the reporter gene, GUS, bombarded into the rhizome microsections was observed by the histochemical assay. The marker gene, nptII, delivered by bombarding the tungsten particles coated with the plasmid DNA was identified in the transformed rhizome by polymerase chain reaction.
Silveira Erica Duarte;Rodrigues Julio Carlyle Macedo;Cabral Glaucia Barbosa;Leite Juliana de Almeida;Costa Sidnei Souza;Carneiro Vera Tavares de Campos
Journal of Plant Biotechnology
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v.5
no.2
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pp.87-93
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2003
Brachiaria (Poaceae) is the most important forage genus for cattle production in Brazil. The genetic breeding of this genus is limited by the incompatibility among species, differences in ploidy level and the natural cloning of plants by apomixis (Valle and Miles 1992). However, plant regeneration via tissue culture methods and genetic engineering provide an opportunity to introduce new characteristics in plants of this genus. We have developed methods for the 'genetic modification of Brachiaria brizantha cv. Marandu via biolistic transformation. A higher number of shoots was obtained with 4 mg/L 2.4-diclorophenoxyacetic acid and 0.2 mg/L benzylaminopurine in calli induction medium and 0.1 mg/L naphtaleneacetic acid and 4.0 mg/L kinetin in shoot regeneration medium. A selection curve for mannose was determined to use phospho mannose isomerase (PMI) gene of Escherichia coli as a selection marker. Calli formation was inhibited from 5 g/L mannose, even in the presence of sucrose while calli that were formed in the presence of mannose failed to develop embryos showing that PMI gene can be used for selection of transformants of this grass. Different promoters were tested to evaluate the efficiency based on the detection of the GUS gene expression (Jefferson et al. 1987). The monocot promoters, act1-D and ubi-1, resulted in higher expression levels than dicot promoters, ubi-3 and act-2, or the CaMV35S and CVMV promoters.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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