Aly, Aly A.;El-Mahdy, Omima M.;Habeb, Marian M.;Elhakem, Abeer;Asran, Amal A.;Youssef, Maryan M.;Mohamed, Heba I.;Hanafy, Rania S.
The Plant Pathology Journal
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v.38
no.2
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pp.90-101
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2022
Pathogenicity of eight Bacillus strains to seedlings of four cotton cultivars was evaluated under greenhouse conditions. Each of the tested cultivars was individually treated with powdered inoculum of each bacterial strain. Untreated seeds were planted as control treatments in autoclaved soil. Effects of the tested strains on levels and activities of some biochemical components of the infected seedlings were also assayed. The biochemical components included total soluble sugars, total soluble proteins, total free amino acids, peroxidase, polyphenol oxidase, phenols, and lipid peroxidation. ANOVA showed that Bacillus strain (B) was a very highly significant source of variation in damping-off and dry weight. Cotton cultivar (V) was a nonsignificant source of variation in damping-off while it was a significant source of variation in dry weight. B × V interaction was a significant source of variation in damping-off and a nonsignificant source of variation in dry weight. Bacillus strain was the most important source of variation as it accounted for 59.36 and 64.99% of the explained (model) variation in damping-off and dry weight, respectively. The lack of significant correlation between levels and activities of the assayed biochemical components and incidence of damping-off clearly demonstrated that these biochemical components were not involved in the pathogenicity of the tested strains. Therefore, it was hypothesized that the pathogenicity of the tested strains could be due to the effect of cell wall degrading enzymes of pathogenic toxins. Based on the results of the present study, Bacillus strains should be considered in studying the etiology of cotton seedling damping-off.
Park, Hae Suk;Jo, Seung Wha;Yim, Eun Jung;Kim, Yun Sun;Moon, Sung Hyun;Cho, Ho Seong;Kim, Hyun-Young;Cho, Yong Sik;Cho, Sung Ho
Korean Journal of Microbiology
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v.51
no.4
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pp.419-426
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2015
The aims of this study were to isolate spore-forming Bacillus strains that exhibit high digestibility and anti-pathogenic bacteria toward feed for calves. Total 136 spore-forming strains were isolated from finished feeds and their ingredients. Among them, 93 strains were identified as Bacillus species when analyzed by 16S rRNA sequencing. For industrial use, three strains named as Bacillus licheniformis SHS14, B. subtilis LCB7, B. amyloliquefaciens LCB10 were selected after evaluating the industrial standards that are related with heat and acid resistance, enzyme activities, and anti-pathogenic activities against Samonella dublin ATCC15480 and E. coli K99. After each culture, 3 selected strains were mixed together at 1:1:1 (v/v/v) ratio and then prepared as the mixed starter culture for feeding. The changes in microbial community were analyzed via 16S rRNA metagenomics. The initial community ratio among three strains was maintained even after manufacturing into final products. Also, in vitro, enzymatic and anti-pathogenic activities were almost same as those when cultured in single culture, and results of anti-pathogenic activities conducted with calves showed 90% activities against lincomycin, which would be indicative of a promising feed starter.
In 2015, Bacillus paralicheniformis was separated from B. licheniformis on the basis of phylogenomic and phylogenetic studies, and urease activity was reported as a phenotypic property that differentiates between the two species. Subsequently, we have found that the urease activity of B. paralicheniformis is strain-specific, and does not reliably discriminate between species, as strains having the same urease gene cluster were identified in B. licheniformis and B. sonorensis, the closest relatives of B. paralicheniformis. We developed a multilocus sequence typing scheme using eight housekeeping genes, adk, ccpA, glpF, gmk, ilvD, pur, spo0A, and tpi to clearly identify B. paralicheniformis from closely related Bacillus species and to find a molecular marker for the rapid identification of B. paralicheniformis. The scheme differentiated 33 B. paralicheniformis strains from 90 strains formerly identified as B. licheniformis. Among the eight housekeeping genes, spo0A possesses appropriate polymorphic sites for the design of a B. paralichenofomis-specific PCR primer set. The primer set designed in this study perfectly separated B. paralicheniformis from B. licheniformis and B. sonorensis.
Park, Yun-Hee;Cho, Sung-Eun;Lee, Woo-Sang;Jo, Do-Hyun
Applied Biological Chemistry
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v.35
no.4
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pp.242-247
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1992
Twenty strains of pentachlorophnol (PCP) resistant bacteria were isolated from activated sludge of the sewage treatment plant of Jung Lang Chun, Seoul. The predominant strains were Bacillus spp. including B. sphaericus and E. schlegelii. The other strains were identified as Corynebacterium spp., Staphylococcus aureus, Arthrobacter spp. and Aeromonas spp. The resistant strains could be grouped into two categories; PCP-degrading and PCP-adsorbing/absorbing ones. PCP-degrading strains degraded $75{\sim}90%$ of PCP in the medium containing 100 ppm PCP during the first 24 hours of growth. At the initial period the PCP-adsorbing/absorbing strains removed PCP from the medium but started to release PCP after 24 or 72 hours of growth. PCP degradation products from the culture broth of PCP-degrading strains were identified by comparing their $R_f$ values with those of the reference compounds. 2-chlorophenol and 2.4-dichlorophenol were presumed to be the intermediate products of PCP degradation.
In this work we have investigated the production of catalase from Bacillus sp. strains, which were screened and identified from soil. These strains were cultivated in shaking flasks with tryptic soy broth (TSB) at $30^{\circ}C$ and 200 rpm. Effects of the temperature and pH on the stability of the native catalase and whole cell viability were studied in the temperature range of $25-60^{\circ}C$ and the pH range of 7-13. Korean natural zeolite was added to culture medium and mixed with microorganisms for 24 hours. The native catalase maintained its activity over $50^{\circ}C$. The enzyme acitiviy of the catalase from Bacillus flexus BKBChE-3 was highest among the Bacillus sp. strains studied. Bacillus flexus BKBChE-3 and immobilized Bacillus cells have survived under extreme conditions of over $50^{\circ}C$ and pH 12. 60 mL of 10.5 mM $H_2O_2$ solution were entirely removed within 1 hour with catalase produced from Bacillus sp. on the flask. When Bacillus cells were immobilized on Korean natural zeolite, colony forming unit of Bacillus flexus BKBChE-3 was increased and high efficiency of hydrogen peroxide removal was observed.
The purpose of this study was to isolate and characterize bacteriocin-producing bacteria against Clostridium perfringens from domestic animals to determine their usefulness as probiotics. The feces of cattle and chicken were used as sources to isolate bacteriocin-producing bacteria using the spot-on-lawn method. In total, 900 bacterial stains were isolated from domestic animal feces, and 19 strains were finally selected after determining the inhibitory activity against the pathogenic indicator C. perfringens KCTC 3269. Eighteen strains of Bacillus subtilis and one strain of Brevibacillus parabrevis were identified by 16s rRNA sequencing. Most of the bacterial strains isolated were resistant to 0.5% bile salts and remained viable after 2 h at pH 3.0. Additionally, some B. subtilis strains showed strong inhibitory activity against Listeria monocytogenes. We isolated and screened B. subtilis strains CB 153 and CB 189 from cattle and B. subtilis MSC 156 and B. parabrevis MSC 164 from chickens using probiotic selection criteria such as inhibition activity against C. perfringens and tolerance to acid and bile salts. The isolated bacteriocin-producing bacteria and/or bacteriocin have the potential to be used as probiotics in the livestock industry.
As a first step for developing Lactobacillus strains capable of fermenting starch directly, the $\alpha$-amylase gene (amyL) from Bacillus licheniformis (Kim et al., 1988. Kor. J. Appl. Microbiol. Bioeng. 16: 369-373) was introduced into Lactobacillus casei strains and the level of $\alpha$-amylase expression in transformants was examined. 3 kb EcoRI fragments encompassing amyL were subcloned into the suitable lactococcal cloning vectors (pSA3, pMG36e, and p1L2530) and then recombinant plasmids were introduced into E. coli and L. casei strains by electroporation. Only one recombinant plasmid, $pIL2530\alpha$ was able to transform few L. casei strains tested at low efficiencies. The transformation efficiencies with the plasmid into L. casei YIT 9018 and L. casei A Tee 4646 were less than $10^2/\mu$ g pIL2530\alpha$. The level of amylase activities in L. casei was five to ten-fold lower than that in E. coli cells. $p1L2530\alpha$ was stably maintained in Lactobacillus strains in the presence of Em (5 $\mu $g/ml) but without antibiotic selection, it was unstable so more than 95$%$ of cells lost plasmids after a week of daily subculturing.
Kim, Won-Yong;Song, Tae-Wook;Song, Mi-Ok;Nam, Ji-Yeon;Park, Chul-Min;Kim, Ki-Jung;Chung, Sang-In;Choi, Chul-Soon
The Journal of the Korean Society for Microbiology
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v.35
no.1
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pp.31-40
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2000
Bacillus anthracis, the etiological agent of anthrax has been classified into the Bacillus subgroup I with B. cereus, B. mycoides and B. thuringiensis based on morphological and DNA similarity. DNA studies have further indicated that these species have very AT-rich genomes and high homology, indeed it has been proposed that these four sub-species be recognized as members of the one species. Several methods have been developed to obtain good differentiation between these species. However, none of these methods provides the means for an absolutely correct differntiation. The analysis of fatty acid methyl esters (FAMEs) was employed as a quick, simple and reliable method for the identification of 21 B. anthracis strains and closley related strains. The most significant differences were found between B. anthracis and B. anthracis closely related strains in FAMEs profiles. All tested strains of B. anthracis had a branched fatty acid C17:1 Anteiso A, whereas the fraction of unsaturated fatty acid Iso C17:1 w10c was found in B. anthracis closely related strains. By UPGMA clustering analysis of FAMEs profiles, all of the tested strains were classified into two clusters defined at Euclidian distance value of 24.5. The tested strains of B. anthracis were clustered together including Bacillus sp. Kyungjoo 3. However, the isolates of B. anthracis closely related spp. Rho, S10A, 11R1, CAU9910, CAU9911, CAU9912 and CAU9913 were clustered with the other group. On the basis of these results, isolates of B. anthracis Bongchon, Kyungjoo 1, 2 and Bacillus sp. Kyungjoo 3 were reclassified as a B. anthracis. It is concluded that FAMEs analysis provides a sensitive and reliable method for the identification of B. anthracis from closely related taxa.
Song, Chan Woo;Rathnasingh, Chelladurai;Park, Jong Myoung;Lee, Julia;Song, Hyohak
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.28
no.3
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pp.409-417
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2018
Biologically produced 2,3-butanediol (2,3-BDO) has diverse industrial applications. In this study, schematic isolation and screening procedures were designed to obtain generally regarded as safe (GRAS) and efficient 2,3-BDO producers. Over 4,000 candidate strains were isolated by pretreatment and enrichment, and the isolated Bacillus strains were further screened by morphological, biochemical, and genomic analyses. The screened strains were then used to test the utilization of the most common carbon (glucose, xylose, fructose, sucrose) and nitrogen (yeast extract, corn steep liquor) sources for the economical production of 2,3-BDO. Two-stage fed-batch fermentation was finally carried out to enhance 2,3-BDO production. In consequence, a newly isolated Bacillus licheniformis GSC3102 strain produced 92.0 g/l of total 2,3-BDO with an overall productivity and yield of 1.40 g/l/h and 0.423 g/g glucose, respectively, using a cheap and abundant nitrogen source. These results strongly suggest that B. licheniformis, which is found widely in nature, can be used as a host strain for the industrial fermentative production of 2,3-BDO.
In this study, Bacillus licheniformis which has been used as probiotics was isolated from Korean traditional fermented soybean. A total of 69 strains were presumptively identified as B. licheniformis by phenotypic methods. Based on PCR amplification and 16S rRNA gene sequencing, the multilocus sequence typing of gyrA and rpoB, followed by phylogenetic analysis was performed. The isolates were distinctly differentiated and found to be closely related to B. amyloliquefaciens, B. subtilis, and B. aerius. The partial 16S rRNA gene sequences of those strains matched those of B. sonorensis (97%) and B. aerius (98%) in the phylogenetic tree. In contrast, multilocus phylogenetic analysis (MLPA) showed that only 61 (86.9%) out of 69 strains were B. licheniformis. The rest of those strains were found to be B. subtilis (5.8%), B. amyloliquefaciens (2.9%), and B. sonorensis (2.9%), respectively. Therefore, our results suggested that since the 16S rRNA gene sequencing alone was not sufficient to compare and discriminate closely related lineages of Bacillus spp., it was required to analyze the MLPA simultaneously to avoid any misleading phenotype-based grouping of these closely related species.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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