Kim, Min-Seong;Shin, Kyu-Chul;Lee, Hyung-Gu;Han, Myung-Soo;Min, Byung-Re;Choi, Yong-Keel
Korean Journal of Food Science and Technology
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v.35
no.3
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pp.470-474
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2003
DNA sequence information on small-subunit rRNA gene (16S rDNA) obtained from food-poisoning bacterial culture was used to investigate the presence of bacterial pathogens in food. By reverse dot blot detection method, presence of food-poisoning bacteria could be confirmed on hybridization of digoxigenin-labeled 16S rDNA Polymerase Chain Reaction (PCR) primer product and biotin-labeled specific oligonucleotide probe. Escherichia coli, Bacillus cereus. and Salmonella sp. were used as the representative food-poisoning bacterial microorganisms. An oligonucleotide probe, based on the variable region of 16S rRNA gene, was used as the specific probe. These tools may be more useful than classic biochemical method for rapid identification of contaminated food.
The capacities of bacterial DNA, extracted from Salmonella typhimurium, and lipopolysaccharide (LPS), extracted from Salmonella minnesota, to activate mouse peritoneal macrophages in vitro were compared. Activation was assessed by estimating e levels of 3 cytokines, IL-10, IL-12, and $IL-1{\beta}$, at time intervals of 3, 6, 9, and 24 h after addition of LPS and/or DNA to macrophage cultures. Cytokine levels in culture supernatants were determined by enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA) and cytokine mRNA levels were estimated based on band intensity in cultured cells by reverse transcriptase-polymerase chain reaction (RT-PCR). Results obtained demonstrated the ability of DNA and LPS to elicit increased production of all 3 cytokines as compared to controls. In the amount tested, LPS appeared to be a more potent inducer of IL-12, and $IL-1{\beta}$, whereas DNA induced higher levels of IL-10. DNA and LPS, used in combination, exhibited neither an additive nor a synergistic effect. Rather, an antagonist effect appeared to occur. RT-PCR results correlated well with ELISA.
Ji, Sang-Chun;Kim, Doc-Kyu;Yoon, Jung-Hoon;Lee, Choong-Hwan
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.17
no.4
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pp.668-672
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2007
A microcosmal experiment using a metagenomic technique was designed to assess the effect of BTEX (benzene, toluene, ethylbenzene, and xylenes) on an indigenous bacterial community in a Daejeon forest soil. A compositional shift of bacterial groups in an artificial BTEX-contaminated soil was examined by the 16S rDNA PCR-DGGE method. Phylogenetic analysis of 16S rDNAs in the dominant DGGE bands showed that the number of Actinobacteria and Bacillus populations increased. To confirm these observations, we performed PCR to amplify the 23S rDNA and 16S rDNA against the sample metagenome using Actinobacteria-targeting and Bacilli-specific primer sets, respectively. The result further confirmed that a bacterial community containing Actinobacteria and Bacillus was affected by BTEX.
Proceedings of the Korean Society for Applied Microbiology Conference
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2000.10a
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pp.109-117
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2000
Bacterial community structure composing enhanced biological phosphorus removal (EBPR) activated sludge was analyzed phylogenetically by cloning 165 rDNA after direct DNA extraction. Then, this result was compared with 165 rDNA sequences of randomly isolated bacterial species. The results clearly showed that there are no coincidence between the sequences retrieved directly from activated sludge and those of isolated strains, suggesting that many important bacteria are hidden in activated sludge because of the difficulty in isolation and culture of them.
The effect of Fumonisin B1, a mycotoxin produced by Fusarium moniliforme on bacterial viruses P1 and Lambda, was investigated by the virus plaque assay. Fumonisin B1 inhibited the P1 viral multiplication in the concentration range from $100{\mu}g$/ml to $400{\mu}g$/ml. The inhibition was Fumonisin B1 concentration-dependent. Another bacterial virus Lambda multiplication was also inhibited by lower concentration of Fumonisin B1 ($10{\mu}g$/ml~$50{\mu}g$/ml). This inhibition was dependent on Fumonisin B1 and on virus-Fumonisin B1 reaction time. Sensitivity of bacteriophage Lambda to Fumonisin B1 was higher than that of P1 virus. Lambda vital DNA was treated in vitro with Fumonisin B1 at various concentration. Significant DNA fragmentation by Fumonisin 191 was observed in the agarose gel electrophoresis. Lambda viral DNA was partially digested even in the Fumonisin B1 $10{\mu}g$ and the level of its fragmentation was dependent on Fumonisin B1 amount up to $30{\mu}g$ per assay.
Total bacterial community DNA, which was extracted from microcosm soil and field soil after 2,4-D amendments, was analyzed on Southern blots, using the tfdA gene probe derived from plasmid pJP4 and the Spa probe from Sphingomonas paucimobilis. Southern blot analyses with total bacterial DNA extracted from soils Inoculated with Pseudomonas cepacia/pJP4 revealed that DNA probe method could detect the 2,4-D degrading bacteria down to $10^5\;cells/g$ dry soil. In the microcosm experiment, there was a good correlation between 2,4-D degradation and banding patterns in hybridization analyses performed after each 2,4-D treatment using the two probes. When bacterial DNA extracted from microcosm soil was hybridized with the Spa probe, a change in the position of hybrid bands was observed over time in a Southern blot, suggesting that population change or possibly genetic rearrangement in 2,4-D degrading microbial populations occurred in this soil. With the Spa probe, one hybrid DNA band was persistently observed throughout the five 2,4-D additions. When bacterial DNA isolated from the field soil was probed with the tfdA and Spa, strong hybridization signal was observed in the 100 ppm-treated subplot, weak signal In the 10 ppm-treated subplot, and no significant signal in the 1 ppm-treated and control subplots. The data show that DNA probe analyses were capable of detecting and discriminating the indigenous 2,4-D degrading microbial populations in soil amended with 2,4-D under laboratory and field conditions.
A 16S rDNA clone library was generated to investigate the bacterial diversity in tidal flat sediment in Ganghwa Island, Republic of Korea. A total of 103 clones were sequenced and analyzed by comprehensive phylogenetic analyses. No clones were identical to any of known 16S rRNA sequences in public databases. Sequenced clones fell into thirteen lineages of the domain Bacteria: the alpha, beta, gamma, delta, and epsilon Proteobacteria, Actinobacteria, CFB group, Chloroflexi, Acidobacteria, Planctomycetes, Verrucomicrobia, and known uncultured candidate divisions (OP11, BRC1, KSB1, and WS1). Two clones were not associated with any known bacterial divisions. The majority of clones belonged to the gamma and delta Proteobacteria (46.7%). Clones of Actinobacteria were distantly related to known taxa. It is evident from 16S rDNA-based community analysis that the bacterial community in tidal flat sediment is remarkably diverse and unique among other marine environments examined so far.
To investigate soil bacterial diversity according to vegetation types, directly extracted DNA from 5 different soils were cross-hybridized with each other as a probe and target. Pinus densiflora soil was shown the highest value then agricultured soil>naked soil>grass soil>Quercus mongolicas soil in the order of diversity. Cluster analysis by similarity showed that soil microbial communities were categorized into three groups.
Oxidative damage to DNA can be caused by excited oxygen species, which are produced by radiation or are by-products of aerobic metabolism. Endogenous evels of 8-hydroxy-2'deoxyguanosine (8-OH-dG), an adduct that results from the damage of DNA caused by hydroxyl radical,have been detected in E. coli and S. typhimurium. Treatment of bacterial cells with various concentrations of hydrogen peroxide caused a moderate increase in the 8-OH-dG content. The enzymatic release of 8-OH-dG from asocorbate/Cu(II)-treated DNA was effected by an extract of E. coli cells. These results indicate that 8-OH-dG is formed in vivo inbacterial DNA through endogenous oxidative mechanisms and on treatment with an oxygen radical-producing agent and that it is repairable.
A cellulose-producing strain isolated from rotten apples was identified as Gluconacetobacter hansenii based on its physiological properties and the 16S rDNA complete sequencing method, and specifically named Gluconacetobacter hansenii PJK. The amount of bacterial cellulose (BC) produced by G. hansenii PJK in a shaking incubator was 1.5 times higher than that produced in a static culture. The addition of ethanol to the medium during cultivation enhanced the productivity of bacterial cellulose, plus the supplementation of 1% ethanol into the culture medium made the produced BC aggregate into a big lump and thus protected the bacterial-cellulose-producing G. hansenii PJK cells in the shear stress field from being converted into non-cellulose-producing (Cel) mutants. Cells subcultured three times in a medium containing ethanol retained their ability to produce BC without any loss in the production yield.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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