Jo, Yun-Ju;Lee, Jin-Yong;Kim, Chang-Gyun;Han, Ji-Sun
Journal of Soil and Groundwater Environment
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v.14
no.4
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pp.10-14
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2009
Objective of this study was to examine the effects of grouts and temperature change on microorganisms in geothermal heat pump. Groundwater samples were obtained from wells in the heat pump system during installation (Oriental medicine hospital) and in the heat pump system under operation (Business incubation center). Grouts are the volclay sodium bentonite. Real-time PCR was used to evaluate total bacterial number and 16S rDNA. The results showed that total bacterial number of groundwater in the heat pump operation was greater than that of non-operation case, which indicates a temperature effect on the bacterial culture. In addition, high concentration of grout showed an elevated bacteria number. In the mean time, a long-term field monitoring is essentially required to confirm the effects of the grouts and the temperature changes.
In the model legume Medicago truncatula, two mutants, sickle and sunn, exhibit morphologically and genetically distinct hypernodulation phenotypes. However, efforts to isolate the single recessive and single semidominant genes for sickle and sunn, respectively, by map-based cloning have so far been unsuccessful, partly due to the absence of clones that enable walks from linked marker positions. To help resolve these difficulties, a new bacterial artificial chromosome (BAC) library was constructed using BamHI-digested genomic fragments. A total of 23,808 clones were collected from ligation mixtures prepared with double-size-selected high-molecular-weight DNA. The average insert size was 116 kb based on an analysis of 88 randomly selected clones using NotI digestion and pulsed-field gel electrophoresis. About 18.5% of the library clones lacked inserts. The frequency of the BAC clones carrying chloroplast or mitochondrial DNA was 0.98% and 0.03%, respectively. The library represented approximately 4.9 haploid M. truncatula genomes. Hybridization of the BAC clone filters with a $C_{0}t-l$ DNA probe revealed that approximately 37% of the clones likely carried repetitive sequence-enriched DNA. An ordered array of pooled BAC DNA was screened by polymerase chain reactions using 13 sequence-characterized molecular markers that belonged to the eight linkage groups. Except for two markers, one to five positive BAC clones were obtained per marker. Accordingly, the sickle- and sunn-linked BAC clones identified herein will be useful for the isolation of these biotechnologically important genes. The new library will also provide clones that fill the gaps between preexisting BAC contigs, facilitating the physical mapping and genome sequencing of M. truncatula.
To isolate the bacteria lysing cyanobacteria, the sediment samples were collected from Dochang and Pal'tang Reservoir and Seokchon Lake. Each sample was smeared on the Anabaena cylindrica lawn and incubated in light chamber for 11 days. Bacteria having cyanobacteria-Iysing activity were isolated from the samples of Seokchon reservoir. Confirmation of cyanobacteria-Iysing activity was carried out to measure chlorophyll a and bacterial cell counting in mixed culture of Anabaena cylindrica and bacteria. Lysis was detected when extracellular meterials was added to the Anabaena cylindrica culture. The isolate was identified by analysis based on 16S rDNA sequence and morphological and physiological properties. The bacterial strain was taxonomically studied by the phylogenetic analysis based on 165 rDNA sequence. This strain was identified as a member of the genus Bacillus and designated as Bacillus sp. CHS1.
Journal of the Korean Applied Science and Technology
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v.37
no.6
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pp.1698-1705
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2020
Bacteria were collected from the thumb surface of the twenty young adults that are 20 to 25 years old and cultured on the Luria-Bertani agar. The 16S rDNA of the cultured bacteria was amplified by polymerase chain reaction(PCR) and DNA sequence of the PCR products analyzed. Total 14 different bacterial species were identified by comparing their 16S rDNA sequence with the data in genbank. It appears that each individual has 2.5 different bacterial species in average. Staphylococcal species were the most abundant among the identified bacteria and Micrococcus luteus was the second. Staphylococcal species were isolated at similar frequency between male and female donors but Micrococcus luteus was isolated more frequently from female than male donors. The result obtained in this study might be useful in research of dermatic diseases, searching for new drugs for those diseases and development of new cosmetics.
Accurate and efficient microbial diagnosis is crucial for effective molecular diagnostics, especially in the field of human healthcare. The gold standard equipment widely employed for detecting specific microorganisms in molecular diagnosis is quantitative real-time polymerase chain reaction (qRT-PCR). However, its limitations in low metagenomic DNA yield samples necessitate exploring alternative approaches. Digital PCR, by quantifying the number of copies of the target sequence, provides absolute quantification results for the bacterial strain. In this study, we compared the diagnostic efficiency of qRT-PCR and digital PCR in detecting a particular bacterial strain (Staphylococcus aureus), focusing on skin-derived DNA samples. Experimentally, specific primer for S. aureus were designed at transcription elongation factor (greA) gene and the target amplicon were cloned and sequenced to validate efficiency of specificity to the greA gene of S. aureus. To quantify the absolute amount of microorganisms present on the skin, the variable region 5 (V5) of the 16S rRNA gene was used, and primers for S. aureus identification were used to relative their amount in the subject's skin. The findings demonstrate the absolute convenience and efficiency of digital PCR in microbial diagnostics. We suggest that the high sensitivity and precise quantification provided by digital PCR could be a promising tool for detecting specific microorganisms, especially in skin-derived DNA samples with low metagenomic DNA yields, and that further research and implementation is needed to improve medical practice and diagnosis.
Kim, Te Ha;Kim, Dongbum;Lee, Heesu;Kwak, Min Hyung;Park, Sangkyu;Lee, Younghee;Kwon, Hyung-Joo
BMB Reports
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v.52
no.11
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pp.635-640
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2019
CpG-DNA triggers the proliferation and differentiation of B cells which results in the increased production of antibodies. The presence of bacteria-reactive IgM in normal serum was reported; however, the relevance of CpG-DNA with the production of bacteria-reactive IgM has not been investigated. Here, we proved the function of CpG-DNA for the production of bacteria-reactive IgM. CpG-DNA administration led to increased production of bacteria-reactive IgM both in the peritoneal fluid and serum through TLR9 signaling pathway. When we stimulated B cells with CpG-DNA, production of bacteria-reactive IgM was reproduced in vitro. We established a bacteria-reactive monoclonal IgM antibody using CpG-DNA stimulated-peritoneal B cells. The monoclonal IgM antibody enhanced the phagocytic activity of RAW 264.7 cells against S. aureus MW2 infection. Therefore, we suggest that CpG-DNA enhances the antibacterial activity of the immune system by triggering the production of bacteria-reactive IgM. We also suggest the possible application of the antibodies for the treatment of antibiotics-resistant bacterial infections.
The population diversity and seasonal changes of bacterial communities in rice soils were monitored using both culture-dependent approaches and molecular methods. The rice field plot consisted of twelve subplots planted with two genetically-modified (GM) rice and two non-GM rice plants in three replicates. The DGGE analysis revealed that the bacterial community structures of the twelve subplot soils were quite similar to each other in a given month, indicating that there were no significant differences in the structure of the soil microbial populations between GM rice and non-GM rice during the experiment. However, the DGGE profiles of June soil after a sudden flooding were quite different from those of the other months. The June profiles exhibited a few intense DNA bands, compared with the others, indicating that flooding of rice field stimulated selective growth of some indigenous microorganisms. Phylogenetic analysis of l6S rDNA sequences from cultivated isolates showed that, while the isolates obtained from April soil before flooding were relatively evenly distributed among diverse genera such as Arthrobacter, Streptomyces, Terrabacter, and Bacillus/Paenibacillus, those from June soil after flooding mostly belonged to the Arthrobacter species. Phylogenetic analysis of 16S rDNA sequences obtained from the soil by cloning showed that April, August, and October had more diverse microorganisms than June. The results of this study indicated that flooding of rice fields gave a significant impact on the indigenous microbial community structure; however, the initial structure was gradually recovered over time after a sudden flooding.
Widespread distributions of repetitive DNA elements in bacteria genomes are useful for analysis of genomes and should be exploited to differentiate food-borne pathogenic bacteria among and within species. Enterobacterial repetitive intergenic consensus (ERIC) sequence has been used for ERIC-PCR genomic fingerprinting to identify and differentiate bacterial strains from various environmental sources. ERIC-PCH genomic fingerprinting was applied to detect and differentiate four major Gram-negative food-borne bacterial pathogens, Esherichia coli, Salmonella, Shigella, and Vibrio. Target DNA fragments of pathogens were amplified by ERIC-PCR reactions. Dendrograms of subsequent PCR fingerprinting patterns for each strain were constructed, through which relative similarity coefficients or genetic distances between different strains were obtained numerically. Numerical comparisons revealed ERIC-PCR genotyping is effective for differentiation of strains among and within species of food-borne bacterial pathogens, showing ERIC-PCR fingerprinting methods can be utilized to differentiate isolates from outbreak and to determine their clonal relationships among outbreaks.
Kim, Young-Tak;Park, Kyoung-Soo;Kim, Hye-Seong;Lee, Hyok-In;Cha, Jae-Soon
Research in Plant Disease
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v.21
no.2
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pp.74-81
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2015
The specific and sensitive nested-PCR method to detect Acidovorax citrulli, a causal agent of bacterial fruit blotch on cucurbitaceae, was developed. PCR primers were designed from the draft genome sequence which was obtained with the Next Generation Sequencing of A. citrulli KACC10651, and the nested-PCR primer set (Ac-ORF 21F/Ac-ORF 21R) were selected by checking of specificity to A. citrulli with PCR assays. The selected nested-PCR primer amplified the 140 bp DNA only from A. citrulli strains, and detection sensitivity of the nested PCR increased 10,000 times of $1^{st}$ PCR detection limit (10 ng genomic DNA/PCR). The nested PCR detected A. citrulli from the all samples of seed surface wash (external seed detection) of the artificially inoculated watermelon seeds with $10^1cfu/ml$ and above population of A. citrulli while the nested PCR could not detected A. citrulli from the mashed seed suspension (internal seed detection) of the all artificially inoculated watermelon seeds. When the naturally infested watermelon seeds (10% seed infested rate with grow-out test) used, the nested PCR detected A. citrulli from 2 seed samples out of 10 replication samples externally and 5 seed samples out of 10 replication samples internally. We believe that the nested-PCR developed in this study will be useful method to detect A. citrulli from the Cucurbitaceae seeds.
Proceedings of the Korean Society of Crop Science Conference
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2017.06a
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pp.342-342
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2017
Rice seeds are a home to endophytic bacterial communities which serve as a source of the plant's endophytes. As rice undergo physiological and adaptive modifications through cross breeding in the process of attaining salinity tolerance, this may also lead to changes in the endophytic bacterial community especially those residing in the seeds. This study explores the community structure of seed bacterial endophytes as influenced by rice parental lineage, genotype and physiological adaptation to salinity stress. Endophytic bacterial diversity was studied through culture dependent technique, cloning and Terminal-Restriction Fragment Length Polymorphism (T-RFLP) analysis. Results revealed considerably diverse communities of bacterial endophytes in the interior of rice seeds. The richness of ribotypes ranges from 5-14 T-RFs corresponding to major groups of bacterial endophytes in the seeds. Endophytic bacterial diversity of the salt-sensitive IR29 is significantly more diverse compared to those of salt-tolerant cultivars. Proteobacteria followed by Actinobacteria and Firmicutes dominated the overall endophytic bacterial communities of the indica rice seeds based on 16S rDNA analysis of clones and isolates. Community profiles show common ribotypes found in all cultivars of the indica subspecies representing potential core microbiota belonging to Curtobacterium, Flavobacterium, Enterobacter, Xanthomonas, Herbaspirillum, Microbacterium and Stenotrophomonas. Multivariate analysis showed that the bacterial endophytic community and diversity of rice seeds are mainly influenced by their host's genotype, physiological adaptation to salt stress and parental lineage.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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