The waste-water from the industry for production of a soybean curd (the soybean curd waste-water) was investigated to use for the substrate to produce the endotoxin of Bacillus thuringiensis subsp. kurstaki HD-1 used as one of well known microbial pesticides. The pH of the soybean curd waste-water was 9.8 and its chemical oxygen demand (COD), total nitrogen (TN) and phosphate (TP) were 276.0, 71.1 and 5.5mg/$\ell$, respectively. The higher was the concentration of the soybean curd waste-water in the medium, the more endotoxin was produced. Maximal sporulation occurred at which concentration of $K_2$HPO$_4$in the medium supplied with the soybean curd waste-water was 1% (w/v). Production of the endotoxin with the optimized medium supplied with the soybean curd waste-water was 1.5 times higher than that without the soybean curd waste-water. The soybean curd waste-water was found to be suitable substrate for production of the endotoxin of Bacillus thuringiensis subsp. kurstaki HD-1.
The objective of this study is to identify plasmids of Bacillus thuringiensis var. kurstaki HD-1(B. t k HD-1) toxic to lepidopteran larvae. The results from agarose gel electrophoresis indicated that the bacterium contained 9 plasmids with approximate sizes of 1.4, 4.9, 5.4, 9.3, 10, 29, 44, 52, and 150 megadaltons(Md). By treating the wild type of B. t k HD-1 with either SDS or EtBr as curing agent, 26 cured mutants of the bacterium were obtained, 9 of them were crystallifereous(cry+) and the others acrystallifereous(cry-). Plasmids from B. t k HD-1 were transferred to B. cereus 569 strR cry- recipients(Bc569 M1). Among 13 isolates of Bc569 M1 transcipient, 11 of them were capable of producing the crystal toxic proteins. The plasmid patterns of Bc569 M1 transcipients and partially curved mutants of B. t k HD-1 on agarose gel electrophoresis suggested that the 29 and 44Md plasmids should be involved in the production of crystalline toxic proteins.
Among many microbial pesticides, Bacillus thuringiensis is one of the most hopeful pesticide and some commercial products have been appearing on the market. Because these commercial products contain living spores and toxins of the organism, there is a danger that living spores of B. thuringiensis may be scattered by wind and cause a great damage in the sericulture areas. In order to avoide these risks it is desirable to select the strain which has low pathogenicity to the silkworm, and at the sometime being highly pathogenic to the pest insects. Thus this study has been carried out to acquire some basic informations about the procedure of desicable strain selection. Three strains of B. thuringiensis var. kurstaki, var. dendrolimus and var. aizawai were used for the pathogenicity test on the silkworm, Bombux mori and the fall webwarm, Hyphantria cunea. Those strains were investigated by the agarose gel electrophoresis patterns of plasmid DNA determine whether mutation had occured. Pathogenicity tests were carried out of using isolated crystal proteins and spore-crystal protein to mixtures of each strain, seperatively. In case of using spore-crystal protein mixture, the order of pathogenicity in varities of B. thuringiensis against B.mopri and H.cunea were kurstaki, aizawai, dendrolimus and kurstaki, dendrolimus, aizawai, respectively. But using isolated crystal proteins, dendrolimus had the highest toxicity to H. cunea and the lowest toxicity to B. mori among tested three strains. From the above results, dendrolimus was presumed the most desirable straing for using microbial pesticide.
The production of delta-endotoxin crystal and the cloning of endotoxin protein gene in Bscillus thuringiensis subsp. kurstaki HD1 strain were studied. The strain produced bipyramidal crystals ($2.9\times 1.0 \mu m$) in their cells during sporulation. The B. thuringiensis contained about 10 plasmid DNA elements ranging from 2.1 to 80 kilobases. The 73 kb plasmid DNA, the 29 kb BamHI fragment and the 7.9 kb Pstl DNA fragment hybridized to the pHL probe. The 7.9 kb fragment was eluted and cloned in the PstI site of pBR322 vector and transformed into E. coli HB101, which produced insecticidal proteins killing Bornbyx mori larvae.
Bacillus thringiensis strain 108 was isolated from soil and had nematicidal activity against second stage juvenile of plant root-knot nematode, Meloidogyne incognita. The strain 108, a rod shape, spore forming and Gram positive bacterium, produced lecithinase, catalase, and ${\delta}$-endotoxin. The strain 108 belongs to H serotype 3, Bacillus thuringiensis var. kurstaki. A nematicidal substance of the strain 108 was partially purified on Sephadex G-25 gel filtration, activated carbon adsorption, silica gel adsorption, and Sephadex G-10 gel filtration. $LC_{90}$ of the partially purified substance against M incognita was $1.2\;{\mu}g/ml$. The nematicidal substance was stable by heat treatment at $100^{\circ}C$ for 1hr, but was perfectly lost nematicidal activity after autoclave ($110^{\circ}C$, 30 min).
During sporulation, Bacillus thuringiensis strains produce crystals consist of toxin proteins highly specific against insect pests. Their host specificities are desirable from a standpoint of environmental safety, but also limit market potential. Thus, development of improved Bacillus thuringiensis strains having broad host spectrum will contribute to increase its use. For the construction of Bacillus thuringiensis strain having broad host spectrum, we cloned cry1C gene encoding a toxin protein highly toxic against Spodoptera exigua from a B. thuringiensis isolate and constructed two recombinant plasmids, pUBClC and plC60. The plasmid PUBC1C has a replication origin of the natural plasmid pBC16 from B. cereus which is closely related species to B. thuringiensis, and the pBC16 was known to be replicated by rolling-circle mechanism. The plasmid pIC60 has a replication origin of a resident 60 MDa plasmid from B. thuringiensis subsp. kurstaki HD263, and it is believed that the pIC60 is replicated in a theta mode. The two plasmids were introduced into B. thuringiensis subsp. kurstaki cryB strain, and the transformed strains produced well-shaped bipyramidal crystals. We confirmed the expression of the cry1C gene by SDS-PAGE, and Western blotting. By investigating the segregational stability, it was found that the plasmid pIC60 is more stable than the pUBC1C.
Bacillus thuringiensis strain BT-209 was isolated from a soybean grain dust sample in Korea. The strain BT-209 produced two different sizes of cuboidal crystals and one spore in the cell. In the biochemical characterization, the strain BT-209 showed negative reactions on the production of urease, and the utilization of citrate and sucrose. Examination of its antibiotic resistance revealed that while the strain BT-209 showed higher sensitivity than B. thuringiensis subsp. kurstaki HD-1 to ampicillin, bacitracin, chlortetracycline, gentamycin, neomycin, penicillin G, tetracycline and tobramycin, it was more resistant to methicillin than B. thuringiensis subsp. kurstaki HD-1. The $\delta$-endotoxin crystal of strain BT-209 consisted of three proteins with apparent molecular weights of appoximately 148, 135 and 62 kDa on a 10% SDS-PAGE. The strain BT-209 had at least eight different plasmids with sizes of 4.1, 5.2, 6.3, 8.6, 14.6, 24.5, 67.6 and 77.6 Kb. The strain BT-209 showed strong lethalities of 70% and 87% against Bombyx mori and Hyphantria cunea larvae. at 72 h, respectively.
Bacillus thuringiensis serovar. darmstadiensis produced bipyramidal endo-toxin. The toxin protein was purified by Renografin-76 step gradient centrifugation and investigated by electron microscope. Analysis of total plasmid DNA patterns showed that four different size of plasmids existed in wild type B. thuringiensis serovar. darmstadiensis. Total plasmids DNA was isolated and transformed into pst I site of pBR322 cloning vector. Ten clones containing crystal toxin gene were forst screened colony hybridization by using PUYBT 9044 probe ontained B. thuringiensis kurskaki HD 1 toxin gene. Cloned-DNA was digested with EcoR1 and HindIII and transformed to pIBI30 sequencing vector. Finally, 2.6kb and 3.6kb size fragments contatined toxin-gene were cloned with restriction analysis.
Delta-endotoxin crystals of B. thuringiensis var. kurstari and B. thuringiensis var. israelensis were purified by NaBr density gradient centrifigation and the wet weight of the BTK endotoxin was approximately 23.79% of the cell wet weight and that of BTI was 25%. The shape of BTK crystal was bipyramidal, whose size was 1.7${\mu}{\textrm}{m}$$\times$ 0.9${\mu}{\textrm}{m}$ and that of BTI was a spheroid, whose size was about 1.6$\times$0.45${\mu}{\textrm}{m}$. The molecular weight of BTK crystal protein was approximately 134,000 daltons and that of BTI was about 128,000 daltons.
Six plasmids of B. thuringiensis serovar. kurstaki HD73 were detected, with approximate sizes of 7.4, 7.8, 8.1, 11.3, and 75 Kb, as well as a low copied plasmid of similar length to 75 Kb. Partially cured mutants from B. thuringiensis HD73 were obtained either by the treatment of the curing agent, ethidium bromide(0.02 $\mu\textrm{g}$/$m\ell$) or by spontaneous curing, Acrystalliferous mutants(Cry$^-$) were identified by microscopic observation and immunoblotting with polyclonal antibody against 133 KD deltaendotoxin of HD73. Ten Cry$^-$ mutants were found to be lack of 75 Kb plasmid. These results implicated that this plasmid was associated with delta-endotoxin production, After isolating the mutants, we streaked them on potato dextrose agar, spizizen casamino acid glucose, starch agar, and nutrient agar. Only on starch agar medium did morphologies of Cry$^-$ appear translucent and light greyish. On the other hand, the mutants of B. thuringiensis isolated from Korean soil, designated KBS722, were obtained by the treatment of novobiocin (3 $\mu\textrm{g}$/$m\ell$). Acrystalliferous mutants of KBS722 were less translucent than HD73 mutants' only on nutrient agar medium. Compared the plasmid profile of the mutants with delta-endotoxin production, the results seemed to indicate that the insecticidal protein gene of B. thuringiensis isolates KBS722 located on about 225 Kb plasmid DNA.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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