We present here an in silico search of fungal sterol-esterase/lipase and bacterial depolymerase sequences from environmental metagenomes. Both enzyme types contain the α/β-hydrolase protein fold. Analysis of DNA conserved motifs, protein homology search, phylogenetic analysis, and protein 3D modeling have been used, and the efficiency of these screening strategies is discussed. The presence of bacterial genes in the metagenomes was higher than those from fungi, and the sequencing depth of the metagenomes seemed to be crucial to allow finding enough diversity of enzyme sequences. As a result, a novel putative PHA-depolymerase is described.
As part of an investigation to identify microorganisms that are biotechnologically interesting for industrial application, we isolated a bacterial strain from Chungkookjang that produces extracellular neutral lipase. In addition, the crude enzyme was characterized. This isolated strain, designated as JKA-3 was identified as Bacillus subtilis JKA-3 based on morphological, physiological and biochemical characteristics, as well as phylogenetic analysis using 16S rRNA gene sequence. The cells were rod-shaped and $0.6-0.8{\times}2.0-2.3\;{\mu}m$ in size. Optimal growth conditions were $35-40^{\circ}C$ and pH 6.0-8.0. The isolate was able to grow in up to 0-10.0% (w/v) NaCl. Optimal activity conditions of the crude lipase fraction of B. subtilis JKA-3 were pH of 7.0 at $35^{\circ}C$. This enzyme was stable in the pH ranging 6.0-8.0.
An, Sun-Young;Kim, Sang-Wan;Park, Yong-Lark;Joo, Woo-Hong;Lee, Young-Choon
Journal of Microbiology
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제41권2호
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pp.95-101
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2003
The lipase gene (lipA) and its activator gene (lipB) of Pseudomonas sp. SW-3 were cloned and sequenced. The lipB was found to be present immediately downstream of lipA. The deduced amino acid sequences of lipA and lipB showed a high level of homology to those of other lipases belonging to the family I.1 of bacterial lipases. When lipA was expressed in Escherichia coli using T7 promoter, an active lipase was produced in cells carrying both lipA and lipB, but not in cells harboring only lipA. Recombinant lipase (rPSL) overproduced in an insoluble form was solubilized in the presence of 8 M urea, purified in a urea-denatured form and refolded by removing urea in the presence of the Ca$\^$2+/ ion. rPLS had maximum activity at pH 8.0 and 50$^{\circ}C$, was stable at pHs from 7.0 to 9.0 and below 50$^{\circ}C$, and showed the highest activity toward the p-nitrophenyl ester of palmitate (Cl6).
Putra, Ludwinardo;Natadiputri, Griselda Herman;Meryandini, Anja;Suwanto, Antonius
Journal of Microbiology and Biotechnology
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제29권6호
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pp.944-951
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2019
Lipases are industrial enzymes that catalyze both triglyceride hydrolysis and ester synthesis. The overexpression of lipase genes is considered one of the best approaches to increase the enzymatic production for industrial applications. Subfamily I.2. lipases require a chaperone or foldase in order to become a fully-activated enzyme. The goal of this research was to isolate, clone, and co-express genes that encode lipase and foldase from Burkholderia territorii GP3, a lipolytic bacterial isolate obtained from Mount Papandayan soil via growth on Soil Extract Rhodamine Agar. Genes that encode for lipase (lipBT) and foldase (lifBT) were successfully cloned from this isolate and co-expressed in the E. coli BL21 background. The highest expression was shown in E. coli BL21 (DE3) pLysS, using pET15b expression vector. LipBT was particulary unique as it showed highest activity with optimum temperature of $80^{\circ}C$ at pH 11.0. The optimum substrate for enzyme activity was $C_{10}$, which is highly stable in methanol solvent. The enzyme was strongly activated by $Ca^{2+}$, $Mg^{2+}$, and strongly inhibited by $Fe^{2+}$ and $Zn^{2+}$. In addition, the enzyme was stable and compatible in non-ionic surfactant, and was strongly incompatible in ionic surfactant.
세균은 지방을 분해할 수 있는 다양한 리파제를 생산한다. 리파제는 반응조건에 따라서 지방의 합성도 수행할 수 있는데 , 이러한 효소반응과정에서 고도의 기질특이성과 위치특이성 및 입체특이성을 보이기 때문에 제약산업과 정밀화학산업에서 효소촉매로서 널리 사용되고 있다. 지금가지 200종류 이상의 리파제효소가 보고되었으며, 이것들은 효소생산기원과 아미노산 상동성을 기준으로 6개의 family로 분류된다. 지난 10년 간 세균 리파제 6종에 대한 3D구조가 밝혀졌다. 이것들은 모두 중심부분에$\alpha/\beta$폴딩구조와 세린, 히스티딘, 아스팔틴산으로 구성된 활성부위를 공통적으로 갖고 있다. 활성부위를 양친성 $\alpha$나선구조가 뚜껑처럼 덮고 있으며, 물과 오일의 경계면을 만나면, 이 뚜껑이 열리고 효소활성이 크게 증가하는 '계면활성화' 현상을 보인다. P. cepacia 리파제 구조에는 기질과 결합하는 4개의 포켓이 있는데 이중 하나는 옥시음이온 구멍이고, 다른 세 개는 기질의 sn-1, sn-2, sn-3 지방산과 결합하는 부위이다. 이 포켓의 크기와 방향 및 소수성정도에 의해서 효소의 기질특이성과 입체특이성이 결정된다. 현재 이러한 구조연구를 기반으로 사용목적에 따른 맞춤 효소를 생산하기 위한 효소 개량연구가 활발히 진행되고 있다.
An alkaliphilic bacterium, Bacillus clausii SKAL-16, was isolated from soil that had been contaminated with vegetable oil. The optimal pH and general pH range for bacterial growth was 8, and 7 to 10, respectively. The bacterium could grow on tributyrin and glycerol, but could not grow on acetate and butyrate. The SKAL-16 strain excreted butyric acid during growth on tributyrin, and selectively ingested glycerol during growth on a mixture of butyric acid and glycerol. The SKAL-16 generated intracellular lipase, but did not produce esterase and extracellular lipase. The DNA fragment amplified with the chromosomal DNA of SKAL-16 and primers designed on the basis of the esterase-coding gene of Bacillus clausii KSM-KI6 was not identical with the esterase-coding gene contained in the GenBank database. Pyruvate dehydrogenase, isocitrate dehydrogenase, and malate dehydrogenase activities were detected in the cell-free extract (crude enzyme).
Two initial models of cold-adapted lipase PsLip1 have been constructed, based on homology with the bacterial lipases Chromobacterium viscosum (CvLip) and Pseudomonas cepacia (PcLip), whose X-ray structures have been solved and refined to high resolution. The mature polypeptide chains of these lipases have 84% similarity. The models of Mod1 and Mod2 have been compared with the tertiary structures of CvLip and PcLip, respectively, and analyzed in terms of stabilizing interactions. Several structural aspects that are believed to contribute to protein stability have been compared: the number of conserved salt bridges, aromatic interactions, hydrogen bonds, helix capping, and disulfide bridges. The 3-dimensional structural model of PsLip1 has been constructed in order to elucidate the structural reasons for the decreased thermostability of the enzyme in comparison with its mesophilic counterparts.
An ABC transporter apparatus of the Gram-negative bacterial type I secretion pathway can be used as a secretory protein expression system in Escherichia coli. Four types of coexpression systems for the Pseudomonas fluorescens lipase gene, tliA, and its cognate ABC transporter gene cluster, tliDEF, were constructed. When the relative expression levels were changed by adding different concentrations of IPTG, the secretion (16.9 U/ml of culture) of TliA in E. coli [pTliDEFA-223+pACYC184] was significantly higher than E. coli [pKK223-3+pTliDEFA-184] secreting the lowest level of TliA (5.2 U/ml of culture). Maximal accumulation of the lipase secreted occurred in the mid-exponential phase, implying that the efficient protein secretion via an ABC transporter was restricted only to actively growing cells. Finally, the secretion level of TliA in E. coli [pTliDEFA-223+pACYC184] was increased to 26.4 U/ml by inducing gene expression at the culture initiation time. These results indicate that a significant increase in the ABC transporter-dependent protein secretion can be achieved by simply controlling the relative expression levels between the ABC transporter and its passenger protein, even in the recombinant E. coli cells.
Water-sludge bacteria were screened to find a lipase enantioselectively hydrolyzing itraconazole precursor, which is well known as the starting material of antifungal drug agents. A bacterial strain was isolated and identified as Acinetobacter junii SY-01. After the strain was cultivated, the enzyme was purified 39.4-fold using ultrafiltration and gel filtration through a Sephadex G-100 chromatographic column and the activity yield was 34.9%. The molecular weight of the enzyme was about 40 kDa, as measured by SDS-PAGE, and the optimum pH was 7.0- 9.0 and stable at pH 6.0- 9.0. The optimum temperature was 45- $5^{\circ}C$, and 73% of the enzymes activity remained after incubation at 70% for 1 h. Enzyme activity was enhanced by gall powder, sodium deoxycholate, a cationic detergent Tween 80, and a non-ionic detergent Triton X-100, but was markedly inhibited by metal ions such as $Hg^{2+},Cu^{2+},Ni^{2+}/,Ca^{2+}$, and an anionic-surfactant sodium dodecylsulfate. The $K_{m}$ values for (R)- and (S)-enantiomers of the itraconazole precursor were 0.385 and 21.83 mM, respectively, and the $V_{max} values ($\mu$Mㆍmin^{-1}.)$ were 6.73 and 6.49, respectively. The acetyl group among the different acyl moieties of itraconazole precursor showed the highest enantioselectivity for the hydrolysis by the Acinetobacter junii SY-01 lipase, and the lipase from Acinetobacter junii SY-01 displayed better enantioselectivity than that of commercially available lipases and esterases.
International Journal of Industrial Entomology and Biomaterials
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제4권2호
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pp.127-131
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2002
The qualitative and quantitative changes of bacterial flora associated with the Pure Mysore (Multivoltine) and NB$_4$D$_2$ (Bivoltine) silkworm (Bombyx modi L.) midgut during third, fourth and fifth instars were studied. Larvae reared on mulberry leaves were dissected and their midgut bacterial populations were enumerated through serial dilution technique and after 72 hrs of incubation period at 28 $\pm$ 1$^{\circ}C$, the bacterial population was estimated. The results showed a highest mean value of 15$\times$10/ sup 6/ sup 6/ CFU/g and 28$\times$10/ sup 6/ CFU/g in Pure Mysore and NB$_4$D$_2$races, respectively, in midgut tissue of fifth instar larvae. The natural epiphytic microflora of mulberry leaves fed during the respective instars was also studied and found maximum 14$\times$10$^3$ CFU/g in leaves fed in third instars, followed by 5.3$\times$10$^3$ CFU/g and 2.1$\times$10$^3$ CFU/g in leaves fed during fourth and fifth instars, respectively. The bacterial flora colonized in midgut was found to be elaborating amylase, caseinase, gelatinase, lipase and urease enzymes. The highest percentages of isolates were amylase producers followed by protein and lipid splitters in Pure Mysore, whereas in NB$_4$D$_2$ protein splitter were dominated followed by lipase and amylase producers in NB$_4$D$_2$. The results indicate that the natural microflora may play a vital role in the digestion of ingested food materials in silkworms.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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